acuicultura

1. TECNICAS DE ALIMENTACION EN
TRUCHAS
 Disponibilidad
del alimento
Tiempo de
caída
Intensidad de
alimentación
Tamaño del
pellet.
Manejo del alimento
Incremento de talla o ganancia de peso.
Peso del alimento suministrado diariamente.
Conversión alimenticia.
Alimentar cerca de la saciedad.
Determinación del número de comidas por día de acuerdo a la
tabla de alimentación.

2. R.B.E.
 Reglas de alimentación en truchas
El pez es el primero, la alimentación diaria tiene
prioridad sobre otras actividades en la
explotación.
Un buen programa incluye alimentar a los peces
los siete días de la semana.
Muestrear los peces semanalmente para corregir
la tasa de alimentación.
Mantener a los peces sin alimentación 24 horas
antes de la selección y manipuleo.
Llevar registros individuales de cada unidad de
cultivo.
Alimentar a los peces de acuerdo a la tabla de
alimentación.
No suministrar alimento cuando el agua está
turbia.

3. FRECUENCIA DE ALIMENTACION DIARIA EN FUNCION
DE LA TALLA DEL PEZ
TALLA DEL PEZ (cm)
NUMERO DE SUMINISTROS DE
ALIMENTO AL DIA
De 2.5 á 5.0cm ó 5,435 alevinos a 700
unidades /Kg.
Alimentación a mano, en intervalos de
30 á 60 minutos; alimento de inicio.
De 5.0 á 10.5cm. ó de 700 a 76
unidades/Kg.
Alimentación a mano cada hora y
media. Se emplea alimento de 2.0 y
3.0mm. de diámetro.
De 10.5 cm ó de 76 a 25 unidades/Kg. Alimentación a mano a intervalos de
2 horas. Alimento de 3,5 á 4.00 mm.
> de 15.0 cm. Alimentación a mano, tres a cuatro
veces por día. Se les suministra pellet
de 5x6mm.

4. REGISTRO DE ALIMENTO

5. ALIMENTACION DE TRUCHAS DE
ENGORDE CON ALIMENTO
PIGMENTADO
 Se emplea pellet de 5 x 6 mm. pigmentado.
 Se proporciona a los peces 45 ó 60 días antes
de su comercialización.
 Desde los 100 a 130 gramos de peso promedio
de los peces.
 El alimento se les proporciona tres a cuatro
veces por día.

6. CÁLCULO DE LA RACION
ALIMENTICIA
La cantidad de alimento que se proporciona diariamente a las truchas
depende de: tamaño de la trucha, caudal, temperatura de agua y
calidad del alimento.
Ejemplo:
- Cantidad de truchas en un estanque : 8,000 unidades
- Peso promedio unitario : 72.7
gramos/trucha
- Talla promedio de la trucha : 18.64 cm.
- Peso total de la trucha en el estanque :
8.000 x 72.7 = 581.60 Kg.
1000
- Temperatura de agua : 12º C
- Cantidad de alimento a suministrar /día
= % tabla x biomasa = 1.8% x 581.60 = 10.470 Kg.
100 100
- 10.47 Kg. que deben ser distribuidos en 3 ó 4 raciones/día.

7. EFICACIA DE LA ALIMENTACION
 La eficiencia en el cultivo de truchas es uno de los aspectos
más importantes en las piscigranjas comerciales.
 Para determinar el índice de conversión del alimento
suministrado, se requiere conocer el peso vivo inicial, el peso
vivo final y el total del alimento consumido en el estanque o
jaula.
Conversión alimenticia (QN) = alimento consumido (kg)
ganancia en peso ( P)
La ganancia en peso, se obtiene:
Kg. finales – Kg iniciales + Kg. mortalidad = ganancia en peso.

8. TABLA: DE ALIMENTACIÓN ALICORP PARA TRUCHAS
TALLA
(cm.)
PESO UNITARIO (g.)
CANTIDAD DE ALIMENTO (% de peso corporal por día)
TEMPERATURA DEL AGUA (ºC)
8 10 12 13 14 15 16 17
2.5 0.18 4.5 2.5 6 6.8 7 7.8 8.9 9.2
2.5 – 5.0 0.18 – 1.42 3.8 5.4 5 5.7 6 6.6 7.5 7.8
5.0 – 7.0 1.42 – 4.5 2.9 3.3 3.8 4.4 5 5.3 5.8 6
7.0 – 9.8 4.5 – 12.5 2.5 2.8 3.2 3.7 4.2 4.8 5 5.2
9.8 – 12.0 12.5 – 22.5 1.9 2.2 2.5 2.9 3 3.5 3.8 4
12.0 – 14.5 22.5 – 40.0 1.5 1.7 2 2.3 2.6 3 3.4 3.6
14.5 – 17.5 40.0 – 66.6 1.5 1.7 2 2.2 2.6 2.8 3.2 3.4
17.5 – 20.0 66.6 – 100.0 1.4 1.5 1.8 2 2.3 2.6 2.9 3
20.0 – 22.0 100.0 – 142.8 1.2 1.4 1.6 1.8 2.1 2.3 2.5 2.6
22.0 – 25.0 142.8 – 200.0 1.1 1.3 1.5 1.7 1.9 2.1 2.3 2.4
29.0 – 41.0 333.3 – 909.0 0.9 1.0 1.1 1.3 1.5 1.7 1.6 1.7
41 999.9 0.7 0.8 1.0 1.1 1.2 1.3 1.4 1.5

9. R.B.E.
MANEJO DEL
PROCESO
PRODUCTIVO

10. FASE DE ALEVINAJE
 Se inicia con la salida de los alevinos
de la sala de incubación.
 En esta etapa se cumplen todas las
labores técnicas de manejo:
alimentación, selección, limpieza de
estanques, registro de mortalidad,
tratamiento de enfermedades, etc.

11. FASE DE JUVENILES
 Se inicia con peces de 11-12 cm y
peso de 15 a 17 gramos.
 Son trasladados a estanques
destinados para esta fase.
 Permanecen aproximadamente de 3 a
4 meses.
 Se cumplen las mismas actividades
técnicas que en alevinos.

12. FASE DE CRECIMIENTO-
ENGORDE
 Se inicia con la recepción de las truchas
procedentes de los estanques de juveniles.
 Como en las fases anteriores, no todos crecen
uniformemente; previa selección los más
grandes que son las cabeceras serán los
primeros en salir a la comercializacion.
 Se cumplen todas las actividades de
producción.
 Permanecen de 2.5 a 3 meses, dependiendo
del manejo.
 Las truchas se destinan al mercado de 250
gramos a más.

13. DENSIDAD DE CARGA

Referida al número o peso de truchas por unidad de cultivo
(estanque o jaula).
 A medida que la densidad de truchas aumenta, la pérdida de
alimento también crece.
 Del 5 al 8% de la población de peces en jaulas o estanques
crecen poco o no crecen.
 La capacidad de carga y los rendimientos en las unidades de
cultivo están dados en el peso por unidad de volumen (kg.
/m3).
 El peso total de truchas que se siembra en una unidad de
cultivo depende de:
Nº de peces a ser sembrados/m3 de estanque o jaula:
Peso total esperado de peces/m3 (cosecha)
=
Peso deseado del pez (cosecha)

14. EJEMPLO: Se desea producir 1,500 kg. de truchas en
una jaula de 5 x 5 x 350 m.
- Carga final/m3 = 20 kg. de truchas de 250 gramos
Nº total de truchas a ser sembradas
= 20kg/m3 de jaula a la cosecha
250 gr. a la cosecha
80 truchas de 250 gramos a la cosecha
6480 alevinos= 20 kg./m3 (cosecha)
250 gr. (cosecha)
- Estimando 8% de mortalidad.
- Se necesitará 6,480 alevinos iniciales de 7 cm.
- Se recomienda cargas de 18 a 25 kg./m3.

15. ALIMENTO Y MEDIO AMBIENTE
 El alimento constituye una fuente inevitable de
contaminación del agua.
 El agua es contaminada por las heces que
corresponden al alimento no digerido.
 Los nutrientes que crean polución
(contaminación) son el fósforo y el nitrógeno.
 El fósforo y el nitrógeno son excretados a través
de las heces, agallas y orina.
 La distribución correcta del alimento evita el
incremento de la contaminación en el agua.
 La limpieza oportuna de los estanques,
disminuye la contaminación del agua.

16. ALMACENAMIENTO DEL
ALIMENTO BALANCEADO
 Manejo de
envases.
 Apilado de
sacos con
alimento.
 Rotación de
existencias.
 Evitar contacto
con la humedad.
 Evitar la
presencia de
roedores.

17. REGISTRO DE TEMPERATURA DE
AGUA
 Llevar el control diario de temperatura del
agua y del aire (7.00 a.m., 12:00 p.m. y
17:00 p.m.)
 La temperatura es uno de los factores
externos más importantes.
 La temperatura permite dosificar la
cantidad de alimento que se suministra a
los peces.

18. REGISTRO DE TEMPERATURA

19. MEDICION DEL CAUDAL Y
LIMPIEZA DE REJILLAS
La determinación del caudal disponible, define el volumen de
producción de la instalación.
 Fórmula de Embody:
Q = (Ax), (Px), (V), (a)
Donde:
Q = descarga o caudal en m3/seg.
Ax = anchura media del río o canal
Px = profundidad media del flujo de agua
V = velocidad media del flujo de agua
a = constante (0.85)
 Limpieza continúa de las rejillas de entrada y salida del
estanque.
 Asignar esta tarea a un trabajador de la piscigranja, bajo
responsabilidad.

20. MEDICION DE CAUDAL

21. Medición de caudal con Correntómetro

22. SELECCIÓN E INVENTARIO DE
TRUCHAS
 Esta actividad se realiza cada cierto tiempo, en
los estanques o jaulas flotantes, cuando se note
diferencias en el tamaño de los peces.
 Para la distribución de los peces clasificados a
otros estanques o jaulas. Éstos deben estar
vacíos.
 Por ningún motivo se debe mezclar pesos o
tamaños similares.
 Las selecciones deben realizarse cada 30 a 45
días.

23. Seleccionador de truchas
(clasificador)

24. Personal seleccionando truchas

25. SELECCIONADOR DE TRUCHAS

26. PRECAUCIONES PARA UNA
EFICIENTE SELECCIÓN
 No alimentar a los peces 24 horas antes de la selección
 Los estanques donde se realiza la selección deben estar limpios.
 Tener la certeza que el seleccionador a usar se encuentre en buenas
condiciones.
 Realizar las tareas de selección en las primeras horas del día.
 No realizar otras tareas antes de la selección, tales como: limpieza
de estanques, profilaxis, traslado, etc.
 Determinar, con anticipación el tamaño del seleccionador a utilizar;
de tal manera que garantice separar por lo menos el 30-50% de la
biomasa del estanque o jaula flotante.
 El material de construcción de los seleccionadores
debe ser de madera liviana y resistente al agua. En
jaulas flotantes, la altura del seleccionador debe ser
mayor a 45-50 cm.

27. MEDIDAS DE LOS
SELECCIONADORES
SEPARACION
ENTRE BARRAS
TALLA X (cm) PESO MAXIMO
ACEPTADO (gr)
8.2
10.6
12.1
13.6
15.2
16.6
18.2
21.0
22.0
23.0
24.0
26.0
28.0
29.0
32.0
9.00
10.50
13.00
17.20
18.00
19.50
22.90
24.20
25.00
26.10
27.00
28.50
29.90
30.60
34.40
8.0
13.0
24.0
57.0
65.0
84.0
135.0
160.0
180.0
200.0
220.0
260.0
300.0
350.0
450.0
Fuente: HARADA (1979) y MASTROKALO (1996)

28. MORTALIDAD
 Factor importante como indicador sanitario de los peces.
 Los peces muertos pueden provocar efectos negativos sobre
el medio.
 La causa más frecuente de mortalidad son procesos
infecciosos provocados por hongos, bacterias y alimento
contaminado.
 Otros factores de mortalidad: manipulación excesiva, elevada
temperatura, acumulación de sedimentos, suministro de
alimento en horarios no adecuados, etc.
 La mortalidad debe registrarse diariamente.
 En un establecimiento piscícola, con un buen manejo, la
mortalidad acumulada hasta llegar a truchas de 250 gramos,
no debe exceder de 6% a 8%.

29. REGISTRO DE MORTALIDAD

30. MANTENIMIENTO DE
POZAS Y JAULAS.

31. R.B.E.
LIMPIEZA Y DESINFECCION DE
INFRAESTRUCTURAS HIDRAULICAS Y
PISCICOLAS
 Tener estanques y jaulas flotantes de cultivo limpios
es de vital importancia en la crianza de truchas.
 La limpieza se puede considerar como una operación
de rutina muy importante a fin de evitar la
acumulación de materia orgánica en el fondo de los
ambientes de cultivo.
 El descuido en esta actividad posibilita la proliferación
de enfermedades, disminución de oxígeno disuelto en
el agua y aumento de nitrógeno amoniacal.
 La limpieza de los estanques de cultivo se realiza
utilizando escobillones de cerda o nylon. Se limpia
paredes y piso arrastrando todo el material de
desecho en dirección de la arqueta de desagüe y

32. R.B.E.
Limpieza de estanques

33. R.B.E.
Limpieza de estanques

34. R.B.E.
Limpieza de desarenador

35. MANTENIMIENTO Y LIMPIEZA DEL
ESTANQUE DE DECANTACION
 En las piscigranjas de nuestro país los estanques de
decantación no son muy conocidos.
 La superficie de estos debe ser equivalente al 10% de
la superficie total de los estanques de la piscigranja.
 Esta infraestructura debe estar situada de tal forma
que recoja todas las aguas de los estanques de
crianza antes de ser vertidas al río.
 La limpieza debe realizarse por lo menos cada 15
días, eliminando todo el material acumulado en el
fondo.
 Una vez extraído todo el material acumulado se abre
la válvula del fondo.

36. Estanque de sedimentación

37. DESINFECCION DE EQUIPOS DE
TRABAJO E INSTALACIONES
PISCICOLAS
La limpieza y desinfección abarca:
Canales de abastecimiento,
desarenador, filtro, artesas de
incubación, tuberías, bastidores,
estanques, almacén de alimentos,
vivienda, material y equipos de trabajo.

38. DESINFECCIÓN DIARIA
- Bombillas, jarras, tazones enlozados, canaletas von Bayer,
guantes de jebe, escobillas, etc.
- Luego de concluir el trabajo diurno, todos los materiales antes
citados se dejan sumergidos en una solución desinfectante.
- La solución desinfectante se prepara en un recipiente plástico
con tapa (bidón de 20 litros).
- Las botas canilleras, botas musleras y botas pantalón de jebe,
deben enjuagarse externamente todas las tardes, en solución
desinfectante.
DESINFECCION SEMANAL
- Seines, seleccionadores, canastillas, corral de desove,
etc. Deben lavarse y enjuagarse con lechada de cal o
fumigarse en solución desinfectante.

39. IMPLEMENTOS DE MANEJO

40. DESINFECCION DE LAS
INSTALACIONES PISCICOLAS
 Luego de efectuada la limpieza de
canales, estanques y artesas de la sala de
incubación, se procede a la desinfección o
encalado con cal viva.
 En la sala de incubación la limpieza se
realiza mediante sifoneo.
 Luego de realizar la limpieza y haber
retirado las larvas y los alevinos, se
efectúa la desinfección con cal viva.

41. Encalado de
estanques
en sala de
incubación

42. PRODUCTOS QUIMICOS USADOS EN LA
DESINFECCION
 Verde de malaquita: para desinfectar huevos durante la incubación hasta la
aparición de los ojos.
 Cloruro de sodio: se emplea en el tratamiento de hongos Saprolegnia sp y
otros parásitos; dosis empleada 10-25 g/l durante 10 a 20 minutos.
 Cal viva, para canales, canaletas, estanques y artesas de incubación.
 Amonio cuaternarios: Efectivos contra bacterias hongos y algas. Se emplea en
el lavado y desinfección de utensilios, equipos y ambientes complementarios.
Se usa en dosis de 200 a 500 ppm.
 Yodóforos: desinfectante portador de yodo; actúa como bactericida, fungicida y
viricida. Se emplea en la desinfección de ovas (100 ppm por 10 minutos).
 Otros productos utilizados: formol al 40%, sulfato de cobre al 100%,
permanganato de potasio al 100%, etc.