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Para definir y enfrentar la resistencia de un
microorganismo se deben sumar el
conocimiento de los mecanismos de
resistencia, los datos obtenidos en el
laboratorio clínico y la experiencia clínica.
Las pruebas de laboratorio ponen en evidencia
tanto la resistencia intrínseca como la
extrínseca de una bacteria; pero esta última es
imposible de predecir, y es la principal causa
de fallas terapéuticas.
La resistencia clínica se evidencia por la
discrepancia entre la susceptibilidad in vitro y
el efecto visto en el huésped.
Métodos de difusión en placa o
método de Kirby-Bauer
El antibiograma disco-placa basado en el trabajo de Bauer, Kirby y
colaboradores es uno de los métodos que el Clinical Laboratory
Standards Institute (CLSI) recomienda para la determinación de la
sensibilidad bacteriana a los antimicrobianos. El antibiograma disco-placa
consiste en depositar, en la superficie de agar de una placa de petri
previamente inoculada con el microorganismo, discos de papel secante
impregnados con los diferentes antibióticos. Tan pronto el disco
impregnado de antibiótico se pone en contacto con la superficie húmeda
del agar, el filtro absorbe agua y el antibiótico difunde al agar. El
antibiótico difunde radialmente a través del espesor del agar a partir del
disco formándose un gradiente de concentración. Transcurridas 18-24
horas de incubación los discos aparecen rodeados por una zona de
inhibición.
Métodos de difusión en placa
PROCEDIMIENTO
• La lectura de los halos de inhibición debe interpretarse
como sensible (S), intermedia (I) o resistente (R) según
las categorías establecidas por el CLSI.
INTERPRETACIÓN:
• Sensible: indica que la infección ocasionada por la cepa para la que se ha
determinado la CMI o su correspondiente halo de inhibición puede tratarse de
forma adecuada empleando las dosis habituales de antimicrobiano, en función
del tipo de infección y de la especie considerada.
• Intermedio: indica que el halo de inhbición traducido en valores de CMI se
aproxima a las concentraciones de antimicrobiano alcanzables en sangre o
tejidos y que puede esperarse eficacia clínica en aquellas localizaciones en las
que se alcanzan altas cocentraciones de antimicrobiano (p. ej. orina) o cuando
se emplean dosis más elevadas de lo habitual.
• Resistente: se refiere a aquellos microorganismos que no se inhiben por las
concentraciones habitualmente alcanzadas en sangre/tejidos del
correspondiente antimicrobiano, o a aquellos microorganismos en los que
existen mecanismos de resistencias específicos para el agente estudiado en los
que no ha habido una adecuada respuesta clínica cuando se ha usado como
tratamiento el correspondiente antimicrobiano.
Se aplica a bacterias de
crecimiento rápido.
• Es una metodología aplicable a una amplia variedad de
bacterias, fundamentalmente bacterias aerobias no
exigentes de crecimiento rápido como
Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp.,
Stenotrophomonas maltophilia, Burkholderia cepacia,
Acinetobacter spp. , Staphylococcus spp. y
Enterococcus spp.
• Además, con ligeras modificaciones, puede ser aplicado
a Haemophilus spp., Neisseria gonorrhoeae,
Streptococcus pneumoniae y Streptococcus spp.
Método del Epsilon test
En el método E-test (AB Biodisk, Suecia) podemos, mediante lectura
directa, determinar la concentración inhibitoria mínima (CMI).
Consiste en una tira de plástico no poroso de 6 cm de largo por 5 mm
de ancho que incorpora un gradiente predefinido de antimicrobiano
equivalente a 15 diluciones.
El protocolo para preparar el inóculo es el mismo que para la difusión
en disco. Siguiendo el método de difusión, una vez inoculado la placa de
agar con el microorganismo, se coloca la tira de Etest sobre su
superficie, produciéndose de forma inmediata una difusión del
antibiótico desde el soporte hasta el agar, creándose de este modo a lo
largo de la tira un gradiente exponencial de las concentraciones del
antimicrobiano. Tras la incubación de las placas, se puede observar una
zona de inhibición elipsoidal y simétrica.
Métodos de dilución
La cuantificación de la actividad in vitro de los antimicrobianos se evalúa
habitualmente mediante alguna de las variantes de los métodos de dilución.
Estos métodos se basan en la determinación del crecimiento del microorganismo
en presencia de concentraciones crecientes del antimicrobiano, que se encuentra
diluido en el medio de cultivo (caldo o agar).
Las primeras determinaciones se realizaron empleando baterías de tubos con
caldo de cultivo con un rango determinado de antimicrobiano (macrodilución).
Esta metodología es muy engorrosa, por la cantidad de material y de
manipulaciones necesarias para su realización. La aparición de un sistema de
inoculación múltiple para placas de agar popularizó el método de dilución en agar,
en el que cada placa, con una cierta concentración de antimicrobiano, permite
inocular simultáneamente un gran número de microorganismos.
La utilización de micropipetas y de placas de microtitulación facilitó la utilización
del método de microdilución con caldo.
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Determinación resistencia bacteriana

  • 1. Para definir y enfrentar la resistencia de un microorganismo se deben sumar el conocimiento de los mecanismos de resistencia, los datos obtenidos en el laboratorio clínico y la experiencia clínica. Las pruebas de laboratorio ponen en evidencia tanto la resistencia intrínseca como la extrínseca de una bacteria; pero esta última es imposible de predecir, y es la principal causa de fallas terapéuticas. La resistencia clínica se evidencia por la discrepancia entre la susceptibilidad in vitro y el efecto visto en el huésped.
  • 2.
  • 3. Métodos de difusión en placa o método de Kirby-Bauer El antibiograma disco-placa basado en el trabajo de Bauer, Kirby y colaboradores es uno de los métodos que el Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI) recomienda para la determinación de la sensibilidad bacteriana a los antimicrobianos. El antibiograma disco-placa consiste en depositar, en la superficie de agar de una placa de petri previamente inoculada con el microorganismo, discos de papel secante impregnados con los diferentes antibióticos. Tan pronto el disco impregnado de antibiótico se pone en contacto con la superficie húmeda del agar, el filtro absorbe agua y el antibiótico difunde al agar. El antibiótico difunde radialmente a través del espesor del agar a partir del disco formándose un gradiente de concentración. Transcurridas 18-24 horas de incubación los discos aparecen rodeados por una zona de inhibición.
  • 4. Métodos de difusión en placa PROCEDIMIENTO
  • 5. • La lectura de los halos de inhibición debe interpretarse como sensible (S), intermedia (I) o resistente (R) según las categorías establecidas por el CLSI.
  • 6. INTERPRETACIÓN: • Sensible: indica que la infección ocasionada por la cepa para la que se ha determinado la CMI o su correspondiente halo de inhibición puede tratarse de forma adecuada empleando las dosis habituales de antimicrobiano, en función del tipo de infección y de la especie considerada. • Intermedio: indica que el halo de inhbición traducido en valores de CMI se aproxima a las concentraciones de antimicrobiano alcanzables en sangre o tejidos y que puede esperarse eficacia clínica en aquellas localizaciones en las que se alcanzan altas cocentraciones de antimicrobiano (p. ej. orina) o cuando se emplean dosis más elevadas de lo habitual. • Resistente: se refiere a aquellos microorganismos que no se inhiben por las concentraciones habitualmente alcanzadas en sangre/tejidos del correspondiente antimicrobiano, o a aquellos microorganismos en los que existen mecanismos de resistencias específicos para el agente estudiado en los que no ha habido una adecuada respuesta clínica cuando se ha usado como tratamiento el correspondiente antimicrobiano.
  • 7. Se aplica a bacterias de crecimiento rápido. • Es una metodología aplicable a una amplia variedad de bacterias, fundamentalmente bacterias aerobias no exigentes de crecimiento rápido como Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp., Stenotrophomonas maltophilia, Burkholderia cepacia, Acinetobacter spp. , Staphylococcus spp. y Enterococcus spp. • Además, con ligeras modificaciones, puede ser aplicado a Haemophilus spp., Neisseria gonorrhoeae, Streptococcus pneumoniae y Streptococcus spp.
  • 8. Método del Epsilon test En el método E-test (AB Biodisk, Suecia) podemos, mediante lectura directa, determinar la concentración inhibitoria mínima (CMI). Consiste en una tira de plástico no poroso de 6 cm de largo por 5 mm de ancho que incorpora un gradiente predefinido de antimicrobiano equivalente a 15 diluciones. El protocolo para preparar el inóculo es el mismo que para la difusión en disco. Siguiendo el método de difusión, una vez inoculado la placa de agar con el microorganismo, se coloca la tira de Etest sobre su superficie, produciéndose de forma inmediata una difusión del antibiótico desde el soporte hasta el agar, creándose de este modo a lo largo de la tira un gradiente exponencial de las concentraciones del antimicrobiano. Tras la incubación de las placas, se puede observar una zona de inhibición elipsoidal y simétrica.
  • 9.
  • 10. Métodos de dilución La cuantificación de la actividad in vitro de los antimicrobianos se evalúa habitualmente mediante alguna de las variantes de los métodos de dilución. Estos métodos se basan en la determinación del crecimiento del microorganismo en presencia de concentraciones crecientes del antimicrobiano, que se encuentra diluido en el medio de cultivo (caldo o agar). Las primeras determinaciones se realizaron empleando baterías de tubos con caldo de cultivo con un rango determinado de antimicrobiano (macrodilución). Esta metodología es muy engorrosa, por la cantidad de material y de manipulaciones necesarias para su realización. La aparición de un sistema de inoculación múltiple para placas de agar popularizó el método de dilución en agar, en el que cada placa, con una cierta concentración de antimicrobiano, permite inocular simultáneamente un gran número de microorganismos. La utilización de micropipetas y de placas de microtitulación facilitó la utilización del método de microdilución con caldo.
  • 11.