Electroforesis
INTRODUCCIÓN
Separar y analizar moléculas: proteínas
ADN/ARN
ELECTROFORESIS
... en función de su diferente movilidad al aplicar un campo eléctrico
(dependerá de su carga eléctrica)
cátodo ánodo * Moléc. (+)  polo (-) o cátodo
* Moléc. (-)  polo (+) o ánodo
ELECTROFORESIS LIBRE
 moléculas en disolución o suspensión:
poco resolutiva
Arne Tiselius
1937
(Nobel 1948)
ELECTROFORESIS DE ZONA
 SOPORTE que retiene las moléculas:
elevado poder de resolución
ánodo
cátodo
SOPORTE
EQUIPO ELECTROFORÉTICO
- +
muestra
muestra
+
fuente de
alimentación
fuente de
alimentación
cable
cable
-
tampón
tampón
cubeta
cubeta
gel
gel
electrodo
electrodo
cátodo ánodo
electrodo cátodo
ánodo
* Fuente de alimentación
* Cubeta
* Tampón de electroforesis
* Soporte electroforético
(gel)
* Dos electrodos
ánodo (+)
cátodo (-)
Componentes:
(E. horizontal)
(E. vertical)
FACTORES QUE AFECTAN A LA ELECTROFORESIS
1_ Campo eléctrico
*Diferencia de potencial: voltaje (V-voltios)
*Intensidad (A-amperios): flujo de carga eléctrica
depende de V y de R (Ley de Ohm V=RxI)
*Resistencia (R-ohmios): determinada por el soporte y tampón
electroforesis
*Temperatura: efecto Joule  refrigerantes
2_ Muestra
*Carga o densidad de carga: carga eléctrica/masa de la molécula
*Tamaño
*Forma: formas globulares avanzan más
3_ Tampón de electroforesis
*pH: determina la carga de las moléculas
generalmente es ligeramente básico  moléculas (-)
*Fuerza iónica: moderada (0.05 o 0.1 M) para que no interfiera
4_ Soporte
 No restrictivo (Tipo I): Tamaño poro >>> moléculas, no opone impedimento
a su paso  separación sólo por CARGA
* Electroforesis de proteínas: • Acetato de celulosa, papel, almidón,
agar
Tipos de Soporte
 Restrictivo (Tipo II): Tamaño poro ≈ moléculas, opone resistencia a su
paso  separación por tamaño (tamizado molecular)
* Electroforesis de proteínas: • Separación por CARGA y TAMAÑO
• Acrilamida
* Electroforesis de DNA/RNA: • Separación sólo por TAMAÑO
• Agarosa, acrilamida
SOPORTE ELECTROFORÉTICO
Gel poroso
Características
 Gel poroso (entramado tridimensional interno)
 Tiene que permitir el paso de moléculas
 Material inerte: NO puede estar cargado y no
debe adsorber las moléculas de la muestra
EN ACETATO DE CELULOSA: PROTEINOGRAMA
+ -
Campo eléctrico (DV)
Soporte: (no restrictivo) Tiras de acetato de celulosa
Electroforesis horizontal
1. Aplicación de la muestra
2. Electroforesis
3. Detección por tinción:
Azul de Coomassie
Negro amido
4. Densitometría
Aplicaciones diagnósticas en serología
(separación proteínas séricas)
muestra
Avance de las proteínas
Strip
EN GEL DE POLIACRILAMIDA (PAGE)
Electroforesis vertical
Soporte: (restrictivo) Gel de Poliacrilamida
* Polimerización de dos componentes: Acrilamida + Bisacrilamida
* Variación de la concentración  variación del tamaño de poro
[poliacrilamida] tamaño poro
1. Preparación del gel
2. Montaje de la cubeta
3. Aplicación de la muestra
4. Electroforesis
5. Detección por tinción:
Azul de Coomassie
Sales de plata
Aplicaciones:
* Separar proteínas
* Determinar peso molecular de una proteína
* Separar proteínas oligoméricas
* Separar proteínas en función de su pI
* Separar proteínas de mezclas muy complejas
* Ver si hay una proteína en concreto
EN GEL DE POLIACRILAMIDA (PAGE)
SDS-PAGE
Electroforesis 2D
Western Blot
Isoelectroenfoque
Ventajas:
* Gran poder de separación por CARGA y por TAMAÑO
* Químicamente inertes
* Transparentes (permite densitometría)
* Estables (pH, fuerza iónica, temperatura)
* Versatilidad en cuanto al tamaño de poro y entramado uniforme
SDS-PAGE
Condiciones de la PAGE:
* No desnaturalizantes: separamos por CARGA y TAMAÑO  PAGE
S-S
S-S
-
-
-
--
-
- -
-
-
--
-
- -
+ SDS
+ DTT
25 kDa
+ SDS
S-S
- -
-
-
-
-
-
-
-
-
-
--
-
- - -
-
-
-
-
-
-
-
-
- -
-
-
-
- - 44 kDa
* Desnaturalizantes: separamos sólo por TAMAÑO  SDS-PAGE
Agentes desnaturalizantes: SDS (dodecilsulfato sódico), urea,
reductores (DTT, b-mercaptoetanol)...
• SDS: detergente aniónico (-), dota a todas las proteínas de carga (-)
 todas migrarán hacia el ánodo (+), separándose sólo por tamaño
PM = 50 kDa
SDS-PAGE: determinación del peso molecular
Marcadores de peso molecular:
* Mezcla de diferentes proteínas
pre-teñidas de las que conocemos el
peso molecular.
* Por comparación podemos averiguar
el PM de nuestra proteína.
ELECTROFORESIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS
Soporte: (restrictivo)
* Gel de Agarosa  moléculas grandes (0.1-60 kpb)
* Gel de Poliacrilamida  moléculas pequeñas (6-2000 pb)
Electroforesis horizontal (agarosa) o vertical (poliacrilamida)
Separación sólo por TAMAÑO
Densidad de carga igual para todas las
moléculas por los grupos fosfato
Ácidos nucleicos = carga (-)
Aplicaciones:
* Separar, identificar y purificar fragmentos
de DNA o RNA
* Determinar tamaño de un fragmento de DNA
* Separación de cromosomas enteros
* Secuenciación de DNA
* Identificación de regiones de unión a
proteínas
* Detectar la presencia de un gen (o secuencia
específica de DNA) en una muestra
* Determinar si se expresa un gen específico
ELECTROFORESIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS
Gel de poliacrilamida
Gel de agarosa
Southern Blot
Northern Blot
EN GEL DE AGAROSA
muestra (-)
+ -
Campo eléctrico (DV)
1. Preparación del gel
2. Aplicación de la muestra
3. Electroforesis
4. Detección por tinción con Bromuro
de Etidio (BrEt): se intercala en el
DNA y al irradiarlo con luz UV
emite fluorescencia
Electroforesis horizontal
Soporte: (restrictivo) Gel de agarosa
EN GEL DE AGAROSA
muestra (-)
+ -
Campo eléctrico (DV)
1. Preparación del gel
2. Aplicación de la muestra
3. Electroforesis
4. Detección por tinción con Bromuro
de Etidio (BrEt): se intercala en el
DNA y al irradiarlo con luz UV
emite fluorescencia
Electroforesis horizontal
Soporte: (restrictivo) Gel de agarosa

Electroforesis

  • 1.
  • 2.
    INTRODUCCIÓN Separar y analizarmoléculas: proteínas ADN/ARN ELECTROFORESIS ... en función de su diferente movilidad al aplicar un campo eléctrico (dependerá de su carga eléctrica) cátodo ánodo * Moléc. (+)  polo (-) o cátodo * Moléc. (-)  polo (+) o ánodo ELECTROFORESIS LIBRE  moléculas en disolución o suspensión: poco resolutiva Arne Tiselius 1937 (Nobel 1948) ELECTROFORESIS DE ZONA  SOPORTE que retiene las moléculas: elevado poder de resolución ánodo cátodo SOPORTE
  • 3.
    EQUIPO ELECTROFORÉTICO - + muestra muestra + fuentede alimentación fuente de alimentación cable cable - tampón tampón cubeta cubeta gel gel electrodo electrodo cátodo ánodo electrodo cátodo ánodo * Fuente de alimentación * Cubeta * Tampón de electroforesis * Soporte electroforético (gel) * Dos electrodos ánodo (+) cátodo (-) Componentes: (E. horizontal) (E. vertical)
  • 4.
    FACTORES QUE AFECTANA LA ELECTROFORESIS 1_ Campo eléctrico *Diferencia de potencial: voltaje (V-voltios) *Intensidad (A-amperios): flujo de carga eléctrica depende de V y de R (Ley de Ohm V=RxI) *Resistencia (R-ohmios): determinada por el soporte y tampón electroforesis *Temperatura: efecto Joule  refrigerantes 2_ Muestra *Carga o densidad de carga: carga eléctrica/masa de la molécula *Tamaño *Forma: formas globulares avanzan más 3_ Tampón de electroforesis *pH: determina la carga de las moléculas generalmente es ligeramente básico  moléculas (-) *Fuerza iónica: moderada (0.05 o 0.1 M) para que no interfiera 4_ Soporte
  • 5.
     No restrictivo(Tipo I): Tamaño poro >>> moléculas, no opone impedimento a su paso  separación sólo por CARGA * Electroforesis de proteínas: • Acetato de celulosa, papel, almidón, agar Tipos de Soporte  Restrictivo (Tipo II): Tamaño poro ≈ moléculas, opone resistencia a su paso  separación por tamaño (tamizado molecular) * Electroforesis de proteínas: • Separación por CARGA y TAMAÑO • Acrilamida * Electroforesis de DNA/RNA: • Separación sólo por TAMAÑO • Agarosa, acrilamida SOPORTE ELECTROFORÉTICO Gel poroso Características  Gel poroso (entramado tridimensional interno)  Tiene que permitir el paso de moléculas  Material inerte: NO puede estar cargado y no debe adsorber las moléculas de la muestra
  • 6.
    EN ACETATO DECELULOSA: PROTEINOGRAMA + - Campo eléctrico (DV) Soporte: (no restrictivo) Tiras de acetato de celulosa Electroforesis horizontal 1. Aplicación de la muestra 2. Electroforesis 3. Detección por tinción: Azul de Coomassie Negro amido 4. Densitometría Aplicaciones diagnósticas en serología (separación proteínas séricas) muestra Avance de las proteínas Strip
  • 7.
    EN GEL DEPOLIACRILAMIDA (PAGE) Electroforesis vertical Soporte: (restrictivo) Gel de Poliacrilamida * Polimerización de dos componentes: Acrilamida + Bisacrilamida * Variación de la concentración  variación del tamaño de poro [poliacrilamida] tamaño poro 1. Preparación del gel 2. Montaje de la cubeta 3. Aplicación de la muestra 4. Electroforesis 5. Detección por tinción: Azul de Coomassie Sales de plata
  • 8.
    Aplicaciones: * Separar proteínas *Determinar peso molecular de una proteína * Separar proteínas oligoméricas * Separar proteínas en función de su pI * Separar proteínas de mezclas muy complejas * Ver si hay una proteína en concreto EN GEL DE POLIACRILAMIDA (PAGE) SDS-PAGE Electroforesis 2D Western Blot Isoelectroenfoque Ventajas: * Gran poder de separación por CARGA y por TAMAÑO * Químicamente inertes * Transparentes (permite densitometría) * Estables (pH, fuerza iónica, temperatura) * Versatilidad en cuanto al tamaño de poro y entramado uniforme
  • 9.
    SDS-PAGE Condiciones de laPAGE: * No desnaturalizantes: separamos por CARGA y TAMAÑO  PAGE S-S S-S - - - -- - - - - - -- - - - + SDS + DTT 25 kDa + SDS S-S - - - - - - - - - - - -- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - 44 kDa * Desnaturalizantes: separamos sólo por TAMAÑO  SDS-PAGE Agentes desnaturalizantes: SDS (dodecilsulfato sódico), urea, reductores (DTT, b-mercaptoetanol)... • SDS: detergente aniónico (-), dota a todas las proteínas de carga (-)  todas migrarán hacia el ánodo (+), separándose sólo por tamaño PM = 50 kDa
  • 10.
    SDS-PAGE: determinación delpeso molecular Marcadores de peso molecular: * Mezcla de diferentes proteínas pre-teñidas de las que conocemos el peso molecular. * Por comparación podemos averiguar el PM de nuestra proteína.
  • 11.
    ELECTROFORESIS DE ÁCIDOSNUCLEICOS Soporte: (restrictivo) * Gel de Agarosa  moléculas grandes (0.1-60 kpb) * Gel de Poliacrilamida  moléculas pequeñas (6-2000 pb) Electroforesis horizontal (agarosa) o vertical (poliacrilamida) Separación sólo por TAMAÑO Densidad de carga igual para todas las moléculas por los grupos fosfato Ácidos nucleicos = carga (-)
  • 12.
    Aplicaciones: * Separar, identificary purificar fragmentos de DNA o RNA * Determinar tamaño de un fragmento de DNA * Separación de cromosomas enteros * Secuenciación de DNA * Identificación de regiones de unión a proteínas * Detectar la presencia de un gen (o secuencia específica de DNA) en una muestra * Determinar si se expresa un gen específico ELECTROFORESIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS Gel de poliacrilamida Gel de agarosa Southern Blot Northern Blot
  • 13.
    EN GEL DEAGAROSA muestra (-) + - Campo eléctrico (DV) 1. Preparación del gel 2. Aplicación de la muestra 3. Electroforesis 4. Detección por tinción con Bromuro de Etidio (BrEt): se intercala en el DNA y al irradiarlo con luz UV emite fluorescencia Electroforesis horizontal Soporte: (restrictivo) Gel de agarosa
  • 14.
    EN GEL DEAGAROSA muestra (-) + - Campo eléctrico (DV) 1. Preparación del gel 2. Aplicación de la muestra 3. Electroforesis 4. Detección por tinción con Bromuro de Etidio (BrEt): se intercala en el DNA y al irradiarlo con luz UV emite fluorescencia Electroforesis horizontal Soporte: (restrictivo) Gel de agarosa