Este documento describe el método para determinar la presencia de coliformes totales y fecales en los aparatos de un gimnasio universitario. El método implica tomar muestras de hisopos de los aparatos, cultivarlas en caldos selectivos, y realizar pruebas confirmatorias para identificar la presencia de coliformes después de incubar las muestras a temperaturas específicas. Los resultados positivos indicarían la presencia de coliformes en los aparatos del gimnasio.
INTRODUCCIÓN
Para el estudio satisfactorio del frotis sanguíneos, es necesario colorearlos. En la mayoría de los laboratorios los colorantes más empleados para la tinción hematológica se basan en el de Romanowsky constituido fundamentalmente con la mezcla de eosina (ácido) y azul de metileno (básico). Además se han incorporado el empleo de derivados por oxidación del azul de metileno que se conoce con el nombre de azures (A, B, C). Son los azures los responsables de la coloración púrpura o roja de ciertas estructuras.
Tanto la eosina como el azul de metileno son muy sensibles a las variaciones de pH de las diferentes estructuras celulares, de forma que las que tienen carácter básico fijan la eosina mientras que las que poseen propiedades ácidas fijan principalmente el azul de metileno. Esto explica que las estructuras basófilas se tiñan de color azul mientras que los competente acidófilas adquieren un color rosado. La diferente afinidad de ciertas granulaciones citoplasmáticas por dichos colorantes permite clasificar a los leucocitos polimorfonucleares.
TINCIÓN DE WRIGHT
Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.
La tinción de Wright.
Es de gran trascendencia clínica ya que gracias a ella es capaz de identificarse diversas estructuras en una célula así como la morfología y en su caso patología celular no solo de las células del sistema inmunológico sino de todas aquellas que componen la sangre ya sea en un paciente sano o con un estado patológico.
MATERIALES
Colorante Wright
Laminas porta objeto
Laminas cubre objetos
Aceite de inmersión
Agua destilada
Gotero
Rejilla
Materiales extracción de muestra:
• Guantes
• Algodón
• Ligadura
• Jeringa
• Tubo lila con EDTA
• Plumón
• Alcohol
• Capilar
EQUIPO
o Microscopio óptico con luz incorporada.
MUESTRA
Sangre periférica
EXTRACCIÓN DE LA MUESTRA SANGUÍNEA.
• Cuando el paciente esté cómodo echamos un vistazo a sus brazos para decidir un sitio para la punción. El brazo debe ser extendido y lo relajado posible.
• Palpamos la vena para averiguar sus características (tamaño, elasticidad o rigidez, determinar si de desplaza o no) y su curso.
• Limpiamos con alcohol la zona elegida para la punción.
• Colocamos el torniquete, este puede ayudarnos para decidir dónde pincha, pedir al paciente de cerrar el puño para aumentar el volumen de sangre intravenosa (Un tiempo de compresión demasiado largo causa la acumulación de sangre y ciertas sustancias en la vena que pueden alterar el resultado de
Cartilla para recuento de coliformes alta sensibilidad petrifilmegrandam
Cartilla Alta sensibilidad Coliformes.Petrifilm
Tomado de:
http://multimedia.3m.com/mws/mediawebserver?mwsId=66666UuZjcFSLXTtMxMy4xTtEVuQEcuZgVs6EVs6E666666--&fn=HSCC%20Interp%20Guide_sp.pdf , consultado en línea 28/02/2012
Metodo de la reductasa, flora total y colimetriaGuadalupeMonGar
Con el mètodo de la reductasa se determina el nùmero de horas de reducciòn del azul de metileno e indirectamente el nùmero de bacterias presentes en la leche
Flora Total determina el contaje total de bacterias en leche
Colimetrìa determina el contaje de bacterias coliformes en leche
INTRODUCCIÓN
Para el estudio satisfactorio del frotis sanguíneos, es necesario colorearlos. En la mayoría de los laboratorios los colorantes más empleados para la tinción hematológica se basan en el de Romanowsky constituido fundamentalmente con la mezcla de eosina (ácido) y azul de metileno (básico). Además se han incorporado el empleo de derivados por oxidación del azul de metileno que se conoce con el nombre de azures (A, B, C). Son los azures los responsables de la coloración púrpura o roja de ciertas estructuras.
Tanto la eosina como el azul de metileno son muy sensibles a las variaciones de pH de las diferentes estructuras celulares, de forma que las que tienen carácter básico fijan la eosina mientras que las que poseen propiedades ácidas fijan principalmente el azul de metileno. Esto explica que las estructuras basófilas se tiñan de color azul mientras que los competente acidófilas adquieren un color rosado. La diferente afinidad de ciertas granulaciones citoplasmáticas por dichos colorantes permite clasificar a los leucocitos polimorfonucleares.
TINCIÓN DE WRIGHT
Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.
La tinción de Wright.
Es de gran trascendencia clínica ya que gracias a ella es capaz de identificarse diversas estructuras en una célula así como la morfología y en su caso patología celular no solo de las células del sistema inmunológico sino de todas aquellas que componen la sangre ya sea en un paciente sano o con un estado patológico.
MATERIALES
Colorante Wright
Laminas porta objeto
Laminas cubre objetos
Aceite de inmersión
Agua destilada
Gotero
Rejilla
Materiales extracción de muestra:
• Guantes
• Algodón
• Ligadura
• Jeringa
• Tubo lila con EDTA
• Plumón
• Alcohol
• Capilar
EQUIPO
o Microscopio óptico con luz incorporada.
MUESTRA
Sangre periférica
EXTRACCIÓN DE LA MUESTRA SANGUÍNEA.
• Cuando el paciente esté cómodo echamos un vistazo a sus brazos para decidir un sitio para la punción. El brazo debe ser extendido y lo relajado posible.
• Palpamos la vena para averiguar sus características (tamaño, elasticidad o rigidez, determinar si de desplaza o no) y su curso.
• Limpiamos con alcohol la zona elegida para la punción.
• Colocamos el torniquete, este puede ayudarnos para decidir dónde pincha, pedir al paciente de cerrar el puño para aumentar el volumen de sangre intravenosa (Un tiempo de compresión demasiado largo causa la acumulación de sangre y ciertas sustancias en la vena que pueden alterar el resultado de
Cartilla para recuento de coliformes alta sensibilidad petrifilmegrandam
Cartilla Alta sensibilidad Coliformes.Petrifilm
Tomado de:
http://multimedia.3m.com/mws/mediawebserver?mwsId=66666UuZjcFSLXTtMxMy4xTtEVuQEcuZgVs6EVs6E666666--&fn=HSCC%20Interp%20Guide_sp.pdf , consultado en línea 28/02/2012
Metodo de la reductasa, flora total y colimetriaGuadalupeMonGar
Con el mètodo de la reductasa se determina el nùmero de horas de reducciòn del azul de metileno e indirectamente el nùmero de bacterias presentes en la leche
Flora Total determina el contaje total de bacterias en leche
Colimetrìa determina el contaje de bacterias coliformes en leche
Nuevo vídeo en mi canal de YouTube
Hola a todos. les dejo la cuarta parte de "La microbiología de los alimentos". Esta serie de vídeos, pretenden convertirse en una base real y consistente para el profesional que recién comienza a transitar por el laboratorio de alimentos, o transformarse en una herramienta de consulta para el bagaje intelectual del especialista. Esperando sea del agrado y de la utilidad de todos ustedes, les sugiero que se suscriban y que me dejen sus críticas y sus comentarios. Muchas gracias y buena jornada.
https://youtu.be/80dS0OEWmXc
Similar a Detreminacion de coliformes totales y fecales en los aparatos de del gimnasio de la universidad nacional de ingenieria (20)
Detreminacion de coliformes totales y fecales en los aparatos de del gimnasio de la universidad nacional de ingenieria
1. DETREMINACION DE COLIFORMES TOTALES Y FECALES EN LOS APARATOS DE
DEL GIMNASIO DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE INGENIERIA
METODOLOGIA: METODO DEL HISOPADO O DE LAS TORUNDAS
Todas las operaciones deberán efectuarse en absolutas condiciones de asepsia
1. Preparar en un matraz 100mL agua Peptonada con TWIN80, para luego verter 10ml
de esta solución en tubos de ensayo. Llevar al auto clave a una temperatura de
127℃ por 15 minutos.
2. Recoger y seleccionar el área de las muestras de los aparatos del gimnasio de la
UNI. Los hisopos estériles se remoja en la solución que se preparó (agua
Peptonada con TWIN80) para luego ser frotado en forma horizontal, vertical e
inclinado. Luego, inocularlas en la solución (agua Peptonada con TWIN80). Colocar
en un cooler hasta su análisis en el laboratorio.
3. Agitar vigorosamente la muestra alrededor de 20 minutos para lograr una
distribución uniforme de los microorganismos que se recogieron en el gimnasio.
4. Dependiendo del origen de la muestra y el contenido bacteriano esperado, preparar
diluciones de agua peptonada.
5. Preparar las diluciones para cada muestras, con una pipeta estéril tomar una
alícuota de 1 mL de la muestra original y llevarlo a uno de los tubos conteniendo 9
mL de agua peptonada de dilución estéril, obteniendo de esta manera una dilución
de10−1.
6. Agitar el tubo de la dilución 10−1 y con otra pipeta estéril tomar una alícuota de 1
mL y llevarlo a otro tubo con 9 ml de agua peptonada de dilución estéril para obtener
una dilución de 10−2
7. Inocular asépticamente con 1 mL de muestra por triplicado, tubos de fermentación
conteniendo caldo lactosado o caldo lauril triptosa, a partir de las últimas 2 diluciones
y conservar todas las anteriores en refrigeración por si se requiere su utilización
posterior
8. Incubar todos los tubos a una temperatura de 35 °C durante 24horas.
9. Después de 24 horas de incubación efectuar una primera lectura para observar si
hay tubos positivos, es decir, con producción de ácido, si el medio contiene un
indicador de pH, turbidez y producción de gas en el interior de la campana Durham.
10. Al hacer esta verificación es importante asegurarse que la producción de gas sea
resultado de la fermentación de la lactosa, en cuyo caso se observará turbidez en
el medio de cultivo, y no confundir con burbujas de aire.
11. Para evitar este tipo de confusiones es recomendable revisar las campanas
Durham antes de proceder a la inoculación y desechar aquellos tubos cuyas
2. campanas contengan burbujas de aire o de alguna manera eliminar éstas y así
poder utilizarlos.
12. De los tubos que en la primera lectura den positivos, ya se pueden hacer las
pruebas confirmatorias para coliformes totales y coliformes fecales.
13. En caso de no apreciarse crecimiento en el resto de los tubos, continuarán en
incubación 24 horas más.
14. Después de 48 horas (± 2h) a partir de la inoculación, se hace la lectura final.Si
pasadas 48 h tampoco se aprecia crecimiento ni producción de gas, los tubos se
toman como negativos.
INTERPRETACIÓN
Si el total de tubos son NEGATIVOS: El examen se da por terminado, reportando la
AUSENCIA DE COLIFORMES TOTALES Y FECALES en la muestra analizada.
Todos aquellos tubos que den POSITIVOS para prueba presuntiva se anotarán
convenientemente y se procederá a realizar la PRUEBA CONFIRMATORIA para
Coliformes Totales y Fecales.
PRUEBA CONFIRMATORIA PARA COLIFORMES TOTALES
1. A partir de cada uno de los tubos que han resultado positivos en la prueba presuntiva,
agitándolos para homogeneizar, inocular con tres asadas tubos conteniendo caldo Lactosa
Bilis Verde Brillante (LBVB).
2. Incubar durante 48 ± 3 h a 35 ± 0.5 °C.
3. Después de la incubación observar la presencia de turbidez y de gas.
INTERPRETACIÓN
Si se observa turbidez y producción de gas: La prueba se considera POSITIVA,
debiendo anotar el número de tubos positivos para posteriormente hacer el cálculo del
NMP.
Si en ninguno de los tubos se observa producción de gas, aun cuando se observe
turbidez: Se consideran NEGATIVOS, estableciéndose el Código 0,0,0 para efecto del
cálculo del NMP
Si todos los tubos dan negativos ó todos dan positivos, con base en los grados de
dilución analizados, considerar la necesidad de repetir el análisis a partir de grados de
dilución menores (mayores volúmenes de muestra) ó mayores (menores volúmenes de
muestra), respectivamente.
3. PRUEBA CONFIRMATORIA PARA COLIFORMES FECALES
1. A partir de cada uno de los tubos que han resultado positivos en la prueba presuntiva,
agitándolos para homogeneizar, inocular con tres asadas en placas Pretty conteniendo agar
endo. (Escherichia coli).
2. Incubar durante 24 horas a 44.5 ± 0.2 °C. y después de este período,
observar presencia de turbidez y gas.
INTERPRETACIÓN
Si se observa colonias: La prueba se considera POSITIVA, debiendo anotar el número
de tubos positivos y establecer el código para posteriormente hacer el cálculo del NMP.
Si no se observa producción de gas, aun cuando se observe turbidez .Se consideran
negativos, estableciéndose el Código 0,0,0 para efecto del cálculo del NMP.
Si todos los tubos dan negativos o todos dan positivos, con base en los grados de
dilución analizados, considerar la necesidad de repetir el análisis a partir de grados de
dilución menores (mayores volúmenes de muestra) ó mayores (menores volúmenes de
muestra), respectivamente.