Laboratorio Clinico: Organizacion, Objetivos y Practica

Mireille Marmolejo Ochante
Exámenes de
laboratorio I

¿Qué tan crítico es el laboratorio?
El laboratorio juega un papel central en el cuidado de la salud.
70% de todas las decisiones médicas se basan en pruebas de laboratorio.
El objetivo del laboratorio es proporcionar a los médicos y otros profesionales de la salud
información para detectar enfermedades o predisposición a la enfermedad; confirmar o rechazar
un diagnóstico; establecer pronóstico; guiar el manejo del paciente; y monitorear la eficacia de
la terapia.
El laboratorio también juega un papel de liderazgo en educación e investigación,
diseño e implementación de tecnología de la información y mejora de la calidad.
Para lograr con éxito su objetivo, un laboratorio requiere médicos con experiencia científica y
técnica; manejo adecuado de recursos como: personal, equipos, suministros e instalaciones de
procesamiento; y tener habilidades de organización, gestión y comunicación.
Laboratorio Clinico: Organización, objetivos y practica. Laboratorio en el Diagnóstico clínico. Henry 23 Ed. Pag. 8-48.

El Médico Patólogo Clínico será responsable de la UPS Patología Clínica en los
establecimientos de salud desde la categoría II-1 hasta III-2, en establecimientos de
salud categoría I-3 y I-4, el responsable será el Tecnólogo Médico en Laboratorio
Clínico y/o Biólogo.
NTS N° 072-MINSA/DGSP-V.01. Norma Tecnica de salud de la Unidad Productora de Servicios de Patologia Clinica. MINSA.

Área de Atención Pre analítica
Área de recepción,
orientación, identificación,
registro de solicitud de
análisis clínicos, asesoría
médica preanalítica, toma de
muestra, verificación de la
misma y distribución al área
analítica.
Área Analítica
Área donde se realizan los
procedimientos de análisis,
debidamente estandarizados y
validados para el uso clínico,
según necesidades.
Área de Atención Post analítica
Área de transferencia de
resultados, validación del
proceso analítico, correlato e
interpretación clínica,
asesoría médica post analítica
y entrega de resultados.
NTS N° 072-MINSA/DGSP-V.01. Norma Tecnica de salud de la Unidad Productora de Servicios de Patologia Clinica. MINSA.

Sistema de tubo al vacío:
Presenta un tubo de plástico o vidrio, una
aguja y un adaptador, que se utiliza para
asegurar la aguja y el tubo.
Los tubos contienen una cantidad
preestablecida de un aditivo sellado al vacío
recubiertos con silicona para disminuir la
posibilidad de hemolisis y evitar que el
coágulo se adhiera a las paredes laterales.
Existen tubos de diferentes tamaños que
contienen diversos aditivos.
Principios de la colección de sangre. Hematologia Clinica. Mary Turgeon. 2017.
Venopunción

Agujas:
Diseñadas para encajar en el dispositivo de sujeción del tubo al vacío mediante una rosca o para
adherirse en los extremos de las jeringas.
Tienen una funda de goma que impide que la sangre escurra en el dispositivo de sujeción.
El extremo de la aguja tiene una punta con un lado inclinado (bisel), que deben mirar hacia
arriba cuando se inserta la aguja.
>número de calibre < tamaño del orifício.
El tamaño de aguja más común para la venopunción en los adultos es el calibre 21 con una
longitud deI pulgada (2,4cm).
Torniquete:
Proporciona una barrera contra el flujo de la
sangre venosa con el objeto de localizar una vena
con mayor facilidad.
El torniquete debe aplicarse de 3 a 4 pulgadas por
encima del en el lugar de la punción venosa y se
deja por no más de 1 minuto antes de realizar la
venopunción.

Jeringas:
Consta de un barril, graduado en mililitros, y un émbolo.
Las agujas de las jeringas tienen una punta en un extremo y
una abertura cubica en el otro extremo que se conecta al
cilindro de la jeringa.
Es importante colocar la aguja firmemente a la jeringa para
evitar que entre aire en el sistema.
Las jeringas pueden ser útiles para extraer sangre de
pacientes pediátricos, geriátricos, u otros pacientes con venas
diminutas, frágiles o "rodantes" que no sería capaz de
soportar la presión de vacío de Tubos de vacío.
Con una jeringa, la cantidad de presión ejercida es controlado
por el flebotomista tirando lentamente hacia atrás émbolo.
Para prevenir la hemólisis se utilizan dispositivos de
transferencia, solo el vacío del tubo (y no el émbolo) debe
utilizarse para transferir la sangre del jeringa en el tubo de
vacío.

El antiséptico cutáneo más común es el
alcohol al 70%.
Se limpia el sitio de la flebotomía en un
movimiento circular, comenzando en el
centro y trabajando hacia afuera.
Se permite que el área se seque al aire
antes de la venopunción para que el
paciente no experimente una sensación
de ardor después de la inserción de la
aguja y para prevenir contaminación de
la muestra con alcohol.
Blood Specimen Collection. Cap. 1: Introduccion a la Hematologia. Hematologia: Fundamentos y aplicaciones. Rodack. Pag. 20-33.
Técnica de recolección de muestra sanguínea

El flebotomista debe usar un antiséptico sin
alcohol para recolectar sangre durante un
examen de alcoholemia en sangre.
Cuando se prepara un sitio estéril para la
recogida de muestras para hemocultivo, se
utiliza yodopovidona 10% o clorhexidina,
por al menos 30 segundos en contacto con
la piel para minimizar la riesgo de
contaminación accidental del hemocultivo.

Patrón "H", las tres venas que se utilizan, en el orden de
preferencia, son (1) la vena cubital mediana, que conecta las venas
basílica y cefálica en la antecubital fosa; (2) la vena cefálica,
ubicada en el exterior (lateral) aspecto de la fosa antecubital en el
lado del pulgar de la mano; y (3) la vena basílica, ubicada en la
cara interna (medial) de la fosa antecubital.
En el patrón "M", el orden de preferencia es la (1) vena mediana,
(2) vena cefálica accesoria y (3) la vena basílica.
Las venas cefálica y basílica solo deben ser utilizado si las venas
medianas cubitales o medianas no son prominentes después de
revisar ambos brazos.
La vena basílica es la última opción debido al mayor riesgo de
lesión del nervio mediano y/o punción accidental de la arteria
braquial, ambas ubicadas en estrecha proximidad a la vena basílica.
Patrón H
Patrón M

Si es necesario, el flebotomista
puede hacer que el paciente haga
puño después de la aplicación del
torniquete para que las venas
vuelvan a ser prominentes.
Si un vena no se puede localizar
en ninguno de los brazos, puede
ser necesario examine las venas
de la superficie dorsal de la mano.
Las venas del interior de la
muñeca nunca debe usarse debido
al alto riesgo de lesiones a
tendones y nervios en esa área.

Complicaciones
de
la
flebotomia
• Hematoma
• Complicación más común
• Causado por la fuga de una pequeña cantidad de sangre en el tejido alrededor del lugar de la
punción.
• Pueden causar dolor y una posible compresión nerviosa.
• También puede ocurrir cuando el flebotomista no quita el torniquete antes de retirar la aguja o no
aplica suficiente presión al sitio después de la venopunción.
• Se previene aplicando directamente presión en el lugar de la venopunción con un apósito al menos
2 minutos.
• Síncope
• Complicación frecuente.
• El flebotomista siempre debe preguntar al paciente si ha tenido episodios previos de desmayo
durante o después de la extracción de sangre antes de realizar la venopunción.
• Si el paciente comienza a desmayarse, el flebotomista debe retirar y desechar la aguja
inmediatamente, aplicar presión en el sitio con una gasa, bajar la cabeza del paciente y aflojar
cualquier ropa apretada y avisar a urgencias.

Hemoconcentración
Hemólisis
•Aumento de la concentración de células, moléculas más
grandes y analitos en la sangre como resultado de un cambio
en el equilibrio hídrico.
•Puede ser causada por dejar el torniquete en el brazo del
paciente durante demasiado tiempo.
•El torniquete no debe permanecer en el brazo durante más de
1 minuto.
•Ruptura de glóbulos rojos con el consiguiente escape de
hemoglobina que tornan al plasma o el suero un color rosa o
rojo.
•También puede ocurrir si:
•Flebotomista usó una aguja demasiado pequeña durante la
extracción
•Si extrajo la sangre a través de un hematoma existente
•Si retrocedio demasiado rápido en el émbolo de una jeringa
•Si forzo rápidamente el paso de la sangre a un tubo por medio
de una jeringa
•Mezclando vigorosamente un tubo
•Contaminando la muestra con alcohol o agua al momento de
la punción.
•Puede ocurrir fisiológicamente como resultado de anemias
hemolíticas.
•Muestras hemolizadas pueden alterar los resultados de los
niveles de potasio, lactato deshidrogenasa y aspartato
aminotransferasa o TGO.

Alergias
•Algunos pacientes pueden ser
alérgicos a sustancias
antisépticas cutáneas y
cintas adhesivas.
•El flebotomista debe usar
una cinta hipoalergénica o
aplique presión manualmente
hasta que el sangrado se ha
detenido por completo.
•El flebotomista debe
preguntar al paciente si tiene
sensibilidad al látex antes del
procedimiento.
Daño en el nervio
•El flebotomista debe
seleccionar las venas
adecuadas para la
venopunción y no debe
sondear a ciegas el brazo con
la aguja o intentar reubicar
la aguja lateralmente.
•Puede producir dolor agudo,
hormigueo o entumecimiento
en el brazo.
•El flebotomista debe retirar y
desechar inmediatamente la
aguja, aplicar presión con
una gasa y extraer la sangre
del otro brazo.

Edema
Obesidad
Venas dañadas, con cicatrices y/o ocluidas
Cateter intravenoso
•Hinchazón causada por una acumulación anormal de
líquido en los espacios intercelulares de los tejidos.
•Debe evitarse los sitios edematosos para la venopunción.
•En pacientes obesos, las venas pueden no ser fácilmente
visibles ni de palpar.
•Deben ser evitadas porque no permiten que la sangre fluya
libremente y puede dificultar la obtención de una muestra
aceptable.
•Debe evitarse si es posible.
•No hay alternativa, se debe extraer sangre por debajo de
la vía intravenosa con el torniquete colocado también
debajo del sitio IV.
•Antes de la venopunción, el flebotomista debe pedirle a la
enfermera que detenga la infusión durante 2 minutos antes
de extraer la muestra.
•El flebotomista debe anotar en el tubo que la muestra se
obtuvo de un brazo que tenia infusion intravenosa reciente

Cambio de postura produce concentración
sanguínea por la acumulación de moléculas
grandes. Aumentos significativos en pruebas para
lípidos y proteínas.
La actividad muscular eleva los valores de las pruebas de
creatinina, proteínas, CPK, TGO o AST y LDH. También
activa la coagulación y fibrinolisis e incrementa las
plaquetas.
Estrés y ansiedad producen un aumento
transitorio de los leucocitos y el equilibrio
acido base.

El ritmo circadiano afecta los niveles de cortisol,
disminuyendo en la tarde mientras que el hierro y los
eosinófilos aumentan en la tarde.
Si se ingirió alimentos menos de 2
horas antes de la toma de muestra
produce un aumento transitorio en
pruebas de glucosa y lípidos. Además
el suero toma un aspecto turbio o
lipemico que puede causar
interferencias en pruebas de glucosa,
sodio y hemograma.
Fumar antes de realizarse la toma
de muestra sanguínea eleva los
niveles de leucocitos y cortisol. El
tabaquismo crónico disminuye la
función pulmonar y eleva los
niveles de hemoglobina, además
que por el deterioro de la
circulación puede dificultar la
toma de muestra.
Blood Specimen Collection. Cap. 1: Introccuion a la Hematologia. Hematologia: Fundamentos y aplicaciones. Rodack. Pag. 20-33.

El personal de laboratorio debería
recibir las muestras en el plazo de
45 minutos después de haber sido
recogidas, lo que permitirá realizar
puntualmente su procesamiento.
Abstenerse de agitar la muestra
para minimizar la hemolisis.

Encargado del transporte de oxigeno a los tejidos
Intervienen en la coagulación
e integridad tisular
Cumplen funciones de defensa del huésped
Granulocitos intracitoplasmáticos: neutrófilos, basófilos y eosinófilos
Divididos en células T (Capacidad de
destrucción citotóxica CD8 o
presentadora de antígenos CD4) y B
(Encargadas de sintetiza
anticuerpos)
Encargados de funciones de fagocitosis en circulación y tejidos

Conteo de eritrocitos, leucocitos y plaquetas
Solución salina: Solución isotónica
que diluye y permite la separación de
los eritrocitos y plaquetas
Leucocitos - Solución de Türk: Solución hipotónica compuesta por un
colorante (violeta de genciana al 1 % (tiñe el núcleo de los leucocitos) y
ácido acético. El ácido acético hemoliza los eritrocitos y el colorante
tiñe los leucocitos.

Eritrocito maduro:
Disco bicóncavo de 8 µm flexible que
permite una deformidad que puede
atravesar capilares hasta 2,8 um de
diámetro. Tiene una vida media útil de
100 a 120 días.
Se tiñe de color rojo-amarronado con
Wright y rosa con Giemsa, siendo el tercio
central de un color mas pálido que la
periferia.

Macrocítico:
Diámetro mayor de 8,2µm. Producido por un defecto en el núcleo en
su división mitótica durante la eritropoyesis asociado a deficiencia de
vitamina B12 o folato; o por incremento de eritropoyetina que
incrementa la síntesis de hemoglobina, aumentando la liberación de
reticulocitos en sangre periférica. Presente en anemia
mmegaloblástica, síndrome mielodisplásico, hepatopatía crónica, falla
de medula ósea y reticulocitosis.
Microcítico:
Diámetro menor de 6,2µm. Asociado a disminución de síntesis de
hemoglobina, síntesis de globulina deficiente o mutación
mitocondrial que afecta el grupo hemo. Presente en anemia por
deficiencia de hierro, síndrome de malabsorción, anemia de
enfermedad crónica, sideroblástica y hemoglobinopatías
(Talasemias HbE).
Anisocitosis:
Variación incrementada de tamaño
de eritrocitos.
Presente en anemia hemolítica, por
deficiencia de hierro y
megaloblástica. Normocítico:
Diámetro entre 6,2 a 8,2µm.
Variación del tamaño
del eritrocito

Hipocromico:
Coloración pálida del eritrocito donde la parte central excede
1/3 del diámetro. Indica disminución de síntesis de
hemoglobina, asociada con deficiencia de hierro.
Normocromico:
Coloración rojiza con tonalidad ligeralmente mas clara en el
centro. Determina la cantidad de hemoglobina en sangre.
Variación del color del eritrocito
Policromatofilia:
Presencia de eritrocitos nucleados en sangre periférica.
Presente en reticulocitosis.
Anisocromia:
Variación de coloración en sangre.

Poiquilocitosis:
Múltiples formas en sangre periférica.
Presente en anemia severa.
Variación de la forma del eritrocito
Bite cells o eritrocitos mordidos o degmacitos:
Presentan un porción faltante en la membrana
del eritrocito con la apariencia de mordida.
Presente en deficiencia de G6PD.
Eliptocitos u ovalocitos:
Forma de salchicha o elongada que perdió su
integridad de membrana. Presente en
Eliptocitosis hereditaria, anemia hemolítica,
deficiencia de hierro o vitamina B12 o acido
folico, rasgos de sickle cell, y talasemia.

Burr cells o Equinocitos:
Tienen forma espiculada y forma de cuarto de luna, son
menos esféricas que los acantocitos. Presente en
hemorragia, ulcera gástrica y peptica, carcinoma gástrico,
insuficiencia renal, deficiencia de piruvato kinasa y uremia.
Helmet cell o esquitocitos:
Tiene forma similar a un casco formadas en el bazo.
Presente en anemia hemolítica microangiopática y
macroangiopatica; CID, quemaduras extensas.
Acantocitos:
Forma espinosa con prolongaciones espiculadas
distribuidas irregularmente en la membrana. Presente
en cirrosis, anemia hemolítica, uso de heparina,
hemangioma hepático, hepatitis neonatal y post-
esplenectomia.
Eritrocitos crenados:
Forma espinosa con prolongaciones espiculadas
distribuidas irregularmente en la membrana en
menor proporción que los acantocitos.

Esferocitos:
Pierde su forma de disco bicóncavo y adopta una
forma redonda compacta que promueve su rápida
destrucción. Presente en anemia hemolítica,
esferocitosis hereditaria, reacciones post
transfusionales, CID, enfermedad hemolítica del RN.
Dacriocitos o en lagrima:
Mas pequeña que un eritrocito normal en forma
de lagrima. Presente en síndrome
mieloproliferativo, anemia perniciosa y anemia
severa.
Fenómeno Rouleaux:
Agrupamiento de los eritrocitos en forma de pilas de
monedas. Presente como artefacto producido durante
la preparación del frotis, hiperproteinemia,
hiperviscosidad, mieloma múltiple, macroglobulinas y
estados inflamatorios crónicos.

Sickle cell o drepanocitos:
Forma de media luna resultado de la
sodificación de la HbS polimerasa desoxigenasa
producido por un descenso del pH y O2. Presente
en sickle cell o anemia falciforme.
Target cell o codocito:
Aspecto de tiro al blanco o diana o ojo de buey por el
exceso de volumen eritrocitario en relación con la
membrana lipidica volviéndola mas delgada. Presente
en hemoglobinopatías, anemia hemolítica,
enfermedad hepática, deficiencia de hierro y post-
esplenectomia.
Stomatocitos:
Tiene una abertura interna similar a una boca por
aumento de Na y disminución de K en el citoplasma.
Presente en alcoholismo, cirrosis alcohólica,
esferocitosis hereditaria, mononuleosis infecciosa,
intoxicación por plomo, anemia hemolítica.

Punteado basófilo:
Presencia de gránulos azul oscuro diminutos
distribuidos en el citoplasma. Presente en
intoxicación por plomo y anemia severa.
Cristales de HbC:
Presencia de varas opacas fuera de los
eritrocitos donde se encuentra Hb tipo C. Con la
tinción de azul cresil se observan cristales
azules de Hb tipo H.
Anillos de Cabot:
Presencia de anillos o lazos de color purpura que
representan microtúbulos remanentes. Presente
en intoxicación por plomo y anemia perniciosa.
Inclusiones citoplasmáticas del eritrocito

Cuerpos de Heinz:
Presencia de corpúsculos de 0,2 a 2 µm. Con tinción
de cristal violeta o azul cresol se tornan de color
azul. Presente en anemia hemolítica secundaria a
drogas, deficiencia de G6PD, hemoglobinopatías.
Cuerpos de pappenheimer o gránulos sideroticos:
Presencia de puntos purpuras que representan los
agregados de mitocondrias y ribosomas que contienen
partículas de hierro que son visibles con la tinción de
azul de Prusia. Presente en anemia por deficiencia de
hierro, hipoesplenismo y anemia hemolítica.
Cuerpos de howell-jolly:
Presencia de corpúsculos azules oscuros compactos de
1 a 2µm; puede haber 1 o 2 corpúsculos en el
eritrocito. Presente en eritrocitos inmaduros
productos de una eritropoyesis alterada dejando
residuos nucleares de ADN que no pudieron quedarse
en el bazo. Presente en anemia hemolítica, anemia
perniciosa y en post esplenectomía o atrofia del bazo.

ANEMIA
Reducción de la concentración de
hemoglobina de los eritrocitos o
volumen de eritrocitos
(Hematocrito)
Hb menor de dos desviaciones
estándar por debajo de la
media correspondiente para la
edad, sexo, estado fisiológico
y localización geográfica.
Hematología clínica Mary Turgeon 2017. Hematología: fundamentos y aplicaciones 2da Edición Rodak 2004.

Hematología clínica Mary Turgeon 2017. Hematología: fundamentos y aplicaciones 2da Edición Rodak 2004. GPC Anemia. Sociedad Argentina de Hematología 2012.

CLINICA
Fatiga, disnea de
esfuerzo, sincopes,
vertigo, ictericia,
palpitaciones y
cefalea.
Palidez, fiebre
ligera, edema leve,
hipotensión ligera,
soplos sistólicos.

Volumen
Corpuscular
Medio
VCM
Volumen
promedio de
eritrocitos
circulantes.
VRN: 80 – 99fL
Hemoglobina
Corpuscular
Media
HCM
Peso medio de
Hb contenida en
un eritrocito.
VRN: 27 – 31pg
Concentración
de
Hemoglobina
Corpuscular
Media
CHCM
Concentración
media de Hb en
cada célula.
VRN: 33 – 37g/dL
Ancho de
Distribución
Eritrocitaria
RDW
Indica la
variación del
tamaño de los
eritrocitos dentro
de la población
medida
(anisocitosis).
VRN: 11.5 – 14.5%

15- 20µm 14- 20µm 12- 18µm 10- 12µm 10- 15µm 10- 15µm
Hematología Clínica: Teoría y Practica. Mary Turgeon 6ta ed., 2017.

10-
15µm
12-
20µm
12-
17µm
7- 18µm
10-
14µm
7- 8µm
2- 4µm

Linfocito
10 - 18µm 9 - 18µm 7 - 18µm
8 - 20µm
Atlas de Hematología: Con interpretación de histogramas y escartergramas. Abbott México.

Artefactos o leucocitos dañados
Núcleos desnudos producto de la ruptura
celular
Pueden tener núcleos bien conservados sin
citoplasma
Son numerosos en la leucemia linfocítica
crónica y en leucemias agudas
Laboratorio en el diagnostico clínico. Henry 23 Ed.

Vacuolización
Común en monocitos y neutrófilos
Puede ser inducida por fármacos y drogas
como sulfonamidas y cloroquina
Hematología: Fundamentos y aplicaciones. Rodaks 5ta ed.

Cuerpos de Döhle
Inclusiones citoplasmáticas que
consisten en restos de ácido
ribonucleico ribosómico (ARN)
dispuestos en filas paralelas
Se encuentran típicamente en bandas
y neutrófilos segmentados
acompañado de granulación tóxica
Inespecíficos se ha asociado con
infecciones bacterianas, sepsis y
embarazo normal

Núcleos picnóticos
Indican inminente muerte celular
El agua nuclear se ha perdido y la cromatina se
vuelve muy densa y oscura; sin embargo, los
filamentos todavía se puede ver entre segmentos
Los núcleos necróticos son fragmentos
redondeados de núcleo sin filamentos y sin patrón
de cromatina
Asociado de malignidad y falla medular

Hipersegmentación de neutrófilos
Neutrófilos
hipersegmentados tienen
más de cinco lóbulos y se
asocian con deficiencia de
vitamina B12 o acido fólico

Granulación tóxica de neutrófilos
Gránulos azul-negros oscuros en el
citoplasma de neutrófilos
segmentados, bandas y
Metamielocitos
Los gránulos tóxicos son peroxidasa
positivo
La intensidad de granulación tóxica
es una medida general del grado de
inflamación

Pelger-Huët
Hereditaria, autosómica dominante que implica el
fracaso de la segmentación normal de los núcleos de
los neutrófilos maduros por la mutación del gen del
receptor lamin-B.
Núcleos bilobulados y redondeados unidos a través de
un filamento dando el aspecto de anteojos
Las células son funcionalmente normales
Pseudoanomalía de Pelger-Huët se encuentra en casos
de leucemia, trastornos mieloproliferativos,
infecciones y exposición a drogas

Leucocitosis
(Elevación en la
concentración
de los leucocitos
en sangre
periférica)
Leucopenia
(Descenso en la
concentración
de los leucocitos
en sangre
periférica)
El recuento total de leucocitos circulantes es de alrededor de 4.5-11.5 x 103/L

Neutrofilia
Recuento absoluto de neutrófilos mayor que 8.6 x 103/L.
Historia de consumo de corticoesteroides, síndrome de Cushing,
fiebre en cuadro infeccioso.
Desviación a la derecha:
Mayor cantidad de neutrófilos
maduros o segmentados en
sangre periférica.
Desviación a la izquierda:
Mayor cantidad de neutrófilos
en cayado en sangre
periférica.

Neutropenia
Reducción de la
cantidad de
neutrófilos <1.0x
103/L.
• Falla de células madres proliferativas en la medula
ósea, infiltración de células malignas en la medula
ósea, destrucción de precursores mieloides en
anemia megaloblástica, inanición o anorexia
nerviosa, exposición a fármacos (antitiroideas,
antifúngicas, antimaláricas, isotretinoina,
antimicrobianos), hemoglobinuria paroxística
nocturna, hipoesplenismo y en diálisis.
Se observa en:

Recuento de eosinófilos
> 0.5 x 103/L en sangre
periférica.
Presente desordenes
alérgicos (Asma y rinitis
alérgica), dermatitis
atópica, infecciones
parasitarias y virales,
leucemia mieloide
crónica, neoplasias
linfoides.
Respuesta luego de un
estado Inflamatorio o
infección viral y estrés
emocional
Eosinofilia
Eosinopenia
Hematología clínica Mary Turgeon 2017. Hematología: fundamentos y aplicaciones 2da Edición Rodak 2004. Approach to the patient with unexplained eosinophilia, Peter F

Basofilia y basopenia
Recuento de basófilos
> 0,15 x 103/L.
Se observa en
hipotiroidismo,
varicela, sinusitis
crónica, policitemia
vera, leucemia
mieloide crónica y
dermatitis de contacto
Se observa en
Hipertiroidismo,
ovulación y estrés.
Basofilia
Basopenia
Hematología clínica Mary Turgeon 2017. Hematología: fundamentos y aplicaciones 2da Edición Rodak 2004. Evaluation of the peripheral blood smear, David S Rosenthal, mayo

Monocitosis
Recuento de Monocitos > 0,8 x
103/L.
Se observa en Tuberculosis
activa, endocarditis bacteriana
subaguda, fiebre de etiologia
desconocida, enfermedad
inflamatória intestinal, artritis
reumatoidea, anemia hemolítica
y traumatismos.
Los monocitos también
aumentan durante el periodo de
recuperación de infecciones
agudas.
Monocitopenia no tiene
relevancia clínica.

Linfocitosis
>4.8*103/L. Se observa en: Infecciones
virales agudas (Mononucleosis
infecciosa, hepatitis, post-transfusión,
citomegalovirus, linfocitosis reactiva)
Algunas infecciones bacterianas:
(Bordetella pertussis, brucelosis),
infección parasitaria (Toxoplasmosis),
fármacos (hipersensibilidad a
fenitoína), sífilis terciaria y congénita,
leucemia linfocítica aguda y crónica,
linfomas, macroglobulinemia de
Waldenstrom y cáncer.
Hematología clínica Mary Turgeon 2017. Hematología: fundamentos y aplicaciones 2da Edición Rodak 2004. Approach to the adult with lymphocytosis or lymphocytopenia, Matthew S Davids,

Linfocitopenia
<1.5x103/L.
Se observan en: Stress, uso
de Corticoesteroides,
desordenes de deficiencia
inmune (VIH, LES, linfoma de
Hodgking, mieloma
múltiple), radiación
Hematología clínica Mary Turgeon 2017. Hematología: fundamentos y aplicaciones 2da Edición Rodak 2004. Approach to the adult with lymphocytosis or lymphocytopenia, Matthew S Davids,

HMWK –Kininogeno de alto peso molecular
PK - Precalicreina
HMWK
PK

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