Este documento describe un estudio epidemiológico realizado en Chile sobre la toxocariosis y la toxoplasmosis en poblaciones de riesgo ocupacional. Se presentan datos sobre la prevalencia de estas enfermedades parasitarias en médicos veterinarios y estudiantes de medicina veterinaria en la octava región de Chile. Los resultados muestran una prevalencia del 7.5% de toxocariosis y del 5% de toxoplasmosis en médicos veterinarios. En estudiantes de medicina veterinaria, la prevalencia de toxoplasmosis fue del

1. D R . I G N A C I O T R O N C O S O T O R O
R E D Z O O N O S I S . S O C I E D A D C H I L E N A D E Z O O N O S I S . S O C I E D A D
C H I L E N A D E I N F E C T O L O G Í A
TOXOCARA Y TOXOPLASMA EN
POBLACIÓN DE RIESGO
OCUPACIONAL
Chillán, 26 de Junio 2015
SOCIEDAD CHILENA DE ZOONOSIS

3. TOXOCARIOSIS
En relación a la toxocariasis ocular, síndrome
de larva migrans ocular (SLMO) u oftalmitis
granulomatosa, ésta también fue descrita por primera
vez en los Estados Unidos de América (Wilder,
1950), incluso 2 años antes que el SLMV, y ha sido
descrita en diferentes partes del mundo, pero aun
relativamente poco estudiada, comparada con otras
entidades oftalmológicas y parasitarias. En Venezuela
el primer caso de toxocariasis ocular fue comprobado
por Cordero-Moreno en 1978 (Cordero-Moreno,
1978). Al igual que con el SLMV, en otros países
latinoamericanos, como Perú, la descripción del SLMO
ha sido mas reciente (1999) (Miranda et al., 1999).
ETIOLOGÍA
h
s
(
d
T
l
h
m
l
&
d
h
c
d
c
g
e
1
S
1
y
S
1
v
e
d
u
e
T
p
e
d
e
e
Fig. 2. Relación entre la prevalencia de infección
por Toxocara canis y la edad del perro (generado
a partir de los datos de Acha et al., 2001; Barriga,
1988; Hoskins et al., 1982; Jordan et al., 1993;
Kirkpatrick, 1988; Lightner et al., 1978; Ramirez-
Barrios et al., 2004; Vanparijs et al., 1991; Visco et
al., 1977; Visco et al., 1978)
TOXOCARIOSIS

4. ETIOLOGÍA
• Hembra puede llegar a depositar 200.000 huevos.
• Dimorfismo sexual.
• Huevos no se encuentran en el ser humano.
(Alvarez, 2000).

5. CICLO BIOLÓGICO
Migración y localizaciones de Toxocara spp en el hombre
(Archelli y col., 2008)

6. EPIDEMIOLOGÍA
Distribución mundial de la toxocariasis (Overgaauw, 1997).

7. ESTUDIO EPIDEMIOLÓGICO
• Enfermedad en los animales:
- Nivel mundial  2 %– 43% (Maguiña y col., 2004)
- Chile  En perros 27% - 50% (Alcaíno y Tagle, 1970; Torres y col., 1972)
En gatos 84% - 99% (Franjola y Matzner, 1982; Alcaíno y col., 1992)
• Contaminación ambiental:
- Rangos de contaminación  0 a 1,3% como 66 – 68,3% (De la Fé y col.,
2006)
- Santiago, Chile  33,3% (Castillo y col., 1999)
- Temuco, La Araucanía, Chile  48,3% helmintos de los que un 12,4%
corresponde a Toxocara spp. (Armstrong y col., 2011)
• Toxocariosis humana:
- Nivel mundial  2,6% - 83% (Maguiña y col., 2004)
- América Latina  7,3% - 39% (Maguiña y col., 2004)

8. ESTUDIO EPIDEMIOLÓGICO

9. TRANSMISIÓN
• Vía oral directa o geofagia
• Vía oral indirecta
(Archelli y Kozubsky, 2008).

10. SIGNOS CLÍNICOS
Las formas clínicas de la toxocariosis en humanos pueden ser
clasificadas de la siguiente manera: (Pawlowski, 2001)
i. Sistémica: Larva Migrans Visceral (LMV), completa o clásica
e incompleta.
ii. Compartimentada: Toxocariosis Ocular (TO) y Neurológica
(TN).
iii. Encubierta (TE).
iv. Asintomática (TA).
Santiago Pablo, 2015. Seguridad
alimentaria bromatología y
microbiología de los alimentos.

12. DIAGNÓSTICO
Actualmente, se debe tener en cuenta hasta cinco datos clínicos
para catalogar una toxocarosis sintomática: (Smith y col, 2009; Pawlowski,
2001).
I. Características de la historia del paciente
II. Signos y síntomas clínicos encontrados
III. Inmunoserología positiva
IV. Presencia de eosinofilia
V. Niveles incrementados de IgE total

13. PREVENCIÓN
• Control de la contaminación ambiental.
• Desparasitación de las mascotas.
• Lavado de manos continuo.
• Mantener limpia el área donde viven las mascotas.
• Educación de la población.

14. DATOS PUBLICADOS

15. • Prevalencia en Médicos
veterinarios de la VIII
Región.
Felipe Cábala 2014
7.5%
92.5%
Positivos
Negativos
20
14
6
5%
7.14%
6.6%
0 5 10 15 20 25
25-35 AÑOS
36-44 AÑOS
≥ 45 AÑOS
positivos Total
DATOS NO PUBLICADOS

16. 19
21
0
3
0
14.3%
0 5 10 15 20 25
MUJERES
HOMBRES
porcentaje Seropositivos Total
40
35
3
27
27
11.1%
6
6
0
2
2
0
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45
TOTAL
CON MASCOTA
POSITIVOS
No realiza Con protección Sin protección Total
• Prevalencia en Médicos
veterinarios de la VIII
Región.
Felipe Cábala 2014
DATOS NO PUBLICADOS

17. SEXO POSITIVOS / TOTAL PORCENTAJE
FEMENINO
2/28 7,1%
MASCULINO
0/12 0%
TOTAL
2/40 5%
Prevalencia en
estudiantes de
Medicina Veterinaria
Carolina Abarca
DATOS NO PUBLICADOS

18. POSITIVOS / TOTAL PORCENTAJE
SI
2/32 6,2%
NO
0/6 0%
NO CONTESTA
0/2 0%
TOTAL
2/40 5%
DATOS NO PUBLICADOS

19. POSITIVOS / TOTAL PORCENTAJE
SI
0/14 0%
NO
2/24 8,3%
NO CONTESTA
0/2 0%
TOTAL
2/40 8,3%
DATOS NO PUBLICADOS

20. TOXOPLASMOSISTOXOPLASMOSIS

21. SEM de un quiste cerebral en un ratón
©David Ferguson.
Taquizoítos (Trofozoítos)
© Dennis Kunkel Microscopy
Toxoplasma gondii es un protozoo, perteneciente al orden Coccidia y al
Phyllum Apicomplexa.
Se presenta en tres formas:
•Ooquiste que contiene esporozoítos.
•Taquizoíto, forma proliferativa.
•Bradizoíto, que vive en los quistes tisulares.
Ooquiste esporulado
© Facultad de Biología UCM
ETIOLOGÍA

22. Ciclo vital de Toxoplasma gondii (Koneman et al., 2004).
CICLO BIOLÓGICO

23. Según la Organización Mundial de la Salud (2006), existen 7,5 millones
de infectados y 55.185 nuevos casos por año. En América hay 80 a 100
millones de personas en riesgo de adquirir la enfermedad (Payá et al.,
2012).
Prevalencia mundial de infección gestacional y congénita de T. gondii
(Pappas et al., 2009)
EPIDEMIOLOGÍA

24. 20 - 40% Población adulta - E.E.U.U.
(Sanz, 2010)

25. 50 a 80% Población Adulta –
Europa.
(Sanz, 2010) 54% Mujeres embarazadas -
Francia.
(Rosso et al., 2007)
12% Mujeres embarazadas -
Suecia.
(Rosso et al., 2007)

26. 58% - Costa Rica*
52,5% - mujeres gestante-
Colombia*
47% - Población general*******
35,8% - Trinidad y Tobago*
43 a 60% - Venezuela*
44% - Mujeres gestantes - La Habana, Cuba*
56,6% - Minas Gerais – Brasi
56,6% - Paraná – Brasil*
20% - Región de los Lagos – Chile*****
10% - Med. Vet - Región del Bíobío – Ch
37 y 25%. Población general - Chile*****
60% - Benef. Anim. Región del Bíobío – C
36,9%. Población adulta joven - Chile******* Reátegui y Vela, 2011.
** Poblete, 2013.
*** Soto, 2013.
**** Zamorano et al. 1998
***** Payá et al., 2012
****** Canales et al., 2010
******* Blanco et al., 2011

27. VÍA DE ADQUISICIÓN FORMA INFECTANTE
Digestiva*
Congénita**
Transfusión de sangre o leucocitos
Transplante de órganos
Inoculación accidental en
laboratorio
Reinfección endógena***
Quiste, ooquiste*
Taquizoíto**
Taquizoítos
Quistes, taquizoítos
Taquizoítos, quistes, ooquistes
Quistes, taquizoítos***
Principales modos de
transmisión de T.
gondii en humanos
(Carrada-Bravo,
2004).
TRANSMISIÓN

28. •Toxoplasmosis sistémica congénita
•Toxoplasmosis sistémica adquirida
•Toxoplasmosis en el huésped inmunocomprometido
•Toxoplasmosis ocular (Mesa et al., 2011).
Toxoplasmosis ocular Toxoplasmosis cutánea Toxoplasmosis congénita
SIGNOS CLÍNICOS

29. INDIRECTAS
•TÉCNICA SABIN Y FELDMAN: Método clásico y específico, trabaja con parásitos vivos.
Los parásitos se tiñen con azul de metileno.
•INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA (IFI): Mide IgG , no requiere trabajar con parásitos
vivo. Se adhieren a la pared del parásito que observan fluorescentes.
•ENZYM LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY (ELISA): Detección de IgA específica
•INMUNOANÁLISIS QUIMIOLUMINISCENTE: IgA, IgG, IgM, técnica simple, suero.
DIRECTAS
•POLYMERASE CHAIN REACTION (PCR): Amplifica ADN del parásito. Indica le presencia
del parasito en liquido y tejidos.
•INOCULACIÓN Y CULTIVO: Aísla el parásito en infecciones agudas en sangre, LCR,
esputo y en tejidos infectados.
DIAGNÓSTICO

30. La eliminación diaria de las deposiciones contenidas en cajas de
arena, minimiza la infección con ooquistes (al menos 24 horas a
temperatura ambiente para esporular y ser infectantes) (López et al.,
2013).
De manera universal, son importantes el lavado frecuente de manos
e higiene en la manipulación de alimentos. No ingerir carne poco
cocida y frutas o verduras mal lavadas (Mora, 2011; Payá et al., 2012).
La toxoplasmosis congénita es una enfermedad prevenible mediante
el chequeo pregestacional y la adopción de medidas de profilaxis
primarias en las gestantes seronegativas (Baquero-Atigao et al., 2013).
Siempre se debe realizar un screening serológico en donantes y
receptores en trasplante de sangre y médula ósea (TMO). La
transmisión de un donante seropositivo a un receptor seronegativo es
posible pero muy infrecuente (Mora, 2011).
PREVENCIÓN

31. Toxoplasma
gondii Oocyst–
specific Antibodies
and Source of
Infection
Claudia A. Muñoz-Zanzi, Paulina Fry, Blaz Lesina,
and Dolores Hill
Infection source can determine cost-effective public
health interventions. To quantify risk of acquiring Toxoplas-
ma gondii from environmental sources versus from meat, we
examined serum from pregnant women in Chile. Because
43% had oocyst-specific antibodies, we conclude that con-
taminated meat remains the primary source of infection but
that environmental sources also pose substantial risk.
Toxoplasmosis is a zoonotic disease that occurs world-
wide and is caused by the protozoon Toxoplasma gon-
dii. The public health relevance of toxoplasmosis relates to
congenital (1) and postnatal infection (2–4). The distribu-
tion of postnatal infection is highly variable worldwide, or
even within a country, probably because of environmental,
socioeconomic, and cultural factors. Seroprevalence esti-
mates range from 11% in the United States (5) to >70% in
Brazil (6). Postnatal infection is caused by ingestion of un-
dercooked meat containing tissue cysts; ingestion of water,
fruits, vegetables, and shellfish contaminated with oocysts;
or unintentional ingestion of cat feces or soil that contain
(SSP), which is found only in the oocyst (sporozoite) stage
of the parasite (9,10).
The Study
We used 494 banked serum samples from pregnant
women in Valdivia Province, southern Chile, who had
participated in an unrelated study. T. gondii prevalence
in this population was high (39%). A convenience sample
was selected from among women who were at least 18
years of age at the time of their first prenatal visit at 1 of
5 public clinics, which served mostly low-income persons
from urban communities. Information available was age,
gestation time, residency (urban or rural), socioeconomic
status, and education level. Because of the small sample
size, p<0.1 was considered significant. The study protocol
(0901E57685) was approved by the University of Minne-
sota Institutional Review Board.
Past exposure to T. gondii was determined qualitatively
by immunoglobulin (Ig) G, detected by using a commercial
enzyme immunoassay kit (Toxoplasma IgG EIA, Bio-Rad
Laboratories, Redmond, WA, USA). According to the man-
ufacturer, sensitivity and specificity of this assay were 83%
and 93%, respectively. Approximate timing of infection for
patients with IgG-positive samples was ascertained by us-
ing a commercial solid-phase enzyme immunoassay (Toxo-
plasma gondii IgG Avidity EIA; Ani Labsystems Ltd. Oy,
Vantaa, Finland) to determine avidity (binding ability) in-
dex. According to manufacturer recommendations, results
were interpreted as follows: avidity <15%, acute infection;
15%–30%, possible infection during the past 6 months; and
>30%, infection not within the past 3 months.
A Western blot assay developed at the Animal Para-
sitic Diseases Laboratory of the US Department of Agri-
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Boletín chileno de parasitología
versión impresa ISSN 0365-9402
Bol. chil. parasitol. v.55 n.3-4 Santiagojul. 2000
http://dx.doi.org/10.4067/S0365-94022000000300012
Frecuencia de anticuerpos anti Toxoplasm a gondii
en gatos de la ciudad
de Valdivia, Chile.
Francisca Ovalle1, Alejandro García2, Jorge Thibauth3 y Myriam Lorca2
1) Facultad de Ciencas Veterinarias y Pecuarias, Universidad Autral de
Chile. 2) Programa de Parasitología, ICBM, Facultad de Medicina, Universidad
de Chile. 3) Departamento de Inmunología, Facultad de Ciencias Veterinarias
y Pecuarias, Universidad Austral de Chile.
Abstract
Frequency of anti-Toxoplasm a gondii antibodies in cats from Valdivia city,
Chile
Toxoplasmosis is a parasitic zoonosis. The importance of the cat as related to
De un total de 97 gatos muestreados y analizados mediante la prueba de IFI, 32 resultaron positivos a la presencia
de IgG específica anti-T. gondii, lo que corresponde a una prevalencia de 33,0% (Tabla I).
TABLA I
Resultados serológicos obtenidos mediante IFI para toxoplasmosis, según edad y sexo en 97 gatos de
Valdivia, Chile.
Edad Machos Hembras Total
(Años) N exami- Positivos N exami- Positivas N exami- Positivos
nados nadas nados
N % N % N %
0-1 22 5 22,7 17 03 17,7 39 08 20,5
2-4 28 8 40,0 27 10 37,0 47 18 38,3
0>5 04 1 25,0 07 05 71,4 11 06 54,6
Total 46 140 30,4 51 18 35,3 97 32 33,0
*Resultados estadísticamente significativos. p<: 0.001
La prevalencia en machos alcanzó a 30,4 y a 35,3% en hembras, no apreciándose diferencias
estadísticamente significativas. De acuerdo a los resultados obtenidos según edad y sexo y además los
resultados en cada grupo etáreo, la prevalencia osciló entre 20,5 y 54,6%, observándose una correlación
estadística con la edad.
En la Tabla II se pueden observar las manifestaciones clínicas que se constataron en 16 de los 97 gatos
DATOS PUBLICADOS

32. DATOS PUBLICADOS

33. 2
16
10,00%
2
13
14,30%0
11
0%
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
Positivos Total Porcentaje
25-34 años 35-44 años ≥ 45 años • Prevalencia de
Toxoplasma
Médicos
veterinarios de la
VIII Región
• Tesis Marcela
Poblete
DATOS NO PUBLICADOS

34. Hábitos alimenticios Positivos/ total Porcentaje
Carne y verduras 4/38 10,53%
Sólo verduras 0/2 0%
Total 4/40 10,53%
Poseen mascotas total Porcentaje
Si 35 87,5%
No 5 22,5%
Total 40 100%
DATOS NO PUBLICADOS

35. Recolección Heces Positivos/total Porcentaje
Con Protección 1/6 16,6%
Sin Protección 3/27 11,1%
No realiza 0/7 0%
• Prevalencia de
Toxoplasma Médicos
veterinarios de la VIII
Región
• Tesis Marcela Poblete
DATOS NO PUBLICADOS

36. • Prevalencia de
Toxoplasma en
criaderos felinos
• Tesis Cristian Leal
DATOS NO PUBLICADOS

37. • Prevalencia de
Toxoplasma en
criaderos felinos
• Tesis Cristian Leal
DATOS NO PUBLICADOS

38. • Prevalencia de
Toxoplasma en
criaderos felinos
• Tesis Cristian Leal
DATOS NO PUBLICADOS

39. 22%
78%
Positivos Negativos
94%
6%
Mayores de 21 años Menores de 21 años
• Prevalencia de
Toxoplasma en
estudiantes
• Tesis Andrea
Cuevas
DATOS NO PUBLICADOS

40. 25%
75%
Hombres Mujeres
• Prevalencia de
Toxoplasma en
estudiantes
• Tesis Andrea
Cuevas
DATOS NO PUBLICADOS

41. 23%
7%
44%
0%
77%
93%
56%
100%
SI EM P RE CASI SI EM PREOCASI ON ALM EN T E N UN CA
Positivos Negativos
• Prevalencia de
Toxoplasma en
estudiantes
• Tesis Andrea
Cuevas
22% 19%
37%
78% 81%
63%
CON P R OT ECCI ÓN SI N P R OT ECCI ÓN N O R EALI ZA
Positivo Negativo
DATOS NO PUBLICADOS

42. 12%
63%
19%
6%
LIMPIEZA DE HECES
Con Protección Sin Protección No Realiza No Posee Mascotas
• Prevalencia de Toxoplasma en estudiantes
• Tesis Andrea Cuevas
DATOS NO PUBLICADOS

43. 24
61,5
0
10
20
30
40
50
60
70
N° de individuos
Porcentaje de individuos seropositivos
• Prevalencia de Toxoplasma en
operarios de planta faenadora
Tesis Natalia Soto
DATOS NO PUBLICADOS

44. 66,60% 35,90%
87,20% 94,90%
17
8
19
1
Guantes Mascarilla Desinfección del material Lavado de manos luego de
manipular carne
Uso/Realiza Seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS

45. 33%
64,10%
12,80% 5,10%
7
16
5
1
Guantes Mascarilla Desinfección del Material Lavado de Manos luego de
manipular carne
No Uso/ No Realiza Seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS

46. 12,80% 41% 100%2
10
24
consumo de carne
cruda
consumo de carne
poco cocida
lavado de manos
antes de comer
si consume/realiza seropositivos
87,20% 59%
22
14
consumo de carne
cruda
consumo de carne
pococ cocida
lavado de manos
antes de comer
no consume/ realiza seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS

47. Tiempo
(años)
N°
individuos
Positivos Prevalencia
1 12 7 58,3%
3 9 6 66,6%
5 6 3 50%
10 1 0 0%
>10 11 8 72,7%
2
37
1
23
0
5
10
15
20
25
30
35
40
Hasta 3 días 4-7 días
N° individuos Seropositivos
DATOS NO PUBLICADOS

48. INFORMACIÓN ZOONOSIS