INTRODUCCIÓN
Para el estudio satisfactorio del frotis sanguíneos, es necesario colorearlos. En la mayoría de los laboratorios los colorantes más empleados para la tinción hematológica se basan en el de Romanowsky constituido fundamentalmente con la mezcla de eosina (ácido) y azul de metileno (básico). Además se han incorporado el empleo de derivados por oxidación del azul de metileno que se conoce con el nombre de azures (A, B, C). Son los azures los responsables de la coloración púrpura o roja de ciertas estructuras.
Tanto la eosina como el azul de metileno son muy sensibles a las variaciones de pH de las diferentes estructuras celulares, de forma que las que tienen carácter básico fijan la eosina mientras que las que poseen propiedades ácidas fijan principalmente el azul de metileno. Esto explica que las estructuras basófilas se tiñan de color azul mientras que los competente acidófilas adquieren un color rosado. La diferente afinidad de ciertas granulaciones citoplasmáticas por dichos colorantes permite clasificar a los leucocitos polimorfonucleares.
TINCIÓN DE WRIGHT
Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.
La tinción de Wright.
Es de gran trascendencia clínica ya que gracias a ella es capaz de identificarse diversas estructuras en una célula así como la morfología y en su caso patología celular no solo de las células del sistema inmunológico sino de todas aquellas que componen la sangre ya sea en un paciente sano o con un estado patológico.
MATERIALES
Colorante Wright
Laminas porta objeto
Laminas cubre objetos
Aceite de inmersión
Agua destilada
Gotero
Rejilla
Materiales extracción de muestra:
• Guantes
• Algodón
• Ligadura
• Jeringa
• Tubo lila con EDTA
• Plumón
• Alcohol
• Capilar
EQUIPO
o Microscopio óptico con luz incorporada.
MUESTRA
Sangre periférica
EXTRACCIÓN DE LA MUESTRA SANGUÍNEA.
• Cuando el paciente esté cómodo echamos un vistazo a sus brazos para decidir un sitio para la punción. El brazo debe ser extendido y lo relajado posible.
• Palpamos la vena para averiguar sus características (tamaño, elasticidad o rigidez, determinar si de desplaza o no) y su curso.
• Limpiamos con alcohol la zona elegida para la punción.
• Colocamos el torniquete, este puede ayudarnos para decidir dónde pincha, pedir al paciente de cerrar el puño para aumentar el volumen de sangre intravenosa (Un tiempo de compresión demasiado largo causa la acumulación de sangre y ciertas sustancias en la vena que pueden alterar el resultado de
Quiero compartir la información que recopilé, ya que estuve dudando por la variación de las fuentes y afirmaciones. Después de haber verificado que esto es correcto, decidí subirlo para facilitarle la vida a alguien. ¡Espero sirva de ayuda!
I. OBJETIVOS:
Adiestrar al alumno en la preparación de muestras parasitologías.
Diferenciar y observar las muestras parasitologías en heces.
Identificar los distintos elementos normales en las heces por medio de la observación microscópica con la finalidad de diferenciarlos posteriormente de las formas parásitas que puede encontrarse en un diagnóstico.
Quiero compartir la información que recopilé, ya que estuve dudando por la variación de las fuentes y afirmaciones. Después de haber verificado que esto es correcto, decidí subirlo para facilitarle la vida a alguien. ¡Espero sirva de ayuda!
I. OBJETIVOS:
Adiestrar al alumno en la preparación de muestras parasitologías.
Diferenciar y observar las muestras parasitologías en heces.
Identificar los distintos elementos normales en las heces por medio de la observación microscópica con la finalidad de diferenciarlos posteriormente de las formas parásitas que puede encontrarse en un diagnóstico.
Parte 02 del Módulo V del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Dr. Pedro Mercado Martinez
Fecha: 27 de Setiembre de 2015. Trujillo - Perú.
Parte 02 del Módulo V del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Dr. Pedro Mercado Martinez
Fecha: 27 de Setiembre de 2015. Trujillo - Perú.
ESPERMOGRAMA FISIOLOGIA DEL LIQUIDO SEMINAL.pptxAnaLarroza3
PPT SOBRE FISIOLOGIA DEL LIQUIDO SEMINAL, ANALISIS DEL SEMEN, FASE PRE ANALITICA, ANALITICA Y POS ANALITICA INCLUYENDO PARAMETROS ESTABLECIDOS POR EL MANUAL DE LA OMS EN SU 6ta EDICION
El hemocultivo es una herramienta diagnóstica esencial que se realiza para determinar la presencia de microorganismos, fundamentalmente bacterias y hongos, en una muestra de sangre.
Son órganos vitales que realizan muchas funciones con el fin de mantener la sangre limpia y químicamente balanceada.
Cada día procesan alrededor de 200lt de sangre para eliminar 2 litros de productos de desecho y de agua sobrante (ORINA), este fluye a la vejiga por los conductor (URETERES), La vejiga almacena la orina hasta que usted va al baño.
Los desechos que hay en la sangre provienen del desgaste normal de los tejidos y de la comida que ingiere
Su cuerpo utiliza la comida para producir energía y para autorepararse. Los desechos pasan ala sangre, si sus riñones no eliminan los desechos esto se acumularían en la sangre y dañarían s cuerpo.
Además de eliminar los desechos, los riñones producen tres hormonas importantes:
La eritroproteina, EPO.- estimula la producción de glóbulos rojos en la medula ósea.
La renina.- regula la presión arterial.
Forma activa de vitamina D.- mantiene en el cuerpo la cantidad de calcio necesarios para el hueso y para lograr un balance químico normal.
INTRODUCCIÓN
La velocidad de sedimentación globular (VSG) es una propiedad física de la sangre. Si se dispone de un tubo de sangre con anticoagulante y se deja en reposo se observa que después de un cierto tiempo las células se sedimentan formando 2 fases bien de limitadas que corresponden al plasma y a las células constituidas prácticamente en su totalidad por hematíes. La VSG es equivalente a la longitud del recorrido descendente de la parte superior de la columna de hematíes en un intervalo determinado de tiempo y varios factores contribuyen a este valor.
FUNDAMENTO
El test de velocidad de sedimentación globular (VSG) mide la sedimentación de eritrocitos en su plasma nativo.
VSG es un test no específico que puede ser utilizado para detectar un amplio rango de enfermedades y para monitorear el curso evolutivo de ciertas enfermedades crónicas como los procesos inflamatorios crónicos (artritis reumatoidea, polimialgia reumática y tuberculosis) o la respuesta a la terapia, por ejemplo con citostáticos (enfermedad de Hodgkin, linfomas y mieloma múltiple). Sin embargo en ocasiones cuadros tan graves como neoplasias y la cirrosis pueden presentar una VSG normal. Constituye uno de los tests más utilizados como screening en el laboratorio clínico. Se trata de un método sencillo para realizar y que requiere equipamiento simple.
OBJETIVO
o Que el estudiante realice el procedimiento de cómo se procesa la velocidad de sedimento globular.
o Que el estudiante conozca e investigue por que se realiza este tipo de prueba en el laboratorio clínico.
o Que el estudiante aprenda a realizar la lectura del VSG.
MATERIALES UTILIZADOS EN LA PRÁCTICA
Sangre total (extracción venosa)
Solución anticoagulante
Pipeta de eritrosedimentación (pipeta de Westergreen)
Soporte que inmovilice la pipeta en posición vertical.
Cronómetro
Aguja
Ligadura
Alcohol
Algodón
INDUMENTARIA
Mandilón
Guantes
INSTRUCTIVO PARA LA OBTENCIÓN DE SANGRE PERIFÉRICA POR PUNCIÓN VENOSA
1. Durante la toma de muestra deben guardarse las más estrictas normas de higiene.
2. El material descartable a usar se abrirá sólo al momento de su utilización y, una vez manipulado, no podrá guardarse nuevamente aun cuando se lo considere nuevo.
3. Una vez realizada la toma de muestra, descartar inmediatamente los materiales usados en recipientes para ese fin.
4. Al momento de hacer la extracción colocarse los guantes desechables, los cuales se mantendrán puestos durante todo el procedimiento.
5. Antes de iniciar la toma de muestra, tener TODO el material preparado.
6. Elegir una vena bien visible en el antebrazo, localizándola visualmente y por palpación.
Colocar el lazo y volver a palpar la vena, indicarle al paciente que abra y cierre el puño para facilitar la extracción.
7. Una vez identificada la vena, limpiar el área circundante con algodón empapado en alcohol. Dejar secar.
Tamaño celular.- Las células son las unidades básicas de los seres vivos. La mayoría son de pequeño tamaño por lo que es necesario el uso de instrumentos como los microscopio para su visualización.
LA INVENCIÓN DEL MICROSCOPIO SIGLO XVII..- Posibilito una serie de descubrimientos.
En 1665 Robert Hooke utilizo un microscopio óptico simple, examino una corteza, encontró que estaba compuesta por una masa de diminutas cámaras, que llamo células, en realidad solo vio las paredes celulares.
FACTORES DE RIESGO EN EL LABORATORIO CLÍNICO
LABORATORIO CLÍNICO: El laboratorio clínico es el lugar donde se realizan análisis clínicos que contribuyen al estudio, prevención, diagnóstico y tratamiento de problemas de salud.
Utilizan diversas metodologías de disciplinas como:Hematología
Inmunología
Microbiología
Química clínica (Bioquímica)
Se obtienen y se estudian muestras biológicas de :
Sangre
Orina
Heces
Liquido sinovial
Liquido cefalorraquídeo
Exudados faríngeos y vaginales.
La bioquímica es la ciencia que explica la vida utilizando el lenguaje de la química, estudia los proceso biológicos a nivel molecular empleando técnicas químicas, física y biológicas.
Objetivo: La bioquímica busca describir y explicar en términos moleculares todos los procesos químicos de las células vivas.
Importancia:Los estudios bioquímicos contribuyen al diagnostico, pronostico y tratamiento de la enfermedad.
HISTORIA Y APORTES DE LA BIOQUÍMICA
La historia de la bioquímica es relativamente joven, desde el siglo XIX se comenzó a direccionar una parte de la biología y la química, a la creación de una nueva disciplina: la bioquímica.
Pero la aplicación de la bioquímica comenzó hace 5000 años con la producción de un pan usando en un proceso conocido como fermentación anaerobias.
- La bioquímica clínica es la rama del laboratorio en la que se usan métodos químicos y bioquímicos para el estudio de las enfermedades.
- Bioseguridad.-Conjunto de mecanismos y medidas preventivas que permiten proteger la salud y la seguridad del personal de salud, de los pacientes y de la comunidad, frente a riesgos producidos por agentes biológicos, físicos, químicos y mecánicos.
- PRINCIPIOS BÁSICOS DE BIOSEGURIDAD. UNIVERSALIDAD:Asumir que toda persona esta infectada y que sus fluidos y todos los objetos que se han utilizado en su atención son potencialmente infectantes, ya que es imposible saber a simple vista, si alguien tiene o no alguna enfermedad.
-COLOCACION DE BARRERAS PROTECTORAS:
Un medio eficaz para evitar o disminuir el riesgo de contacto con fluidos o materiales potencialmente infectados, es colocar una “barrera” física, mecánica o química entre personas o entre personas y objetos.
Guantes, Mascarilla, Bata o Mandil, Gorro, Lentes
- PRECAUCIONES UNIVERSALES:
.Lavado de manos cada vez que este indicado.
.Uso de guantes, mascarillas, batas de protección, anteojos de protección, según los requerimientos de cada procedimiento.
.Uso de soluciones antisépticas.
.Estará prohibido usar las prendas protectoras fuera del laboratorio.
.En las zonas de trabajo estará prohibido comer, beber, fumar, aplicar cosméticos o manipular lentes de contacto.
.Estará prohibido almacenar alimentos o bebidas para consumo humano en las zonas de trabajo del laboratorio.
RIESGO QUIMICO
El Riesgo químico es aquel riesgo susceptible de ser producido por una exposición no controlada a agentes químicos la cual puede producir efectos agudos o crónicos y la aparición de enfermedades.
Los productos químicos también pueden provocar consecuencias locales y sistémicas según la naturaleza del producto y la vía de exposición. Según de que producto se trate, las consecuencias pueden ser graves problemas de salud en los trabajadores y la comunidad y daños permanentes en el medio natural.
- Los agentes químicos pueden ingresar al organismo a través de diferentes vías.
*VÍA DÉRMICA: algunos contaminantes producen intoxicación por absorción cutánea. Los tóxicos liposolubles se caracterizan por su toxicidad. La exposición puede suceder por contacto directo, por deposición (por ejemplo cuando el aerosol o el vapor impactan con la piel) o bien por contacto con superficies en las que se encuentra depositado el contaminante (tal como sucede durante el mantenimiento o limpieza de equipos, tras la aplicación de productos)
*VÍA DIGESTIVA: la intoxicación a través de esta vía se produce no sólo por la ingesta directa del producto, sino también por elementos (entre los más frecuentes se encuentran los lápices, biromes, etc.) o manos contaminadas que son llevados a la boca.
*VÍA INHALATORIA: el ingreso de un agente químico, a través de esta vía es muy frecuente, ya que los vapores o gases se mezcl
Today is Pentecost. Who is it that is here in front of you? (Wang Omma.) Jesus Christ and the substantial Holy Spirit, the only Begotten Daughter, Wang Omma, are both here. I am here because of Jesus's hope. Having no recourse but to go to the cross, he promised to return. Christianity began with the apostles, with their resurrection through the Holy Spirit at Pentecost.
Hoy es Pentecostés. ¿Quién es el que está aquí frente a vosotros? (Wang Omma.) Jesucristo y el Espíritu Santo sustancial, la única Hija Unigénita, Wang Omma, están ambos aquí. Estoy aquí por la esperanza de Jesús. No teniendo más remedio que ir a la cruz, prometió regresar. El cristianismo comenzó con los apóstoles, con su resurrección por medio del Espíritu Santo en Pentecostés.
evalaución de reforzamiento de cuarto de secundaria de la competencia lee
TINCIÓN DE WRIGTH - INFORME PRACTICA
1. “Año de la Diversificación Productiva y del Fortalecimiento de la Educación”
CITOLOGÍA SANGUINEA
INFORME PRÁCTICO
TEMA: TINCION DE WRIGTH
DOCENTE :
Blgo. Alfonso Bernuy Rodríguez
ALUMNO :
Sáenz Mayanchi Sergio
ESPECIALIDAD :
Laboratorio Clínico
SEMESTRE :
V
Iquitos – Perú
2015
2. PRACTICA Nº 01
TINCION DE WRIGTH
INTRODUCCIÓN
Para el estudio satisfactorio del frotis sanguíneos, es necesario colorearlos. En la mayoría
de los laboratorios los colorantes más empleados para la tinción hematológica se basan
en el de Romanowsky constituido fundamentalmente con la mezcla de eosina (ácido) y
azul de metileno (básico). Además se han incorporado el empleo de derivados por
oxidación del azul de metileno que se conoce con el nombre de azures (A, B, C). Son los
azures los responsables de la coloración púrpura o roja de ciertas estructuras.
Tanto la eosina como el azul de metileno son muy sensibles a las variaciones de pH de
las diferentes estructuras celulares, de forma que las que tienen carácter básico fijan la
eosina mientras que las que poseen propiedades ácidas fijan principalmente el azul de
metileno. Esto explica que las estructuras basófilas se tiñan de color azul mientras que los
competente acidófilas adquieren un color rosado. La diferente afinidad de ciertas
granulaciones citoplasmáticas por dichos colorantes permite clasificar a los leucocitos
polimorfonucleares.
TINCIÓN DE WRIGHT
Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es
una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de
metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El
amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y
favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.
La tinción de Wright. Es de gran trascendencia clínica ya que gracias a ella es capaz de
identificarse diversas estructuras en una célula así como la morfología y en su caso
patología celular no solo de las células del sistema inmunológico sino de todas aquellas
que componen la sangre ya sea en un paciente sano o con un estado patológico.
OBJETIVO
Identificar diversas células del Sistema Inmunológico. Realizar el diferencial
leucocitario del paciente al que se le realizó el frotis sanguíneo
Conocer las propiedades de las diferentes tinciones usadas para realizar el frotis
sanguíneo.
Conocer y entender cada uno de los pasos necesarios para realizar el frotis
sanguíneo.
Familiarizarse con el material de laboratorio y aprender su manipulación.
3. MATERIALES
Colorante Wright
Laminas porta objeto
Laminas cubre objetos
Aceite de inmersión
Agua destilada
Gotero
Rejilla
Materiales extracción de muestra:
Guantes
Algodón
Ligadura
Jeringa
Tubo lila con EDTA
Plumón
Alcohol
Capilar
EQUIPO
o Microscopio óptico con luz incorporada.
MUESTRA
Sangre periférica
4. PRACTICA Nº 01
TINCION DE WRIGTH
EXTRACCIÓN DE LA MUESTRA SANGUÍNEA.
Cuando el paciente esté cómodo echamos un vistazo a sus brazos para decidir un
sitio para la punción. El brazo debe ser extendido y lo relajado posible.
Palpamos la vena para averiguar sus características (tamaño, elasticidad o rigidez,
determinar si de desplaza o no) y su curso.
Limpiamos con alcohol la zona elegida para la punción.
Colocamos el torniquete, este puede ayudarnos para decidir dónde pincha, pedir
al paciente de cerrar el puño para aumentar el volumen de sangre intravenosa (Un
tiempo de compresión demasiado largo causa la acumulación de sangre y ciertas
sustancias en la vena que pueden alterar el resultado de algunas de las pruebas.)
Tomamos la aguja con el bisel hacia arriba y puncionamos la piel muy suave y
rápido movimiento. Pedimos al paciente que abra la mano.
Cuando hemos llenado y quitado el tubo, soltamos el torniquete y colocamos una
gaza o algodón sobre el sitio de la punción. Retiramos con cuidado la aguja.
Cuando ésta haya salido del brazo del paciente ejercemos presión en la gaza para
impedir que salga la sangre.
Por ultimo rotulamos adecuadamente el tubo y lo llevamos al laboratorio.
5. PRACTICA Nº 01
TINCION DE WRIGTH
METODOLOGÍA
Obtenida la muestra sanguínea procedemos a:
Preparar todo nuestro material y equipos de trabajo.
Limpiamos la lámina porta objeto para evitar grasas.
Con un gotero o un capilar obtenemos la muestra, y procedemos a colocar una
gota sobre el porta objeto
Con otra lámina (biselada) realizamos el frotis de esta. El extendido debe tener
cabeza, cuerpo y cola.
Rotulamos la lamina
Dejamos secar la lámina con el extendido sobre ella a medio ambiente
Ya seca la lámina colocamos sobre una rejilla la lámina y con el gotero
absorbemos el colorante Wright y cubrimos toda la superficie de la lámina.
Realizado esto, colocamos de 1 a 3 gotas de agua destilada sobre el colorante,
hasta que este forme un verde metálico. Esperamos 10 minutos.
Luego lavamos con agua de grifo la lámina con chorro leve. Sin tratar de que el
chorro dañe la tinción. Dejamos secar.
Ya seco. Colocamos una gota de aceite de inmersión sobre la tinción y ponemos
a observar al microscopio con el objetivo de inmersión 100x, condensador abierto
y diafragma arriba.
7. RESULTADOS:
o Los eritrocitos se observarán de color naranja o rosado.
o El citoplasma de los monocitos presentarán una tonalidad azul grisácea con
gránulo rojizos bastante finos y sus vacuolas características. El citoplasma de los
linfocitos presentará varias tonalidades azules. Los núcleos de los linfocitos y
neutrófilos aparecerán de color púrpura oscuro. Los núcleos de los monocitos de
color púrpura algo más claros (lila).
o Los gránulos de los eosinófilos son de color rojo-anaranjado intenso. Los gránulos
de los basófilos púrpura azulado muy oscuro. Los gránulos de los neutrófilos se
aprecian de color lila, bastante finos.
o Las plaquetas toman coloración violeta o púrpura.
OBSERVACIONES:
Los tiempos varían de acuerdo a cada lote o tiempo de maduración del colorante.
De ahí que si los frotis recién teñidos resultan demasiado pálidos se corrige
aumentando el tiempo de tinción o disminuyendo el tiempo de lavado.
Si en la preparación se observa precipitados de colorante puede ser debido a varias
causas: lavado insuficiente al final del proceso, utilización de porta o cubreobjetos
sucios, mala filtración del colorante, mala distribución del colorante a lo largo de
la extensión por no mantenerse en posición horizontal.
Durante la tinción el tampón fosfato controla el pH del colorante. Si el colorante
es demasiado ácido la extensión resultará demasiado rojiza y si por el contrario es
demasiado alcalina la precipitación presentará un aspecto azulado.