Manual de Análisis Hematólogos de Serie Blanca y Hemostasia

1. Centro de Bachillerato Tecnológico
Industrial y de Servicios N°24
Profesora: Ma. De Jesús Treviño
Gutiérrez
Integrantes:
 Becerra Walle Guadalupe
 Bernal Jaramillo Jesús
 Cantú Sánchez Karen
 Castillo García Vanesa
 Heim Pacheco Angélica
 Puga García Rosa
 Rodríguez Hernández Briana
 Torres Eskildsen Dina
Grupo: 5°C Téc. Lab. Clínico Turno Matutino

2. El presente trabajo tiene por objetivo guiar a los estudiantes y/o maestros que
están estudiando laboratorio clínico, con el fin de difundir los conocimientos
previos aprendidos en todo el semestre. Este trabajo esta realizado, basado en
una guía que se nos fue dada y, cuando realizamos las prácticas aquí descritas,
se tomaron fotos con el fin de ilustrar a los lectores sobre como fue hecha dicha
práctica, así como los valores normales de la prueba descrita y los valores que a
nosotros nos resultó.
En cada una de las prácticas, están descritas con el objetivo, el material, los
procedimientos y los resultados de ésta prueba.
Todo lo descrito aquí es verídico y no fueron inventados los resultados del
examen, ya que nosotros mismos lo realizamos.
Los invitamos a leer este manual y a adentrarse un poco más en el maravilloso
mundo de los “Laboratorios Clínicos”
¡¡BIENVENIDOS!!

3.  Introducción
 Práctica 1: preparación de anticoagulantes
 Práctica 2: obtención de muestras
 Práctica 3: diferencial leucocitario
 Práctica 4: tinción citoquímica de peroxidasa en M. Ósea
 Práctica 5: recuento de plaquetas; método directo
 Práctica 6: recuento de plaquetas; método indirecto
 Práctica 7: tiempo de sangrado; método de Duke
 Práctica 8: tiempo de coagulación; método de Lee y White
 Práctica 9: tiempo de coagulación; método tubo apilar
 Práctica 10: determinación del tiempo de coagulación en el
plasma recalcificado
 Práctica 11: retracción de coagulo
 Práctica 12: prueba de lazo o torniquete
 Práctica 13: tiempo de protrombina; método de Quick
 Práctica 14: tiempo de tromboplastina parcial

4. FUNDAMENTO:
Un anticoagulante es una sustancia endógena o exógena que interfiere o
inhibe la coagulación de la sangre, creando un estado prehemorrágico, se
pueden dividir en:
 Anticoagulantes de acción directa: Son aquellos que por sí solos son
capaces de inhibir la cascada de coagulación.
 Anticoagulantes de acción indirecta: Son aquellos que mediante su
interacción con otras proteínas o actuando en otras vías
metabólicas, alteran el funcionamiento de la cascada de
coagulación.
Otra forma de dividirlos son los anticoagulantes Naturales (Heparina)
y Sintéticos (Citrato de sodio, etc.)
Los anticoagulantes de mayor uso dentro de los laboratorios de análisis
clínicos son tres y estos pueden ser líquidos o liofilizados.
OBJETIVO:
Que el alumno sea capaz de diferenciar lo diferentes tipos de
anticoagulantes, así como su uso en el laboratorio clínico y su clasificación.

5. ANTICOAGULANTES
Se consideran como anticoagulantes:
o Mezcla de oxalatos.
o Citrato de sodio.
o Oxalato de sodio.
o EDTA.
o Heparina.
o ACD.
o CPD.
 Mezcla de Oxalatos. También llamada anticoagulante de Wintrobe.
Contiene oxalato de amonio, oxalato de potasio, formol y agua. Para
5ml de sangre se utilizan 0.5ml de la mezcla de anticoagulante
(desecado en estufa a 37ºC o a temperatura ambiente antes de
utilizarlo); esta solución anticoagulante actúa como tal para fijación
de calcio y debe usarse siempre desecado para no diluir la sangre.
 Mezcla de oxalatos de sodio y potasio. Es otro anticoagulante
conocido como "Mezcla de Paul – Heller".
 Citrato de sodio al 3.8% y oxalato de sodio al 1.4%.
Se usa en relación de una parte de anticoagulante por cada nueve
partes de sangre, habitualmente se usan 0.25ml de la solución para
completar a 2.5ml de volumen total con la muestra de sangre. Actúan
en la misma forma que la solución anticoagulante de Wintrobe, es
decir, por fijación de calcio. Son los anticoagulantes de elección para
tiempo de protrombina (TP) y tiempo de tromboplastina parcial (TTP).

6.  EDTA (ácido etilen-diamino-tetra-acético). Las
sales de sodio y potasio en este ácido se comportan como
poderosos anticoagulantes y son anticoagulantes de elección para el
trabajo de rutina y Hematología (se utiliza al 10%).
o No afecta la morfología de las células hemáticas.
o No modifica la velocidad de sedimentación globular.
o Sus sinónimos son versenato y secuestreno.
Se le llama secuestreno ya que secuestra al calcio y lo separa de la
cascada de la coagulación, impidiendo que la sangre coagule. Se
utilizan 0.05ml por cada 3ml de muestra de sangre. Dada la pequeña
cantidad de solución, no es necesario desecarla, ya que prácticamente
no diluye la sangre a analizar; en exceso afecta adversamente tanto a
los eritrocitos como a los leucocitos, causando su encogimiento y
provocando cambios en su forma; por ello debe cuidarse de agregar la
cantidad correcta de sangre al anticoagulante. Se prefiere la sal
tripotásica a la disódica, ya que es más soluble (10 veces más) y ello
hace efectiva la mezcla del anticoagulante con la sangre.
 Heparina (heparina sódica de 1,000 unidades). La fina capa de
solución de heparina de 1,000 unidades:
o Se utiliza para las gasomerías.
o La heparina es un excelente anticoagulante.
o No altera el tamaño de los eritrocitos.
o Actúa inhibiendo la actividad de la trombina sobre el
fibrinógeno y es este mecanismo, el que la hace diferente a
los demás anticoagulantes mencionados.

7.  ACD y CPD. Son los principales anticoagulantes utilizados en los
bancos de sangre (en las bolsas para la recolección de ésta).
El ACD contiene ácido cítrico, citratos y dextrosa. En este anticoagulante
la sangre se mantiene hasta 21 días.
El CPD contiene citratos, fosfatos y dextrosa. El radical es un
amortiguados que favorece el pH de la sangre normal (7.4) permanezca
así durante más tiempo, por lo que este anticoagulante hace que las
bolsas duran 21 días + 7, siempre y cuando el plasma no presente una
coloración rojiza (hemólisis) ni tome un color verdusco debido a la
panaglutinibilidad o contaminación bacteriana.

8. FUNDAMENTO:
Los distintos análisis de laboratorio nos dan información muy valiosa
acerca del estado de los pacientes gravemente enfermos, ayudándonos en
el diagnóstico y a la hora de administrar tratamientos.
En la sangre venosa se pueden hacer diversos y diferentes estudios
analíticos, ya sean desde el punto de vista bioquímico, hematológico y/o
microbiológico.
El sitio de punción en el paciente varía dependiendo de la edad y
tamaño, así como de la accesibilidad de la vena. En niños mayores puede
utilizarse cualquier vena accesible, de forma similar al paciente adulto,
mientras que en recién nacidos y lactantes las venas superficiales del cuero
cabelludo y de las extremidades distales pueden servir para la extracción
de sangre. En el laboratorio clínico contamos con diferentes técnicas para
obtener muestras sanguíneas:
 Punciones Venosas
 Punciones Capilares
OBJETIVOS:
 1. Justificar la indicación de los métodos de obtención de muestras.
 2. obtener correctamente muestras capilares y venosas de calidad
analítica.

9. PUNCIÓN CAPILAR
Material:
 Algodón.
 Lancetas desechables y estériles
 Tubos capilares
Procedimiento:
1. Una vez seleccionada la zona, se desinfecta la zona con alcohol al
70%, secar con algodón estéril.
2. Punzar la piel con una lanceta estéril desechable (2 mm de
profundidad).
3. La primera gota de sangre se deja perder, limpiándola con la gasa sin
tocar la zona pinchada

10. 4- Se espera a que caigan más gotas, sin exprimir el área pinchada
porque eso diluiría la sangre con líquido extracelular. Se recogen las
gotas de sangre necesarias sobre alguno de estos objetos:
 La tira reactiva.
 Tubo capilar, mientras se tapa su otro extremo con el dedo. Después
de la recogida se pincha el tubo capilar en plastilina para que un
pequeño fragmento de ésta obstruya su extremo o se sella con calor.
PUNCIÓN VENOSA
MATERIAL
 Algodón
 Ligadura o torniquete de 25-30 cm
 Tubos con anticoagulante EDTA
 Equipo Vacutainer
PROCEDIMIENTO
1- Verificar que los elementos por usar estén listos y que el paciente se
sienta cómodo
2. Aplicar el torniquete aproximadamente cuatro dedos por encima de la
flexión del codo o a 10 cm del codo y sujetar con un medio nudo.

11. 3- Limpiar la zona con una torunda de algodón embebida en alcohol
en un área de 2 pulgadas
4- . Se destapa la aguja por el lado de la guarda que no tiene color y
se enrosca en la base.
5- Una vez armada la base, se accede a la vena con la aguja, en forma
horizontal, y se introduce con el bisel hacia arriba formando un
ángulo de 15°
6- . Cuando la sangre fluya por la aguja, se debe de realizar la
aspiración, colocando el tubo dentro de la base y haciéndolo que se
perfore el tapón con la otra parte de la aguja, para que el vacío que
contiene el tubo aspire la sangre necesaria.

12. 7- Al llenarse el tubo, se retira de la base, procurando no mover la
aguja de su posición.
8- Colocar la torunda sobre el lugar de punción, retirar el torniquete
y extraer la aguja.
9- Agitar el tubo de 4 veces, suavemente, para homogeneizar la
muestra con el anticoagulante.

13. FUNDAMENTO:
Las características de las distintas células sanguíneas pueden ponerse en
evidencia mediante la coloración diferencial de una delgada capa o
extendido de sangre, lo que permitirá estudiar los elementos sanguíneos
tanto cualitativamente como cuantitativamente.
OBJETIVO:
Determinar e identificar el número total de leucocitos contenidos en un
frotis teñido, para la determinación de posibles leucemias o para el
complemento de una biometría hemática

14. PROCEDIMIENTO:
1. Extracción de sangre con anticoagulante (EDTA)
2. Hacer un extendido o frotis sanguíneo y dejar secar.
3. Teñir con colorante:
Wright por 5 minutos Giemsa por 8 minutos

15. 4- Lavar con agua destilada y dejar secar
5- Observaciones y resultados a 100x

16. FUNDAMENTO:
Algunas tinciones citoquímicas definen más específicamente las
características de las diferentes líneas celulares que los colorantes de
Romanovsky. Estas tinciones son especialmente útiles en el diagnóstico de
malignidades hematológicas.
Los gránulos primarios de las series de neutrófilos y eosinófilos contienen
la enzima mieloperoxidasa. Los monolitos son débilmente positivos, los
linfocitos y eritroblastos son negativos. La reacción consiste en la oxidación
de la bencidina por la peroxidasa en presencia de peróxido de hidrógeno
(H2O2), el cual es reducido a agua (H2O). Usando 3,3, diaminobencidina,
los gránulos se tiñen de un color café-marrón
OBJETIVO:
La mieloperoxidasa es una de las tinciones esenciales para el diagnostico
correcto de las leucemias agudas, por ejemplo, nos permite distinguir una
leucemia linfoblástica de una leucemia mieloblástica

17. 1- Hacer frotis de medula ósea sin teñirlo.
2- Cubrirlo con solución de formalina por 30 segundos y lavarlo con
agua destilada
3- Agregar una mezcla de:
 10 ml de buffer de fosfato de pH 7.4
 7.5 mg de 3.3 diaminobencidina
 0.1 ml de peróxido de hidrogeno al 3 %
 Incubar por 15 minutos y lavar

18. 4- Contra teñir con hematoxilina de Mayer, lavar y dejar secar
5- Observaciones y resultados. 100x

19. Objetivo:
El alumno debe realizar por método directo, la técnica para determinar el número de
plaquetas por mm3 de sangre.
Fundamento:
En una pipeta de toma para eritrocito, se mezcla sangre capilar o venosa con
anticoagulante, con un líquido diluyente (oxalato de amonio al 1%) que destruye a los
glóbulos rojos facilitando el recuento de las plaquetas de un hemocitómetro.
TEORIA:
Las plaquetas o trombocitos son fragmentos de células que se originan en la médula
ósea y provienen de los megacariocitos, son de forma irregular miden de 2 a 4 micras
(m) de diámetro y desempeñan 3 funciones principales en la HEMOSTASIA.
-1. Auto agregación y formación de un tapón hemostático.
-2. La actividad tromboplastinica.
-3. La retracción del coagulo.

20. Material y equipo:
-microscopio
-agitador mecánico para pipetas de thoma
-hemocitómetro, papel filtro
-pipeta de toma para eritrocitos
-boquilla y tubo de goma
-cámara húmeda
PROCEDIMIENTO
1. Se extrae muestra biológica Con tubo EDTA
2. El mezclado de la sangre con anticoagulante debe realizarse
suavemente y durante unos 5 minutos
3. Con la pipeta de Thoma, aspirar sangre hasta la marca 1.0 y se diluye
hasta la marca de 101 con el oxalato de amonio

21. 4- Colocar las pipetas en el agitador de 10-15 minutos
5- Llenar la cámara de Neubauer con el contenido de las pipetas
debidamente mezclado, desechando las primeras 4-6 gotas
6- Empleando el microscopio, contar las plaquetas en la cuadrícula
central destinada a la cuenta de glóbulos rojos (25 cuadros
centrales)
VALORES NORMALES:
DE 150 000 A 450 000 PLAQ/MM3

22. OBJETIVO:
Obtención por el método indirecto, el número de plaquetas por mm3 de
sangre
FUNDAMENTO: Se tiñe con Wright un frotis de sangre reciente y se
observa en el microscopio diferenciando las plaquetas por su morfología.
MATERIAL Y EQUIPO:
-microscopio
-portaobjetos
Material biológico: sangre venosa o capilar con anticoagulante.
Reactivos:
-Colorante de Wright ó Giemsa
-Aceite de inmersión

23. PROCEDIMIENTO
1- Preparar un frotis sanguíneo inmediatamente después de haber
obtenido la muestra biológica y dejar secar a temperatura ambiente.
2- Teñir con colorante Wright
3- Contar el número de plaquetas por 1000 eritrocitos
4- Determinar el número de glóbulos rojos (recuento de eritrocitos)
 CALCULOS: NUMERO DE
PLAQUETAS/1000 ERITROCITOS=X
 CALCULO Xx: N° DE ERITROCITOS
7MM3=PLAQUETAS /MM3 1000
 VALORES NORMALES:
DE 200 000 A 400 000/MM3

24. FUNDAMENTO:
La lesión de una pared vascular debido a la liberación de la serotonina por
las plaquetas con la liberación de tromboplastina por los tejidos.
Desencadenado el proceso de coagulación.
OBJETIVO:
Obtención del tiempo que dura la hemorragia procedente de una punción
cutánea habitual.
MATERIAL:
 Lanceta desechable estéril
 Tiras de papel filtro
 Cronometro de mano
 Torundas con alcohol

25. PROCEDIMIENTO:
1. Se limpia perfectamente, con una torunda de algodón con alcohol, el
lóbulo de la oreja esperando que se evapore el exceso de alcohol (se
puede hacer también la punción del dedo anular izquierdo.
2. Puncione con a lanceta estéril el sitio elegido, inmediatamente
ponga en marcha el cronometro.
3. Seque la sangre sin tocar la piel con el papel filtro cada 15 segundos.
Hasta que cese la hemorragia, se detiene el cronometro anotado el
tiempo transcurrido
NOTA: Una forma práctica de contar
con exactitud el tiempo de sangrado
es contando las marcas de sangre
sobre el papel filtro que se tomo cada
15 segundos.
VALORES NORMALES: De 1 a 6 minutos
OBSERVACIONES: Se obtuvo buena punción cutánea.
RESULTADO: Dos minutos duro el sangrado

26. OBJETIVO: La obtención del tiempo requerido para la formación de un
coagulo solido
FUNDAMENTO: La sangre total formara un coagulo firme cuando se extrae
del sistema vascular y se pone a una superficie extraña
TEORIA: La coagulación sanguínea es aquella fase de la hemostasia en la
que se forma el tapón de fibrina.los materiales son demasiados sencillos
de realizar pero requieren una atención extrema en cuanto su técnica si se
requiere conseguir resultados verdaderos.
MATERIAL:
 3 tubos de ensaye
 Una pipeta
 Baño maría
 Equipo de extracción
PROCEDIMIENTO:
1. Se obtiene sangre venosa y en el momento que aparece la sangre
ponga en marcha el cronometro.

27. 2- Pasar 1 ml de sangre a los tubos de ensaye (mínimo 3 tubos).
Posteriormente, introducir los tubos en baño de agua 37°c
3- Se vierten los tubos a intervalos de medio minuto hasta que cada
uno puede invertirse formando un Angulo de 90° sin que se vierta el
contenido.
4- Registre el tiempo transcurrido en cada uno de los tubos por
separado y calcule la media aritmética, sumando los tiempos de los
3 tubos y dividiendo el resultado entre 3.
VALORES NORMALES: De 5 a 8 minutos
RESULTADO: la media aritmética nos dio 6:30 minutos

28. OBJETIVO:
la obtención del tiempo requerido para la formación de un coagulo sólido.
FUNDAMENTO:
en sangre capilar se observa la formación de coagulación tomando
correctamente el tiempo desde que se hace la punción hasta la formación
del mismo.
MATERIAL:
a) tubos capilares.
b) algodón.
c) alcohol.
d) lancetas o agujas estériles.
PROCEDIMIENTO:
1. se limpia el lóbulo de la oreja o la yema del dedo con una torunda
de algodón con alcohol.
2. con una lanceta desechable, se hace la punción y se desechan las
dos primeras gotas.

29. 3- inmediatamente después se llenan dos tubos capilares sin
anticoagulante y se pone en marcha el cronometro.
4- se coloca en una superficie plana a 37ºC después de 3 minutos se
fracturan los tubos separando uno de otro, observándose el coagulo
se detiene el reloj, anotando en tiempo transcurrido.
 VALORES NORMALES:
de 4 a 8 minutos
 RESULTADO:
6 minutos con 23 segundos

30. OBJETIVO:
obtención del tiempo de coagulación del plasma recalcificado.
FUNDAMENTO:
al plasma oxalato o citrato se le agrega CaCl2 para obtener el tiempo que
tarda la formación del coagulo.
MATERIAL Y EQUIPO:
1- baño maría.
2- tubo de ensaye.
3- cronometro.
MATERIAL BIOLOGICO:
1- sangre con anticoagulante
2- citrato de sodio 3.8%.
3- CaCl 0.02M
PROCEDIMIENTO
1- Colocar 0.1ml. De plasma en un tubo de ensaye de 10x7.5mm.
Manteniendo el baño maría a 37ºC dejándolo reposar 1 minuto.

31. 2- agregar 0.2 M de CaCl2, inmediatamente que se coloca el CaCl2 se
pone en marcha el cronometro.
3- Agitar suavemente la mezcla y dejarla reposar a 37ºC durante 70seg.
A partir de este tiempo inclinamos el tubo ligeramente cada 5 seg.
hasta que se observa la formación del coagulo se detiene el
cronometro anotando el tiempo.
VALORES NORMALES:
de 80 a 160 segundos.
RESULTADO:
145 segundos

32. OBJETIVO:
Obtención de la cantidad de fibrina formada y su retracción además se
mide el número y la función de las plaquetas.
FUNDAMENTO:
La retracción del coagulo es directamente proporcional al número de
plaquetas e inversamente al hematocrito.
MATERIAL Y EQUIPO:
 Equipo para extracción de sangre venosa
 Gradillas para tubos
 Tubos de ensaye con silicón o vacutainer
PROCEDIMIENTO
1- Se extraen 5 ml de sangre en un tubo vacutainer y se coloca en la
gradilla durante 1 hr para observar el coagulo.

33. 2- Después se despega y se retira el coagulo (en ocasiones es
conveniente dejar un aplicador dentro del tubo y una vez formado el
coagulo este se saca).
3- Se lee el volumen del líquido que quedo en el tubo (también existen
algunos glóbulos pero no es necesario hacer corrección). Este
volumen se anota como porcentaje del volumen inicial de sangre
completa en el tubo.
VALORES NORMALES: 48-64%
OBSERVACIONES:
Se retrae de las paredes de su recipiente con lo que se separa el suero
transparente y el coagulo.

34. OBJETIVO:
Medir la resistencia de las paredes capilares al aumento de presión y a la
anoxia.
FUNDAMENTO:
Ésta prueba tiene como objeto estudiar el estado de las paredes de los
vasos capilares y al mismo tiempo las funciones plaquetarias de
adhesividad y agregación, aumentando la presión interna capilar por
obstrucción del flujo venoso. El número de petequias, producido en un
área seleccionada informa de la normalidad y anormalidad de la prueba. La
prueba se hace directa al paciente.
MATERIAL Y EQUIPO:
 Equipo completo para medir presión arterial.
 Paciente.
PROCEDIMIENTO
1- Inspeccione la piel de la mitad superior del antebrazo del paciente
en busca de petequias, si las hay márquelas con un punto de tinta, si
se encuentra petequias solamente en un antebrazo, escoja el que no
tenga que hacer las pruebas.

35. 2- Tome la presión arterial.
3- Infle el brazo del baumanometro hasta que alcance la presión igual a
la mitad de la suma de las presiones.
4- Transcurridos los 3 o 5 minutos, desinfle el brazal, quítelo y espere a
que el brazo se descongestione. Cuente el número de petequias que
haya apreciado en el área marcada.
VALORES NORMALES:
De 0 a 10 petequias.
NOTA:
No debe haber más de 5 petequias en un área circular de 2.5 cm con un
una presión de 5 minutos, no más de 10 petequias.
OBSERVACIONES:
Petequias (manchas redondas y rojas sin relieve).

36. OBJETIVO:
Obtención del tiempo en segundos que tarda la protrombina en
transformarse en trombina.
FUNDAMENTO:
En presencia de un exceso de tromboplastina y una cantidad óptima de
calcio el plasma coagula rápidamente (entre 11 y 12 segundos).
PROCEDIMIENTO
1- Se colocan 4.5 ml de sangre que se obtiene por punción venosa con
jeringa estéril desechable en un tubo de 13 × 1OO mm que contenga
O.5 ml de anticoagulante para protrombina mezclar suavemente.
2- Colocar en Baño María un tubo de solución de CaCI2 al O.O2 molar
(1 o 2 ml según el numero determinaciones) tener dispuesta una
pipeta graduada en decimos para servir el CaCI2.

37. 3- Centrifugar el tubo con sangre y anticoagulante a 1500 r.p.m.
durante5 min. Separar el plasma en el otro tubo limpio y colocar un
recipiente que tenga hielo.
4- En un tubo de 1O × 75 mm colocar O.1 ml de suspensión de
tromboplastina agregar O.1 ml de plasma, agitar y colocar en Baño
María a 37° durante un minuto.
5- Agregar O.1 ml de solución CaCI2 al soplar estas ponen en marcha el
cronometro, agitar dentro del agua suavemente la mezcla de los tres
constituyentes dejar reposar hasta el segundo 1O a partir de el se
examina el tubo hasta el momento en que se detiene el cronometro
6- La prueba se repite dos veces con plasma problema los resultados no
pueden variar más de 1 segundo
 VALORES NORMALES:
De 11 a 14 segundos.

38. OBJETIVO:
Obtención del tiempo parcial para diferenciarla de la tromboplastina
completa.
FUNDAMENTO:
El extracto de cefalina no coagula el plasma hemofílico tan rápido como el
normal. Esta prueba es sensible a la deficiencia de todos los factores
plasmáticos de la coagulación excepto el factor VIII y el factor plaquetario.
MATERIAL Y EQUIPO:
 Equipo para determinación de la tromboplastina parcial.
 Tubos de ensayo 13 × 1OO mm
 Baño María a 37°C
 Sangre citratada para tiempo de protrombina, según la técnica
descrita.
PROCEDIMIENTO
1- Precalentar un baño de agua a 37° durante 3 minutos, los tubos de
13 × 1OO mm y el volumen suficiente de plasma para el numero de
pruebas que se van a efectuar, O.1 ml por prueba.

39. 2- Ponga O.1 ml de la tromboplastina reconstituida en uno de los
tubos e incubados a 37° C durante 3 minutos, midiendo
exactamente el tiempo con un cronometro.
3- Añada a O.1 ml de la solución de a solución CaCI2 O.O2 M
precalentado, expulsando rápidamente con una pipeta o jeringa,
simultáneamente empiece a medir el tiempo con el cronometro
mezclando con el contenido del tubo mediante un giro rápido.
4- Retire el tubo del baño de agua a los 3º segundos
aproximadamente inclinando con suavidad de un lado con una
velocidad no mayor de una vez por segundo.
5- Vigile la aparición de un gel detenga e cronometro en el momento
visual de su formación.
VALORES NORMALES:
 De 30-60 segundos

40. Gracias por haber leído este
pequeño manual
Este trabajo fue hecho con mucha
dedicación por parte de mis
compañeros de equipo y por mí,
esperamos y haiga sido de su
agrado, pero sobre todo, que les
haya servido para resolver sus
dudas.
¡¡Hasta Pronto!!