BACILOS MOTT
micobacterias no tuberculosas
Docente: Oskar A. Palacios
Andrea Fabiola Nava Juarez 330062
Armando René Camuñez Castillo 330177
Andrea Reyes Gonzalez 330170
1
INTRODUCCIÓN
Este término se hizo para
denominar a las micobacterias
diferentes de los bacilos de la
tuberculosis o la lepra, causante
de la micobacteriosis humana.
También se les conoce como
micobacterias atípicas o
ambientales
MOTT: Mycobacteria
Other Than Tubercule
Bacilli.
Puede colonizar piel y tracto
respiratorio principalmente
2
Taxonomía
Dominio Bacteria
Filo Actinobacteria
Orden Actinomycetales
Suborden Corynebacterineae
Familia Mycobacterium
Género Mycobacterium
Especie kansasii, marinum, szulgai, gordonae,
scrofulaceum, ulcerans, haemophilum,
fortuitum y chelonae.
(Miñanaa, J & Pellicera R. 2011) 3
HISTORIA
Wolinsky
“Micoaterias no
tuersulosas”
1979
Lester
“Micobacterias
inclasifiadas”.
1963
Hauduroy
“Micobacterias
anonimas”
1959
Timpe y
Runyon
“Micobacterias
atípicas”
1954
Borrel y
Marmoreck
“Bacilos
paratuberculos”
1901
Moeller
“Bacilos
seudotuberculosos”
1899
4
5
CLASIFICACIÓN
Morfología Microscópica
● Son bacilos Gram +.
● Ácido alcohol resistente.
● Tamaño entre 0.2 - 0.7 micras.
● Ligeramente curvados.
● Aerobios estrictos.
● Inmóviles.
● No formadoras de esporas.
● No capsulados.
● Crecimiento lento.
Casal, M. (2003)
6
Ziehl-Neelsen o la de
Kinyoun
Tinción de
auramina con
bacilos
amarillo-naranja
fluorescentes.
Morfología Macroscópica
Casal, M. (2003)
7
La aparición de colonias color
crema, rugosas o cremosas,
amarillentas, es indicio de
cultivo positivo, el cual será
confirmado realizando la
coloración de Ziehl-Neelsen a
un extendido del mismo, para
determinar la presencia de
bacilos ácido-alcohol
resistentes (BAAR).
8
Mycobacterium kansasii
Medios de Lowenstein Jensen:
● Colonias amarillas
● Incubación 37°C
● Crecimiento lento (7 días)
Medio middlebrook 7H11 C36:
● Incubación de 21 días a 35°C en
condiciones de Luz
9
Mycobacterium marinum
Medio de Lowenstein-Jensen:
● Colonias amarillentas; lisas y rugosas
● Temperatura óptima de 30-32 °C
● Crecimiento en menos de 7 días
● Fotocromógena
10
Mycobacterium szulgai y gordonae
Escotocromógenas
Crecimiento lento
11
Mycobacterium haemophilum
(NO CROMÓGENAS)
Bacilo corto y curvo
Crece entre los 28 y 32°C
Colonias rugosas o lisas después de 2 a 4 semanas
de incubación
Requiere hemoglobina o hemina
10% de CO2
Puede crecer en agar chocolate o Columbia con
sangre de carnero al 5%
Pirazinamidasa (+)
Complejo Mycobacterium
fortuitum-chelonae
(DE CRECIMIENTO RÁPIDO)
Microorganismos cosmopolitas de suelo y acuáticos,
que contaminan suministros de agua.
Resistente a desinfectantes clorados y pueden estar
en ambientes hospitalarios
Pueden crecer en agar MacConkey sin cristal violeta
M. fortuitum reduce nitratos a nitritos y asimila hierro
Pruebas Bioquímicas
Valdés, F., & Cid, A. (2004). 12
13
Valdés, F., & Cid, A. (2004).
14
Valdés, F., & Cid, A. (2004).
15
Valdés, F., & Cid, A. (2004).
Factores de Virulencia
Micolactonas Macrólidos integrantes de toxinas lipofílicas que
sirven para la sobrevivencia
Glicopeptidolipidos Evasión de los mecánicos microbianos
Lipomananas (LMs) y lipoarabinomananas (LAMs) Promueven la supervivencia de las micobacterias,
regulan la producción de citocinas proinflamatorias
y antiinflamatorias, inhibidoras la actividad de los
macrófagos y la proliferación de linfocitos T
Ácido micolicos Brindan una gran resistencia al daño químico y a la
deshidratación, así como la baja permeabilidad a
diversos antibióticos y a sustratos hidrofílicos.
Glicanos Interacciona con los macrofagos y neutrofilos
2,3-Di-O-acetiltrehalosa (DAT) Unión a las células del hospedero
Fosfolipasa C Degradación de la membrana del fagosoma
16
Mecanismo de Patogenicidad
No se sabe con exactitud
cuál es el tipo de
interacción entre el
huésped y la micobacteria.
(
17
Vías de entrada
1. Respiratorias
2. Digestias
3. Inoculación directa
Desencadena la
señalización de la IL -12
que producen linfocitos
T y NK
No se transmite de
persona a persona
INF-y estimula a los
macrofagos a matar a las
bacterias
Las células dendríticas
capturan y procesan el
antígeno.
18
(Valdés & Cid, 2004)
Cuadro clínico
● Infecciones cutáneas
(esporotricosis)
● Enfermedad diseminada
Fotocromogenas Mycobacterium kansasii, Mycobacterium
marinum
● Granulomatosis cutanea
Pápula rojiza lentamente se
transforma en nódulo doloroso
En codos, dedos de las manos,
rodillas y piernas.
Pueden romperse y de expuesta una
llaga.
(Quezada,2013) 19
Escotocromógenas Mycobacterium szulgai, Mycobacterium
gordonae y Mycobacterium scrofulaceum
● Afecta tendones y huesos
● Pápulas y úlceras en la piel
● Lesiones cutáneas
● Infección pulmonar
● Lesiones óseas
● Endocarditis
● Bacteremia
● Afecta el SNC y médula ósea
● Linfadenitis Unilateral que
afecta a los ganglios altos del
cuello
● Apariencia de tumoración no
dolorosa con cicatrización
visible
20
(Quezada,2013)
No cromógenas M. ulcerans y M. haemophilum
● Úlcera de Buruli (UB)
lesión cutánea en
extremidades. Pre-ulcerativo
Ulcerativo
Curación
● Lesiones cutáneas múltiples
en extremidades en forma de
pápulas, abscesos y úlceras.
21
(Quezada,2013)
22
Crecimiento rápido M. fortuitum y M. chelonae
Infecciones de piel y subcutáneas que se deben a
inoculación tras un traumatismo accidental, cirugía
o inyección.
● Absceso piógeno con una reacción
inflamatoria aguda y supuración o reacción
inflamatoria crónica, con alteración y forma
de fístulas.
(Quezada,2013)
Diagnóstico
23
BACILOSCOPIA
➢ Tinción Ácido Alcohol resistente
➢ Tinciones fluorescentes
➢ Tinción de Ziehl-Neelsen
CULTIVOS
➢ Solidos Lowenstein-Jensen, Kudoh Ogawa
BIOLÓGICOS MOLECULARES
➢ PCR 100% sensibles y específicas, por no ser comunes en el
organismo del cuerpo sin estar causando enfermedad
Una toma de muestra suele ser del lugar de la lesión
(Herrera,2020)
Tratamiento
24
● Claritromicina 500 mg cada 12 horas por tres meses
● Cirugía depende del diagnóstico (extirpación de la
lesión)
● Amikacina
● Ciprofloxacino
(Valdés & Cid, 2004)
25
(Valdés & Cid, 2004)
26
(Valdés & Cid, 2004)
Epidemiología
La tasa anual de MNT en EUA es
de 7.2 casos por cada 100,000
personas.
La tasa de enfermedad
pulmonar se reporta de 5.6
casos por cada 100,000
personas.
La tasa de enfermedad
diseminada y la linfadenitis son
de 0.3 casos por cada 100,000
personas.
Seguido de enfermedad de piel
y tejidos blandos con una tasa
de 0.9 por cada 100,000
personas.
Valdés, F., & Cid, A. (2004).
27
Profilaxis
(Miñanaa, J & Pellicera R. 2011).
28
Referencias
● http://www.cenetec.salud.gob.mx/descargas/gpc/CatalogoMaestro/IMSS-650-14-
MicobacteriosisNotuberculosa/650GER.pdf
● Patric R. Murray Ken S. Rosenthal Michael A. Pfaller. (2006). Microbiologia Medica Quinta
edición. España: Gea consultoria
● http://es.slideshare.net/MichelleQuezada/bacilos-mott
● http://www.dermatolarg.org.ar/index.php/dermatolarg/ article/viewFile/798/453
● Miñanaa, J. J. C., & Pellicera, R. G. (2011). Enfermedades infecciosas y microbiología clínica.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 29(Supl 5), 66-75.
● Casal, M. (2003). Cómo denominar a las micobacterias diferentes a Mycobacterium
tuberculosis ya M. leprae. Enfermedades infecciosas y microbiologia clinica, 21(6), 296-298.
● Valdés, F., & Cid, A. (2004). Micobacterias atípicas. Actas Dermo-Sifiliográficas, 95(6),
331–357. https://www.actasdermo.org/es-micobacterias-atipicas-articulo-13064028
● herrera, blanca E. (2020). Micobacterias atípicas [YouTube Video]. In YouTube.
https://www.youtube.com/watch?v=Ict4M1VHORg
29

BACILOS MOTT.pdf

  • 1.
    BACILOS MOTT micobacterias notuberculosas Docente: Oskar A. Palacios Andrea Fabiola Nava Juarez 330062 Armando René Camuñez Castillo 330177 Andrea Reyes Gonzalez 330170 1
  • 2.
    INTRODUCCIÓN Este término sehizo para denominar a las micobacterias diferentes de los bacilos de la tuberculosis o la lepra, causante de la micobacteriosis humana. También se les conoce como micobacterias atípicas o ambientales MOTT: Mycobacteria Other Than Tubercule Bacilli. Puede colonizar piel y tracto respiratorio principalmente 2
  • 3.
    Taxonomía Dominio Bacteria Filo Actinobacteria OrdenActinomycetales Suborden Corynebacterineae Familia Mycobacterium Género Mycobacterium Especie kansasii, marinum, szulgai, gordonae, scrofulaceum, ulcerans, haemophilum, fortuitum y chelonae. (Miñanaa, J & Pellicera R. 2011) 3
  • 4.
  • 5.
  • 6.
    Morfología Microscópica ● Sonbacilos Gram +. ● Ácido alcohol resistente. ● Tamaño entre 0.2 - 0.7 micras. ● Ligeramente curvados. ● Aerobios estrictos. ● Inmóviles. ● No formadoras de esporas. ● No capsulados. ● Crecimiento lento. Casal, M. (2003) 6 Ziehl-Neelsen o la de Kinyoun Tinción de auramina con bacilos amarillo-naranja fluorescentes.
  • 7.
    Morfología Macroscópica Casal, M.(2003) 7 La aparición de colonias color crema, rugosas o cremosas, amarillentas, es indicio de cultivo positivo, el cual será confirmado realizando la coloración de Ziehl-Neelsen a un extendido del mismo, para determinar la presencia de bacilos ácido-alcohol resistentes (BAAR).
  • 8.
    8 Mycobacterium kansasii Medios deLowenstein Jensen: ● Colonias amarillas ● Incubación 37°C ● Crecimiento lento (7 días) Medio middlebrook 7H11 C36: ● Incubación de 21 días a 35°C en condiciones de Luz
  • 9.
    9 Mycobacterium marinum Medio deLowenstein-Jensen: ● Colonias amarillentas; lisas y rugosas ● Temperatura óptima de 30-32 °C ● Crecimiento en menos de 7 días ● Fotocromógena
  • 10.
    10 Mycobacterium szulgai ygordonae Escotocromógenas Crecimiento lento
  • 11.
    11 Mycobacterium haemophilum (NO CROMÓGENAS) Bacilocorto y curvo Crece entre los 28 y 32°C Colonias rugosas o lisas después de 2 a 4 semanas de incubación Requiere hemoglobina o hemina 10% de CO2 Puede crecer en agar chocolate o Columbia con sangre de carnero al 5% Pirazinamidasa (+) Complejo Mycobacterium fortuitum-chelonae (DE CRECIMIENTO RÁPIDO) Microorganismos cosmopolitas de suelo y acuáticos, que contaminan suministros de agua. Resistente a desinfectantes clorados y pueden estar en ambientes hospitalarios Pueden crecer en agar MacConkey sin cristal violeta M. fortuitum reduce nitratos a nitritos y asimila hierro
  • 12.
  • 13.
    13 Valdés, F., &Cid, A. (2004).
  • 14.
    14 Valdés, F., &Cid, A. (2004).
  • 15.
    15 Valdés, F., &Cid, A. (2004).
  • 16.
    Factores de Virulencia MicolactonasMacrólidos integrantes de toxinas lipofílicas que sirven para la sobrevivencia Glicopeptidolipidos Evasión de los mecánicos microbianos Lipomananas (LMs) y lipoarabinomananas (LAMs) Promueven la supervivencia de las micobacterias, regulan la producción de citocinas proinflamatorias y antiinflamatorias, inhibidoras la actividad de los macrófagos y la proliferación de linfocitos T Ácido micolicos Brindan una gran resistencia al daño químico y a la deshidratación, así como la baja permeabilidad a diversos antibióticos y a sustratos hidrofílicos. Glicanos Interacciona con los macrofagos y neutrofilos 2,3-Di-O-acetiltrehalosa (DAT) Unión a las células del hospedero Fosfolipasa C Degradación de la membrana del fagosoma 16
  • 17.
    Mecanismo de Patogenicidad Nose sabe con exactitud cuál es el tipo de interacción entre el huésped y la micobacteria. ( 17 Vías de entrada 1. Respiratorias 2. Digestias 3. Inoculación directa Desencadena la señalización de la IL -12 que producen linfocitos T y NK No se transmite de persona a persona INF-y estimula a los macrofagos a matar a las bacterias Las células dendríticas capturan y procesan el antígeno.
  • 18.
  • 19.
    Cuadro clínico ● Infeccionescutáneas (esporotricosis) ● Enfermedad diseminada Fotocromogenas Mycobacterium kansasii, Mycobacterium marinum ● Granulomatosis cutanea Pápula rojiza lentamente se transforma en nódulo doloroso En codos, dedos de las manos, rodillas y piernas. Pueden romperse y de expuesta una llaga. (Quezada,2013) 19
  • 20.
    Escotocromógenas Mycobacterium szulgai,Mycobacterium gordonae y Mycobacterium scrofulaceum ● Afecta tendones y huesos ● Pápulas y úlceras en la piel ● Lesiones cutáneas ● Infección pulmonar ● Lesiones óseas ● Endocarditis ● Bacteremia ● Afecta el SNC y médula ósea ● Linfadenitis Unilateral que afecta a los ganglios altos del cuello ● Apariencia de tumoración no dolorosa con cicatrización visible 20 (Quezada,2013)
  • 21.
    No cromógenas M.ulcerans y M. haemophilum ● Úlcera de Buruli (UB) lesión cutánea en extremidades. Pre-ulcerativo Ulcerativo Curación ● Lesiones cutáneas múltiples en extremidades en forma de pápulas, abscesos y úlceras. 21 (Quezada,2013)
  • 22.
    22 Crecimiento rápido M.fortuitum y M. chelonae Infecciones de piel y subcutáneas que se deben a inoculación tras un traumatismo accidental, cirugía o inyección. ● Absceso piógeno con una reacción inflamatoria aguda y supuración o reacción inflamatoria crónica, con alteración y forma de fístulas. (Quezada,2013)
  • 23.
    Diagnóstico 23 BACILOSCOPIA ➢ Tinción ÁcidoAlcohol resistente ➢ Tinciones fluorescentes ➢ Tinción de Ziehl-Neelsen CULTIVOS ➢ Solidos Lowenstein-Jensen, Kudoh Ogawa BIOLÓGICOS MOLECULARES ➢ PCR 100% sensibles y específicas, por no ser comunes en el organismo del cuerpo sin estar causando enfermedad Una toma de muestra suele ser del lugar de la lesión (Herrera,2020)
  • 24.
    Tratamiento 24 ● Claritromicina 500mg cada 12 horas por tres meses ● Cirugía depende del diagnóstico (extirpación de la lesión) ● Amikacina ● Ciprofloxacino (Valdés & Cid, 2004)
  • 25.
  • 26.
  • 27.
    Epidemiología La tasa anualde MNT en EUA es de 7.2 casos por cada 100,000 personas. La tasa de enfermedad pulmonar se reporta de 5.6 casos por cada 100,000 personas. La tasa de enfermedad diseminada y la linfadenitis son de 0.3 casos por cada 100,000 personas. Seguido de enfermedad de piel y tejidos blandos con una tasa de 0.9 por cada 100,000 personas. Valdés, F., & Cid, A. (2004). 27
  • 28.
    Profilaxis (Miñanaa, J &Pellicera R. 2011). 28
  • 29.
    Referencias ● http://www.cenetec.salud.gob.mx/descargas/gpc/CatalogoMaestro/IMSS-650-14- MicobacteriosisNotuberculosa/650GER.pdf ● PatricR. Murray Ken S. Rosenthal Michael A. Pfaller. (2006). Microbiologia Medica Quinta edición. España: Gea consultoria ● http://es.slideshare.net/MichelleQuezada/bacilos-mott ● http://www.dermatolarg.org.ar/index.php/dermatolarg/ article/viewFile/798/453 ● Miñanaa, J. J. C., & Pellicera, R. G. (2011). Enfermedades infecciosas y microbiología clínica. Enferm Infecc Microbiol Clin, 29(Supl 5), 66-75. ● Casal, M. (2003). Cómo denominar a las micobacterias diferentes a Mycobacterium tuberculosis ya M. leprae. Enfermedades infecciosas y microbiologia clinica, 21(6), 296-298. ● Valdés, F., & Cid, A. (2004). Micobacterias atípicas. Actas Dermo-Sifiliográficas, 95(6), 331–357. https://www.actasdermo.org/es-micobacterias-atipicas-articulo-13064028 ● herrera, blanca E. (2020). Micobacterias atípicas [YouTube Video]. In YouTube. https://www.youtube.com/watch?v=Ict4M1VHORg 29