PRUEBAS
PRETRANSFUSIONALES.


      Mónica M. Cortés Márquez.
       Universidad de Antioquia.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES



                   DEFINICIÓN

Son los procedimientos realizados por los servicios de
transfusión o los bancos de sangre, previos a la
transfusión, con el fin de asegurar la selección
adecuada de la unidad de sangre o los componentes a
transfundirse.


       Decreto 01571 de 1993, Capitulo I, articulo 3.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES

OBJETIVO



Transfundir al paciente hemocomponentes de
EXCELENTE calidad, para evitar el contagio de
enfermedades     infecciosas y     reacciones
postransfusionales.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES

  OBJETIVO



 Seleccionar   hemocomponentes que no afecten
  al    receptor   y   tengan    una     sobrevida
  postransfusional aceptable. Si se realizan en
  forma correcta confirman la compatibilidad ABO
  entre el componente y el receptor y detectan la
  mayoría de los anticuerpos imprevistos
  significativos.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES

     ¿Que se debe hacer antes de entregar los
    hemoderivados?

   Identificación del receptor y su muestra de sangre.

   Tipificación ABO y Rh de la sangre del receptor y del
    donante.

   Detección de anticuerpos antieritrocitarios en el suero o
    plasma del receptor.

   Comparación de los hallazgos actuales, con los registros
    previos.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES


   Confirmación del tipo Rh       de    las
    unidades Rh NEGATIVO.

   Selección de los componentes de tipo
    ABO y Rh apropiados para el receptor.

   Compatibilidad cruzada serológica.

   Rotulación de los productos con la
    información que identifica al receptor.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES


          RECEPTOR




• DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO.
• DETERMINACIÓN DEL Rh.
• DETECCIÓN DE ANTICUERPOS INESPERADOS.
• IDENTIFICACIÓN DEL ANTICUERPO.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES

  PRUEBA DE LA ANTIGLOBULINA O DE
              COOMBS:

 La  prueba busca revelar la presencia de
 anticuerpos IgG ó complemento, en glóbulos
 rojos sensibilizados, por medio del suero de
 coombs y mediante dos modalidades en su
 procedimiento:
  INDIRECTA        DIRECTA
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES
   La  prueba de coombs es el reactivo base de la
     prueba. Se produce en animales de laboratorio.
                              Suero humano con gamma
                              globulina o beta globulina.




                                Monoespecífico                    o
                                poliespecífico.

Anti IgG y anticomplemento.                          ⇓
                                 Anti IgG, anti C3d ó anti- C4.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES
    Busca revelar la presencia de IgG ó complemento en los
     glóbulos del individuo en estudio.

    Una PAD= POSITIVA


   La reacción sensibilizante ocurrió “in vivo”, es decir
   mientras las células rojas están circulando.

Util para investigar:

Aloanticuerpos adsorbidos sobre los glóbulos rojos en situaciones
como:
• Enfermedad hemolítica del recién nacido.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES
   Reacciones transfusionales hemolíticas: Especialmente
    de tipo retardado. Ac que produce el paciente
    (receptor) previamente sensibilizado, se unen al Ag
    correspondiente en los GR transfundidos (donante).

   Autoanticuerpos: En anemia hemolítica autoinmune.
   Anticuerpos inducidos por drogas.


             + Suero antiglobulina

                                      Anti IgG ó C3d ó C4
Células del receptor
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES

   La Prueba de antiglobulina Indirecta PAI busca
    revelar la presencia de los Acs LIBRES en la
    circulación del individuo en estudio.

   SUERO del individuo + GR dotación antigénica
    conocida “ panel de glóbulos rojos” + suero de
    antiglobulina.




Sensibilizar los GR conocidos ⇒ Acs en el suero.
Potenciar la reacción = soluciones de fuerza                Suero
Iónica baja ( Liss) ó albumina.                             Anticuerpos
                                             GR conocidos
                                             Antígenos.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES


        APLICACIONES


   Relacionada con un embarazo ó una transfusión previa.
    Sensibilización con un antígeno ausente en los GR de la
    embarazada o del receptor.

   Compatibilidad serológica del donante GR y el suero del
    receptor.

   Identificación de antígenos como Kell, Kidd, Duffy, D débil.
PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES

   Hemoclasificación del receptor: Grupo sanguíneo y Rh.
    Determinación de D débil en caso de ser negativo.
    Fenotipo de Rh.

   Hemoclasificación Grupo y Rh de la unidad a transfundir.
     Determinación de D débil en caso de ser negativo, fenotipo de
    Rh.

   Rastreo de anticuerpos irregulares RAI diferentes al ABO.

   Pruebas cruzadas: compatibilidad entre donante y receptor.

   Identificación del anticuerpo que causa la incompatibilidad.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO

             Es la prueba más importante
              realizada a donantes y receptores.

             Los    anticuerpos    ABO     están
              presentes en el suero de la mayoría
              de las personas que no poseen el
              correspondiente antígeno.

             Los     anticuerpos     ABO     fijan
              complemento         ⇒       Hemólisis
              intravascular ( Naturales).
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO

  GRUPO           Antígeno en la      Anticuerpo en el
SANGUINEO         CÉLULA ROJA.             SUERO.

     A                   A                 Anti B
     B                   B                 Anti A
    AB                A y B               Ninguno
     O              Ninguno          Anti A, B y AB

 La clasificación se basa en el principio de aglutinación.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO

         La determinación del grupo ABO requiere dos
     procedimientos diferentes:

    CLASIFICACIÓN GLOBULAR : Determinación de antígenos
     o prueba DIRECTA.

                               Antisueros anti A, B y
                               solución salina.

     A     B     SS
                               Muestra del paciente.
 Método    en   lamina   y
 tubo.
Interpretación: La aglutinación, indica que el GR posee el Ag específico
El control debe ser negativo.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO

 COMENTARIOS:
  Los subgrupos A2 y A2B presentan una aglutinación
   similar a la del A1. ⇒ Utilizar para diferenciarlos la
   lectina anti A1.
  Las aglutinaciones débiles deben corroborarse en tubo.


                     La presencia de aglutinación indica que la prueba es
                     + o sea que posee los Ag. Si no hay aglutinación la
                     prueba es – no esta presente el Antigeno.
                     El control debe ser negativo.
    A   B   AB   C


Control: Solución salina.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO

     CLASIFICACIÓN SERICA O INVERSA: Determinación
    de anticuerpos.



                            Suspensión de células A1, B y O como control.
                             Suero en estudio.
    A    B    O (control)
   La aglutinación indica que un Ac está presente en el suero
    analizado. La hemólisis se interpreta como positiva, el Ac fija
    complemento.
   El control permite detectar un fenotipo Bombay y también Ac
    inesperados.
   Los pacientes con agammaglobulinemia, pueden no tener
    niveles normales de los Ac.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO
  PRUEBA GLOBULAR                                    PRUEBA SERICA

Reacción de células del paciente con        Reacción del suero del paciente con

Anti A Anti B Anti       Contro Cél A1       Cél B    Contro Interpretación
              AB         l                            l
                         SS                           Cel O
 4+        -      4+        -           -      4+        -        Grupo A
  -      4+       4+        -          4+       -        -        Grupo B
 4+      4+       4+        -           -       -        -       Grupo AB
  -       -        -        -          4+      4+        -       Grupo O
 4+      4+       4+        -          2+       -        -       Subgrupo
                                                                   A2B
 4+       -       4+        -          2+      4+        -     Subgrupo A2
  -       -        -        -          +       +         +     Oh Bombay
                                                                   Ac
DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO

                                Clasificación Globular




   Células A y B
   Para clasificación serica.
Pocillos para clasificación ABO globular y serica.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO RH

   La clasificación de los antígenos Rh se realiza después del
    sistema ABO. Mediante un coombs directo.
   El sistema posee varios antígenos D, C, E.

   El antígeno de mayor importancia clínica es el D ó Rho, es un
    potente inmunógeno.
   La presencia de este Ag o de su variante
    D débil Du = Rh POSITIVO,
    la ausencia = NEGATIVO

           Dce    DcE Dce DCE              POSITIVO

           dCe    dcE     dce    dCE        NEGATIVO
DETERMINACIÓN DEL GRUPO RH




Determinación del fenotipo Rh.
DETERMINACIÓN DEL GRUPO RH

   Variante D débil Du: Se presenta en individuos que
    poseen en sus glóbulos rojos pocos determinantes
    antígenos D o que por causas genéticas se manifiestan
    débilmente. Para su detección se realiza un coombs
    indirecto.

   Los anticuerpos del sistema Rh, no son naturales, solo
    se encuentran como resultado de una inmunización por
    transfusión ó embarazo incompatible.
ANTICUERPOS INESPERADOS

Son anticuerpos diferentes al ABO posibles de detectar en
un % bajo de individuos, dada la frecuencia del antígeno o
anticuerpos producidos como respuesta inmune, en aquellos
individuos que se exponen a antígenos extraños, como
consecuencia de embarazos, transfusiones o estimulación
intencional.




   Pool RAI                          RAI
ANTICUERPOS INESPERADOS
   Detección de anticuerpos inesperados, tamización de
    anticuerpos, rastreo de anticuerpos, búsqueda de anticuerpos
    irregulares.




         RAI Positivo




    Condiciones de la reacción: Diferentes temperaturas -
    diferentes medios (salino, potenciadores -albúmina, LISS,
    polietilenglicol. Polibreno- antiglobulina, enzimas).
ANTICUERPOS INESPERADOS




Celulas I, II, III
Con dotación antigenica conocida.
Utilidad conocer la presencia de
Anticuerpos inesperados.            Panel de células
                                    Utilidad determinar el anticuerpo
                                    Especifico.
ANTICUERPOS INESPERADOS

                                   Buscar Ag clínicamente significativos




Panel de Glóbulos O con dotación
Antigenica conocida.

D ,C, E, c, e, M, N, S, s, P1, Lea,Leb,K, k,
Fya , Fyb, Jka, JKb.
Rh-hr        Kell      Duffy Kidd Lewis            P       MNS        Luteran
    D C   E    c   e   Cw K    k   Fya   Fyb   Jk   Jk   Le Le P         M N S     s Lua   L
                                               a    b    a   b       1
                                                                                           ub

1   + + 0      + + +       0   + +       +     0    +    0   0       + + + +       + 0     +
2   0 + 0      0   + 0     +   + 0       +     0    +    0   0       0   + 0 0     + 0     +
3   0 + 0      + + 0       0   + 0       0     +    +    +   +       + 0     + 0   + 0     +
4   + 0   + + 0        0   0   + +       0     +    0    0   0       + + + 0       + 0     +
5   + + 0      0   + 0     0   + +       0     +    0    0   +       + + 0 0       + +     +
6   + 0   + + 0        0   +   + +       +     +    +    +   0       0   0   + 0   + 0     +
7   0 0   0    + + 0       0   + 0       +     +    +    +   +       + + 0 +       0 +     +
8   0 0   + + + 0          0   + 0       +     +    0    0   0       + + + +       + 0     +
9   0 0   0    + + 0       0   + +       +     +    0    0   +       0   + + +     + 0     +
10 0 0    0    + + 0       0   + +       +     +    0    0   0       + + 0 +       0 0     +
11 0 0 0 + + 0             +   + +       0     + +       0 +         0 + 0 +       + 0     +
                                                         Fríos          IgM
PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD


      Permiten conocer si existe compatibilidad serológica
       entre la sangre de un donante y la del receptor.

      Son de gran importancia están enfocadas a prevenir la
       transfusión de sangre incompatible.
                                                 REACCIÓN HEMOLITICA


 Objetivo de las pruebas de compatibilidad:

• Garantizar la compatibilidad ABO entre el donante y el receptor.
• Detectar la presencia de Anticuerpos en el suero del receptor no
  evidenciada en el RAI.
PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD

                            Primera fase SS: Anticuerpos fríos completos.

                            Segunda fase potenciador: Ac. calientes.

                            Tercera fase de antiglobulina: Ac calientes
                            Dependientes de antiglobulina.
              D         R
   D
              R         R
   R

   M          m          Autocontrol
   Mayor      menor

INTERPRETACIÓN: Un resultado NEGATIVO en ambas pruebas = compatibilidad.

POSITIVO EN LA MAYOR: Receptor tiene un AC contra el donante.
POSITIVO EN LA MENOR: Donante tiene un Ac contra el receptor.
POSITIVO AUTOCONTROL: Autoanticuerpos.
PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD

                 Que conducta seguir?

   Prueba Mayor es positiva: Identificar el anticuerpo y
    buscar otro donante.

   Prueba menor es positiva: Se pueden transfundir células
    rojas y NO plasma. (expansor de volumen).
PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD

                    POSITIVAS




INCOMPATIBILIDAD ENTRE DONANTE Y RECEPTOR


CAUSAS: Incorrecta clasificación del sistema ABO,
aloanticuerpos, autoanticuerpos, rouleaux, contaminantes.
LIMITANTES DE LAS PRUEBAS DE
           COMPATIBILIDAD

   No detectan todos los errores de clasificación ABO.

   No previenen la aloinmunización del receptor.

   No detectan errores de clasificación Rh.

   No garantizan la sobrevida normal de las células rojas.

   No previenen reacciones adversas en el receptor.
Gracias…

Pretransfusionales

  • 1.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES. Mónica M. Cortés Márquez. Universidad de Antioquia.
  • 2.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES DEFINICIÓN Son los procedimientos realizados por los servicios de transfusión o los bancos de sangre, previos a la transfusión, con el fin de asegurar la selección adecuada de la unidad de sangre o los componentes a transfundirse. Decreto 01571 de 1993, Capitulo I, articulo 3.
  • 3.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES OBJETIVO Transfundir alpaciente hemocomponentes de EXCELENTE calidad, para evitar el contagio de enfermedades infecciosas y reacciones postransfusionales.
  • 4.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES OBJETIVO  Seleccionar hemocomponentes que no afecten al receptor y tengan una sobrevida postransfusional aceptable. Si se realizan en forma correcta confirman la compatibilidad ABO entre el componente y el receptor y detectan la mayoría de los anticuerpos imprevistos significativos.
  • 5.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES ¿Que se debe hacer antes de entregar los hemoderivados?  Identificación del receptor y su muestra de sangre.  Tipificación ABO y Rh de la sangre del receptor y del donante.  Detección de anticuerpos antieritrocitarios en el suero o plasma del receptor.  Comparación de los hallazgos actuales, con los registros previos.
  • 6.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES  Confirmación del tipo Rh de las unidades Rh NEGATIVO.  Selección de los componentes de tipo ABO y Rh apropiados para el receptor.  Compatibilidad cruzada serológica.  Rotulación de los productos con la información que identifica al receptor.
  • 7.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES RECEPTOR • DETERMINACIÓN DEL GRUPO ABO. • DETERMINACIÓN DEL Rh. • DETECCIÓN DE ANTICUERPOS INESPERADOS. • IDENTIFICACIÓN DEL ANTICUERPO.
  • 8.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES PRUEBA DE LA ANTIGLOBULINA O DE COOMBS:  La prueba busca revelar la presencia de anticuerpos IgG ó complemento, en glóbulos rojos sensibilizados, por medio del suero de coombs y mediante dos modalidades en su procedimiento: INDIRECTA DIRECTA
  • 9.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES  La prueba de coombs es el reactivo base de la prueba. Se produce en animales de laboratorio. Suero humano con gamma globulina o beta globulina. Monoespecífico o poliespecífico. Anti IgG y anticomplemento. ⇓ Anti IgG, anti C3d ó anti- C4.
  • 10.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES  Busca revelar la presencia de IgG ó complemento en los glóbulos del individuo en estudio.  Una PAD= POSITIVA La reacción sensibilizante ocurrió “in vivo”, es decir mientras las células rojas están circulando. Util para investigar: Aloanticuerpos adsorbidos sobre los glóbulos rojos en situaciones como: • Enfermedad hemolítica del recién nacido.
  • 11.
  • 12.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES  Reacciones transfusionales hemolíticas: Especialmente de tipo retardado. Ac que produce el paciente (receptor) previamente sensibilizado, se unen al Ag correspondiente en los GR transfundidos (donante).  Autoanticuerpos: En anemia hemolítica autoinmune.  Anticuerpos inducidos por drogas. + Suero antiglobulina Anti IgG ó C3d ó C4 Células del receptor
  • 13.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES  La Prueba de antiglobulina Indirecta PAI busca revelar la presencia de los Acs LIBRES en la circulación del individuo en estudio.  SUERO del individuo + GR dotación antigénica conocida “ panel de glóbulos rojos” + suero de antiglobulina. Sensibilizar los GR conocidos ⇒ Acs en el suero. Potenciar la reacción = soluciones de fuerza Suero Iónica baja ( Liss) ó albumina. Anticuerpos GR conocidos Antígenos.
  • 14.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES APLICACIONES  Relacionada con un embarazo ó una transfusión previa. Sensibilización con un antígeno ausente en los GR de la embarazada o del receptor.  Compatibilidad serológica del donante GR y el suero del receptor.  Identificación de antígenos como Kell, Kidd, Duffy, D débil.
  • 15.
    PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES  Hemoclasificación del receptor: Grupo sanguíneo y Rh. Determinación de D débil en caso de ser negativo. Fenotipo de Rh.  Hemoclasificación Grupo y Rh de la unidad a transfundir. Determinación de D débil en caso de ser negativo, fenotipo de Rh.  Rastreo de anticuerpos irregulares RAI diferentes al ABO.  Pruebas cruzadas: compatibilidad entre donante y receptor.  Identificación del anticuerpo que causa la incompatibilidad.
  • 16.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO  Es la prueba más importante realizada a donantes y receptores.  Los anticuerpos ABO están presentes en el suero de la mayoría de las personas que no poseen el correspondiente antígeno.  Los anticuerpos ABO fijan complemento ⇒ Hemólisis intravascular ( Naturales).
  • 17.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO GRUPO Antígeno en la Anticuerpo en el SANGUINEO CÉLULA ROJA. SUERO. A A Anti B B B Anti A AB A y B Ninguno O Ninguno Anti A, B y AB La clasificación se basa en el principio de aglutinación.
  • 18.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO La determinación del grupo ABO requiere dos procedimientos diferentes:  CLASIFICACIÓN GLOBULAR : Determinación de antígenos o prueba DIRECTA. Antisueros anti A, B y solución salina. A B SS Muestra del paciente. Método en lamina y tubo. Interpretación: La aglutinación, indica que el GR posee el Ag específico El control debe ser negativo.
  • 19.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO COMENTARIOS:  Los subgrupos A2 y A2B presentan una aglutinación similar a la del A1. ⇒ Utilizar para diferenciarlos la lectina anti A1.  Las aglutinaciones débiles deben corroborarse en tubo. La presencia de aglutinación indica que la prueba es + o sea que posee los Ag. Si no hay aglutinación la prueba es – no esta presente el Antigeno. El control debe ser negativo. A B AB C Control: Solución salina.
  • 20.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO CLASIFICACIÓN SERICA O INVERSA: Determinación de anticuerpos. Suspensión de células A1, B y O como control. Suero en estudio. A B O (control)  La aglutinación indica que un Ac está presente en el suero analizado. La hemólisis se interpreta como positiva, el Ac fija complemento.  El control permite detectar un fenotipo Bombay y también Ac inesperados.  Los pacientes con agammaglobulinemia, pueden no tener niveles normales de los Ac.
  • 21.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO PRUEBA GLOBULAR PRUEBA SERICA Reacción de células del paciente con Reacción del suero del paciente con Anti A Anti B Anti Contro Cél A1 Cél B Contro Interpretación AB l l SS Cel O 4+ - 4+ - - 4+ - Grupo A - 4+ 4+ - 4+ - - Grupo B 4+ 4+ 4+ - - - - Grupo AB - - - - 4+ 4+ - Grupo O 4+ 4+ 4+ - 2+ - - Subgrupo A2B 4+ - 4+ - 2+ 4+ - Subgrupo A2 - - - - + + + Oh Bombay Ac
  • 22.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPOABO Clasificación Globular Células A y B Para clasificación serica.
  • 23.
    Pocillos para clasificaciónABO globular y serica.
  • 24.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPORH  La clasificación de los antígenos Rh se realiza después del sistema ABO. Mediante un coombs directo.  El sistema posee varios antígenos D, C, E.  El antígeno de mayor importancia clínica es el D ó Rho, es un potente inmunógeno.  La presencia de este Ag o de su variante D débil Du = Rh POSITIVO, la ausencia = NEGATIVO Dce DcE Dce DCE POSITIVO dCe dcE dce dCE NEGATIVO
  • 25.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPORH Determinación del fenotipo Rh.
  • 26.
    DETERMINACIÓN DEL GRUPORH  Variante D débil Du: Se presenta en individuos que poseen en sus glóbulos rojos pocos determinantes antígenos D o que por causas genéticas se manifiestan débilmente. Para su detección se realiza un coombs indirecto.  Los anticuerpos del sistema Rh, no son naturales, solo se encuentran como resultado de una inmunización por transfusión ó embarazo incompatible.
  • 27.
    ANTICUERPOS INESPERADOS Son anticuerposdiferentes al ABO posibles de detectar en un % bajo de individuos, dada la frecuencia del antígeno o anticuerpos producidos como respuesta inmune, en aquellos individuos que se exponen a antígenos extraños, como consecuencia de embarazos, transfusiones o estimulación intencional. Pool RAI RAI
  • 28.
    ANTICUERPOS INESPERADOS  Detección de anticuerpos inesperados, tamización de anticuerpos, rastreo de anticuerpos, búsqueda de anticuerpos irregulares. RAI Positivo Condiciones de la reacción: Diferentes temperaturas - diferentes medios (salino, potenciadores -albúmina, LISS, polietilenglicol. Polibreno- antiglobulina, enzimas).
  • 29.
    ANTICUERPOS INESPERADOS Celulas I,II, III Con dotación antigenica conocida. Utilidad conocer la presencia de Anticuerpos inesperados. Panel de células Utilidad determinar el anticuerpo Especifico.
  • 30.
    ANTICUERPOS INESPERADOS Buscar Ag clínicamente significativos Panel de Glóbulos O con dotación Antigenica conocida. D ,C, E, c, e, M, N, S, s, P1, Lea,Leb,K, k, Fya , Fyb, Jka, JKb.
  • 31.
    Rh-hr Kell Duffy Kidd Lewis P MNS Luteran D C E c e Cw K k Fya Fyb Jk Jk Le Le P M N S s Lua L a b a b 1 ub 1 + + 0 + + + 0 + + + 0 + 0 0 + + + + + 0 + 2 0 + 0 0 + 0 + + 0 + 0 + 0 0 0 + 0 0 + 0 + 3 0 + 0 + + 0 0 + 0 0 + + + + + 0 + 0 + 0 + 4 + 0 + + 0 0 0 + + 0 + 0 0 0 + + + 0 + 0 + 5 + + 0 0 + 0 0 + + 0 + 0 0 + + + 0 0 + + + 6 + 0 + + 0 0 + + + + + + + 0 0 0 + 0 + 0 + 7 0 0 0 + + 0 0 + 0 + + + + + + + 0 + 0 + + 8 0 0 + + + 0 0 + 0 + + 0 0 0 + + + + + 0 + 9 0 0 0 + + 0 0 + + + + 0 0 + 0 + + + + 0 + 10 0 0 0 + + 0 0 + + + + 0 0 0 + + 0 + 0 0 + 11 0 0 0 + + 0 + + + 0 + + 0 + 0 + 0 + + 0 + Fríos IgM
  • 32.
    PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD  Permiten conocer si existe compatibilidad serológica entre la sangre de un donante y la del receptor.  Son de gran importancia están enfocadas a prevenir la transfusión de sangre incompatible. REACCIÓN HEMOLITICA Objetivo de las pruebas de compatibilidad: • Garantizar la compatibilidad ABO entre el donante y el receptor. • Detectar la presencia de Anticuerpos en el suero del receptor no evidenciada en el RAI.
  • 33.
    PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD Primera fase SS: Anticuerpos fríos completos. Segunda fase potenciador: Ac. calientes. Tercera fase de antiglobulina: Ac calientes Dependientes de antiglobulina. D R D R R R M m Autocontrol Mayor menor INTERPRETACIÓN: Un resultado NEGATIVO en ambas pruebas = compatibilidad. POSITIVO EN LA MAYOR: Receptor tiene un AC contra el donante. POSITIVO EN LA MENOR: Donante tiene un Ac contra el receptor. POSITIVO AUTOCONTROL: Autoanticuerpos.
  • 34.
    PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD Que conducta seguir?  Prueba Mayor es positiva: Identificar el anticuerpo y buscar otro donante.  Prueba menor es positiva: Se pueden transfundir células rojas y NO plasma. (expansor de volumen).
  • 35.
    PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD POSITIVAS INCOMPATIBILIDAD ENTRE DONANTE Y RECEPTOR CAUSAS: Incorrecta clasificación del sistema ABO, aloanticuerpos, autoanticuerpos, rouleaux, contaminantes.
  • 36.
    LIMITANTES DE LASPRUEBAS DE COMPATIBILIDAD  No detectan todos los errores de clasificación ABO.  No previenen la aloinmunización del receptor.  No detectan errores de clasificación Rh.  No garantizan la sobrevida normal de las células rojas.  No previenen reacciones adversas en el receptor.
  • 37.