Ecografía y evaluación seminal en medicina veterinaria y zootecnia.

1. MEDICINAVETERINARIAY ZOOTECNIA
BIOTECNOLOGÍASREPRODUCTIVAS
“ECOGRAFÍA Y EVALUACIÓN SEMINAL”

2. DEFINICIÓN
Técnica
Ondasde sonidode altafrecuencia
Producenimágenesde tejidosblandosy órganos
internos
Visualizadosenla pantalladelecógrafo.

3. Apoyo en la
palpación rectal.
Constituye un medio de
diagnóstico en la dinámica de
las ondas foliculares,
desarrollo del cuerpo lúteo
Determinación del estado de
gestación precoz, sexado de las
crías y la evaluación de los
procesos patológicos del sistema
reproductor, entre otros usos.

4. Herramienta portátil de fácil traslado.
Apoyo al diagnóstico por palpación.
Acortamiento de intervalo generacional.
Estimación del efecto materno.
Importación y exportación del material
genético.
Congelación del material genético.
Costosa y de baja eficiencia.
Donadoras y receptoras deben ser
reproductivamente sanos.
Donadoras deben ser de calidad superior.
El equipo requiere cuidados especiales.

5. En MVZ se utiliza el ecógrafo denominado escáner
modo B, corte bidimensional y tiempo real con
transductores, un lineal, sensorial, convexo.
Como componentes accesorios pueden mencionarse:
cámara de vídeo, impresora térmica. Equipos modernos
que permiten la conexión de cámaras digitales y
archivos de datos e imágenes en disquetes

6. No devuelve ecos de retorno, cuando el haz llega a una
estructura anecoica, esta va a dejar pasar todo el tren
de ultrasonidos y es típico comportamiento del líquido,
Vejiga (Orina), Vesícula (Bilis), Vasos (Sangre), LCR
(Líquido céfalo-raquídeo), también estructuras
patológicas como los quistes simples, que tienen un
contenido acuoso, todas estas estructuras se van a ver
en la imagen en color negro.

7. Es toda aquella imagen que sea más oscura que el
tejido que tenga alrededor, tienden a un gris muy
oscuro y son multitud de estructuras las que se
ven así, tanto normales, como patológicas.
Dentro de la escala de grises del equipo, ambas
estructuras, aunque distintas anatómicamente,
tienen que verse igual, es decir, del mismo gris,
por ejemplo, el parénquima hepático y la corteza
renal son isoecogénicas, es decir, iguales, el
mismo gris.
Estas estructuras devuelven muchos ecos en su
interfaz, su aspecto no es blanco, pero tienden a
un gris muy claro, casi blanco, es decir, brillan
mucho y son multitud de estructuras las que se
ven así, tanto normales, como patológicas.

10. OVARIOS
Folículos
Cuerpo lúteo
Anecogénicos con borde
fino e irregular.
Forma circular con una cabeza más o menos prominente
en tono gris oscuro. Se identifica a partir de 2 o 3 días
después de la ovulación, y crece 1-2mm por día, hasta
su máximo tamaño 7 a 12 días post -ovulación.

11. DIAGNÓSTICO DE LA GESTACIÓN
Útero preñado
Es preferible realizar diagnósticos de gestación con una sonda transrectal a partir del día
30 de fecundación. Un diagnóstico positivo de preñez puede hacerse sin visualización del
embrión en la ecografía. Esto se realiza mediante la identificación del fluido alantoideo, las
membranas fetales y los placentomas.

12. SEXO DEL FETO
Mediante ecografía transrectal
Se evalúa los tubérculos genitales
55 a 60 días post ovulación con mayor precisión.
Entre la cola
y patas
traseras.
Detrás del
punto en que el
cordón umbilical
entra en el
cuerpo.

14. Al ingresar a la cavidad pelviana, se toma como referencia anatómica
la vejiga, y se localiza el útero inmediatamente por delante.
En la yegua, se debe realizar un seguimiento de cada cuerno y del
cuerpo, en forma lenta y continua, y en ambos sentidos (desde el
cuerpo hacia cada ovario, y viceversa).
El diagnóstico precoz se puede realizar a partir del día 9 post-
servicio, como una estructura esférica y anecogénica de 3 mm de
diámetro, aumentando a 10 mm el día 14, y visualizando dos polos
hiperecogénicos, además puede observarse el movimiento de la
vesícula dentro de la luz uterina.
Después del día 40, ya se pueden diferenciar estructuras como la
cabeza, grupa, miembros y cordón umbilical.

15. Debe realizarse a partir de los 55 días post servicio, tanto en
vacas como en yeguas, y consiste en detectar la ubicación del
tubérculo genital.
En el macho, migra desde su ubicación original entre los
miembros posteriores hacia delante, hasta ubicarse
inmediatamente por detrás de la inserción del cordón
umbilical, y dará origen al pene.
En la hembra, en cambio, migra hacia atrás, ubicándose
por debajo del inicio de la cola, originando el clítoris.

16. Los ovarios son fáciles de explorar.
En las yeguas, el folículo preovulatorio mide entre 35 y 60
mm, siendo monitoreado por el ecógrafo hasta determinar el
momento de la ovulación y posterior servicio o inseminación.
El cuerpo lúteo se identifica a partir de 2 o 3 días después de
la ovulación, y crece 1- 2mm por día, hasta su máximo
tamaño 7 a 12 días post-ovulación. Aparece más bien
grisáceo, y muchas veces con una pequeña cavidad central
con líquido.

18. -El líquido amniótico aparece como
fondo negro, y las estructuras
placentarias y fetales en tonos blancos.
-Los cotiledones de la placenta son
ecogénicos, se visualizan como una
rosquilla y contrastan con el fondo
negro del líquido amniótico.
-Si la hembra no está gestante aparece
un gris difuso uniforme.

19. Es la más utilizada.
Se realiza con el animal en pie.
Se coloca la sonda impregnada de gel
ecográfico en la región inguinal del flanco.
Se puede realizar a partir de los
30 días post cubrición.
Es más certero
cercano a los 40 días.

21. Los testículos, deben ser revisados mediante palpación detallada. Es
importante descartar anomalías que pueden llegar a afectar físicamente
el desarrollo de los testículos, como criptorquidia, hipoplasia, descenso
incompleto y tamaño reducido de los testículos. Se debe medir la
circunferencia escrotal que para predecir la producción de
espermatozoides, calidad seminal y la fertilidad en toros adultos.
Evaluar sus tres porciones (cabeza, cuerpo y cola), las cuales, en
condiciones normales, presentan una consistencia firme y
homogénea.

22. Se inspecciona forma, tamaño, pendulosidad, orificio y
aglutinación de pelos prepuciales además se palpará orificio
y cavidad prepucial en búsqueda de posibles abscesos,
cicatrices o adherencias que pueden provocar Fimosis o
Parafimosis.
En este punto se examinará integridad de la mucosa,
presencia de cicatrices, abscesos, hematomas, heridas,
papilomatosis, frenillo persistente, integridad del orificio
uretral, anillo de pelos. Una afección que es bastante común
en toros jóvenes es la papilomatosis o verruga, además los
tumores fibrosos son de menor casuística.

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El proceso inicia con un lavado en la parte ventro-abdominal de manera
descendente, utilizando un jabón neutro y abundante agua, realizando una
serie de masajes para remover cualquier tipo de suciedad presente y
posteriormente realizar el secado con papel toalla.
Posteriormente con una tijera se realiza el corte del exceso de
pelo del ostio prepucial, a una altura de 2 a 3 centímetros de la
base.
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se realiza el lavado con agua y jabón neutro, el secado se realiza
con papel toalla, finalizando con un lavado interno del prepucio
con una infusión de solución salina; estas labores se realizan con
el único fin de evitar la contaminación del semen, con algún tipo
de agente externo o por propias secreciones del toro.

24. CONDUCTA SEXUAL DEL TORO
Proestro: Guarda a la hembra Intenta montar sin lograrlo Estro: Reflejo de flehmen
Muestra de masculinidad Inicia la monta

25. COLECTA CON VAGINA ARTIFICIAL
La vagina artificial consiste en un tubo cilíndrico
de plástico rígido y resistente, de siete
centímetros de diámetro y 35-40 centímetros
de largo, recubierto internamente por una
camisa de goma que se dobla sobre los
extremos del cilindro formando una cámara que
se llena con agua caliente (45-46°) y aire, con fin
de proveer el estímulo adecuado de
temperatura y presión, logrando así la
eyaculación.

26. COLECTA CON ELECTROEYACULADOR
se hace uso de un electroeyaculador que es un
electrodo conectado a una batería que genera
estimulaciones rítmicas provocadas por
descargas no mayores a 20 voltios .
La técnica de electroeyaculación consiste en dar
pulsos eléctricos muy leves en la próstata y
vesículas seminales para que el animal presente
erección y eyaculación.

27. Se expresa en mililitros (ml), y su lectura se hace por medio de
un tubo colector graduado.
El valor para el eyaculado de toros es de aproximadamente 2 ml
en animales jóvenes y en animales adultos ≥ a 4 ml, llegando
hasta 12 ml.
Existen importantes variaciones en función del individuo, raza,
régimen sexual, estación del año, método de recogida

28. Se evalúa por medio de la visualización en el laboratorio.
El color del eyaculado depende del contenido de riboflavina,
siendo normalmente desde blanquecino marfil hasta amarillento,
una coloración rojiza, indica la mezcla con sangre fresca; si el
color es pardo, indica la presencia de sangre más vieja
(hemolizada), denominándose ambos tipos como hemospermia.
Una coloración gris indica contaminación, los eyaculados sin
espermatozoides tienen una coloración amarillo-verdosa y son
de apariencia acuosa, el pus en el eyaculado se reconoce
frecuentemente por la presencia de flóculos, denominándose
piospermia .

29. La densidad del semen varía desde un semen
acuoso, lechoso, lechoso cremoso, hasta un
cremoso, estando directamente relacionada con la
concentración.
DENSIDAD Y CONCENTRACIÓN
MB Cremoso, espeso 750.000 esp/mm3
B lechoso 400 a 750.000 esp/mm3
R leche aguada 250 a 400.000 esp/mm3
M translúcido 250.000 esp/mm3

30. 6.5 a 6.9 con un
promedio de 6.75.
Característico de cada especie.
Si se mezcla con la orina puede tomar un olor
urinoso
Si el olor se intensifica a un olor de
putrefacción, se debe a la mezcla de
productos purulentos y restos necróticos,

31. La cantidad total de espermatozoides por
eyaculado es un parámetro importante ya que
refleja indirectamente en condiciones de
colección seminal periódica la capacidad de
producción gonadal y de almacenamiento en las
reservas gonadales del reproductor
VALORES NORMALES
TORO 800.000 - 1.300.000 /mm3
CARNERO 1.000.000 - 2.500.000 /mm3
EQUINO 100.000 - 320.000/ mm3
VERRACO 100.000 - 440.000 mm3

32. La motilidad es uno de los parámetros más usados
en la evaluación de la calidad espermática;
describe el estado energético de los
espermatozoides. Es uno de los aspectos más
importantes para que logre la fertilización de la
célula espermática.
El movimiento en masa depende de tres factores:
concentración, porcentaje de células con
movimiento progresivo y velocidad de
movimiento de los espermatozoides
Se evalúa junto con la motilidad. La escala que se
utiliza es de 0 a 4, evaluando como 0 los
espermatozoides inmóviles y como 4 los que
avanzan rápidamente por el campo y son difíciles
de seguir visualmente. Dentro de estos
parámetros se consideran los puntos intermedios.
Se considera como valor mínimo aceptable un
vigor de 3.

33. El estudio de la viabilidad espermática normalmente se
basa en el análisis de la integridad de la membrana
plasmática de los espermatozoides, mediante el uso de
dos fluorocromos combinados: uno de ellos es capaz de
atravesar las membranas plasmáticas dañadas o
degeneradas, y por tanto permite identificar las células
muertas o en proceso de degeneración, mientras que el
otro es capaz de atravesar membranas celulares intactas
por lo tanto permite identificar la población de células
viables.

34. Se basa en la relación directa que hay entre la proporción
de espermatozoides anormales en el eyaculado, el tipo de
defecto morfológico y su relación con la fertilidad in vivo
de los toros.
Se necesita al menos, un buen porcentaje de
espermatozoides móviles y de ellos se espera que
entre 70 a 80% posea morfología normal. Los espermatozoides son traslucidos y virtualmente
invisibles al microscopio de luz directa, por lo que se
requiere del uso de colorantes que provean de un fondo
oscuro para visualizarlos.
Las anomalías que puedan generarse se clasifican en
anomalías en la cabeza, en el tracto intermedio y en la
cola.

35. Las muestras seminales con alta proporción de acrosomas
alterados o ausentes suelen tener una fertilidad baja.
Para determinar el estado del acrosoma se han usado desde hace
mucho tiempo diferentes tinciones. Entre éstas tenemos la tinción
de eosina/verde rápido, Giemsa y la de eosina/nigrosina, las
dobles y triples tinciones, basadas en la combinación del azul
tripán con otros colorantes.
En un espermatozoide que tenga el acrosoma en perfectas
condiciones se pueden distinguir tres regiones claramente
diferenciadas en la cabeza: la zona acrosomal, con un borde
apical, la zona post acrosomal y el segmento ecuatorial entre
ambas.
Acrosoma intacto
Acrosoma dañado