ESTUDIOS INMUNOLOGICOS DEL DONANTE Y DEL RECEPTOR DE TR

1. ESTUDIOS INMUNOLOGICOS
DEL DONANTE Y DEL
RECEPTOR DE TRASPLANTE
RENAL
MR3 NEFROLOGIA DIEGO PORTOCARRERO

2.  TRASPLANTE RENAL MEJORA
SUPERVIVENCIA DEL PACIENTE
CON ERC
 PRINCIPAL BARRERA: RESPUESTA
INMUNE FRENTE AL ORGANO
TRASPLANTADO
 IMPORTANTE CONOCIMIENTO DEL
SISTEMA INMUNE, ESTUDIO
DEDIFERENTES PRUEBAS
(METODO – EVOLUCION - USO –
INDICACIONES)

3.  INMUNOBIOLOGIA DEL TRASPLANTE
• CPH Y HLA
• RECONOCIMIENTO ANTIGENICO
 ESTUDIOS INMUNOLOGICOS DEL DONANTE Y RECEPTOR DE TRASPLANTE RENAL
• TIPIFICACION DEL HLA
• DETECCION DE ANTICUERPOS CIRCULANTES
• PRUEBA CRUZADA

4. HLA

5. COMPLEJO PRINCIPAL DE
HISTOCOMPATIBILIDAD Y HLA
 GLICOPROTEINAS DE MEMBRANA:
PRESENTAR ANTIGENOS A
CELULAS T
 “IDENTIFICACION CELULAR”
 ELEVADO POLIMORFISMO
(MULTIPLES ALELOS DE CADA GEN
EN LA POBLACION) – POLIGENIA
(REGION DEL GENOMA MAS
DENSAMENTE POBLADO)
 GENES CODIFICADORES (HLA):
CROMOSOMA 6

6. COMPLEJO PRINCIPAL DE
HISTOCOMPATIBILIDAD Y HLA

7. RECONOCIMIENTO ANTIGENICO
 FASE EFECTORA
 FASE DE RECONOCIMIENTO: INDUCCION DE LA RESPUESTA.
VIA DIRECTA (AGUDO) E INDIRECTA (CRONICO)

8. TIPIFICACION DEL HLA
 RELACION INCUESTIONABLE ENTRE COMPATIBILIDAD Y
EVOLUCION DEL INJERTO
 METODOS SEROLOGICOS:
PRUEBA DE MICROLINFOTOXICIDAD DE TERASAKI :
CITOTOXICIDAD DEPENDIENTE DE COMPLEMENTO (CDC)
BARATA Y RAPIDA, PERO ABANDONADA DE LA RUTINA
 METODOS MOLECULARES:
MAYOR NUMERO DE ESPECIFICIDADES (2 A 4 DIGITOS).
IMPORTANTE EN PCTES HIPERSENSIBILIZADOS
EXONES 2 Y 3 DEL HLA I Y EXON 2 DEL HLA II  3 TIPOS:
• SECUENCIAS RECONOCIDAS EN SITIOS DE RESTRICCION
(PCR – RFLP)
• BASADAS EN SECUENCIAS ESPECIFICAS (PCR SSP:
SEQUENCE SPECIFIC PRIMING)  RAPIDA, PERMITE
TRABAJAR CON LA MUESTRA DE DONANTE CADAVER
• PCR SSO: SEQUENCE SPECIFIC OLIGONUCLEOTIDE :
HIPRIDACION CON SONDAS EN UN SOPORTE SOLIDO
• PCR SECUENCIACION Y NEXT GENERATION SEQUENCING
(NGS) : CARACTERIZACION COMPLETA DEL HLA

9. TIPIFICACION DEL HLA
 RELACION INCUESTIONABLE ENTRE COMPATIBILIDAD Y
EVOLUCION DEL INJERTO
 METODOS SEROLOGICOS:
PRUEBA DE MICROLINFOTOXICIDAD DE TERASAKI :
CITOTOXICIDAD DEPENDIENTE DE COMPLEMENTO (CDC)
BARATA Y RAPIDA, PERO ABANDONADA DE LA RUTINA
 METODOS MOLECULARES:
MAYOR NUMERO DE ESPECIFICIDADES (2 A 4 DIGITOS).
IMPORTANTE EN PCTES HIPERSENSIBILIZADOS
EXONES 2 Y 3 DEL HLA I Y EXON 2 DEL HLA II  3 TIPOS:
• SECUENCIAS RECONOCIDAS EN SITIOS DE RESTRICCION
(PCR – RFLP)
• BASADAS EN SECUENCIAS ESPECIFICAS (PCR SSP:
SEQUENCE SPECIFIC PRIMING)  RAPIDA, PERMITE
TRABAJAR CON LA MUESTRA DE DONANTE CADAVER
• PCR SSO: SEQUENCE SPECIFIC OLIGONUCLEOTIDE :
HIPRIDACION CON SONDAS EN UN SOPORTE SOLIDO
• PCR SECUENCIACION Y NEXT GENERATION SEQUENCING
(NGS) : CARACTERIZACION COMPLETA DEL HLA

10. TIPIFICACION DEL HLA
 RELACION INCUESTIONABLE ENTRE COMPATIBILIDAD Y
EVOLUCION DEL INJERTO
 METODOS SEROLOGICOS:
PRUEBA DE MICROLINFOTOXICIDAD DE TERASAKI :
CITOTOXICIDAD DEPENDIENTE DE COMPLEMENTO (CDC)
BARATA Y RAPIDA, PERO ABANDONADA DE LA RUTINA
 METODOS MOLECULARES:
MAYOR NUMERO DE ESPECIFICIDADES (2 A 4 DIGITOS).
IMPORTANTE EN PCTES HIPERSENSIBILIZADOS
EXONES 2 Y 3 DEL HLA I Y EXON 2 DEL HLA II  3 TIPOS:
• SECUENCIAS RECONOCIDAS EN SITIOS DE RESTRICCION
(PCR – RFLP)
• BASADAS EN SECUENCIAS ESPECIFICAS (PCR SSP:
SEQUENCE SPECIFIC PRIMING)  RAPIDA, PERMITE
TRABAJAR CON LA MUESTRA DE DONANTE CADAVER
• PCR SSO: SEQUENCE SPECIFIC OLIGONUCLEOTIDE :
HIPRIDACION CON SONDAS EN UN SOPORTE SOLIDO
• PCR SECUENCIACION Y NEXT GENERATION SEQUENCING
(NGS) : CARACTERIZACION COMPLETA DEL HLA

11. TIPIFICACION DEL HLA
 RELACION INCUESTIONABLE ENTRE COMPATIBILIDAD Y
EVOLUCION DEL INJERTO
 METODOS SEROLOGICOS:
PRUEBA DE MICROLINFOTOXICIDAD DE TERASAKI :
CITOTOXICIDAD DEPENDIENTE DE COMPLEMENTO (CDC)
BARATA Y RAPIDA, PERO ABANDONADA DE LA RUTINA
 METODOS MOLECULARES:
MAYOR NUMERO DE ESPECIFICIDADES (2 A 4 DIGITOS).
IMPORTANTE EN PCTES HIPERSENSIBILIZADOS
EXONES 2 Y 3 DEL HLA I Y EXON 2 DEL HLA II  3 TIPOS:
• SECUENCIAS RECONOCIDAS EN SITIOS DE RESTRICCION
(PCR – RFLP)
• BASADAS EN SECUENCIAS ESPECIFICAS (PCR SSP:
SEQUENCE SPECIFIC PRIMING)  RAPIDA, PERMITE
TRABAJAR CON LA MUESTRA DE DONANTE CADAVER
• PCR SSO: SEQUENCE SPECIFIC OLIGONUCLEOTIDE :
HIPRIDACION CON SONDAS EN UN SOPORTE SOLIDO
• PCR SECUENCIACION Y NEXT GENERATION SEQUENCING
(NGS) : CARACTERIZACION COMPLETA DEL HLA

12. TIPIFICACION DEL HLA
 RELACION INCUESTIONABLE ENTRE COMPATIBILIDAD Y
EVOLUCION DEL INJERTO
 METODOS SEROLOGICOS:
PRUEBA DE MICROLINFOTOXICIDAD DE TERASAKI :
CITOTOXICIDAD DEPENDIENTE DE COMPLEMENTO (CDC)
BARATA Y RAPIDA, PERO ABANDONADA DE LA RUTINA
 METODOS MOLECULARES:
MAYOR NUMERO DE ESPECIFICIDADES (2 A 4 DIGITOS).
IMPORTANTE EN PCTES HIPERSENSIBILIZADOS
EXONES 2 Y 3 DEL HLA I Y EXON 2 DEL HLA II  3 TIPOS:
• SECUENCIAS RECONOCIDAS EN SITIOS DE RESTRICCION
(PCR – RFLP)
• BASADAS EN SECUENCIAS ESPECIFICAS (PCR SSP:
SEQUENCE SPECIFIC PRIMING)  RAPIDA, PERMITE
TRABAJAR CON LA MUESTRA DE DONANTE CADAVER
• PCR SSO: SEQUENCE SPECIFIC OLIGONUCLEOTIDE :
HIPRIDACION CON SONDAS EN UN SOPORTE SOLIDO
• PCR SECUENCIACION Y NEXT GENERATION SEQUENCING
(NGS) : CARACTERIZACION COMPLETA DEL HLA

13. COMPATIBILIDAD HLA ENTRE
DONANTE Y RECEPTOR
 A MAYOR COMPATIBLIDAD MENOR
RIESGO DE RESPUESTA INMUNE
 SE PERSIGUE COMPATIBILIDAD DE LOCI
DR, A Y B ( ULTIMAMENTE C Y DQ)

14. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES

15. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES
 DIRIGIDOS ESPECIFICAMENTE FRENTE A LOS
ANTIGENOS LEUCOCITARIOS HUMANOS
 SE PRODUCEN COMO RESPUESTA A ANTIGENOS HLA
ALOGENICOS (EMBARAZOS, TRANSFUSIONES, TX
PREVIOS)
 PACIENTES EN LISTA DE ESPERA DEBEN SER
SOMETIDOS A UN ESTUDIO (TRIMESTRALMENTE O
ANTE CUALQUIER EVENTO SENSIBILIZANTE) PARA
DETECTAR LA EXISTENCIA, EVOLUCION Y
ESPECIFICIDAD DE ANTICUERPO ANTI HLA
 EQUILIBRIO ENTRE SENSIBILIDAD Y ESPECIFICIDAD: A
MAS ANTICUERPOS MENOS POSIBILIDAD DE
ENCONTRAR DONANTE COMPATIBLE
 2 TIPOS:
• ANTIGENOS NO ESPECIFICO: CROSSMATCH POR CDC
Y CROSSMATCH POR CITOMETRIA DE FLUJO
• ANTIGENO ESPECIFICO: ELISA, CITOMETRIA DE FLUJO
CON PERLAS Y LUMINEX (DSA)

16. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES
 DETECCION DE AC POR CITOTOXICIDAD:
EMPLEA MICROLIFOTOXICIDAD DE TERASAKI  SE ENFRENTA EL
SUERO DEL RECEPTOR A UN PANEL REPRESENTATIVO DE LINFOCITOS
DE LA POBLACION  SE DETERMINA EL NRO DE DONANTES CONTRA
LOS QUE REACCIONA EL SUERO (PORCENTAJE DE CELULAS MUERTAS)
 PANEL REACTIVE ACTIVITY (PRA)
TIENE BAJA SENSIBILIDAD
OBEJTIVO DEL PRA:
• CONOCER EL GRADO DE SENSIBILIZACION ANTES DE UN
TRASPLANTE, DE SER ASI CONOCER QUE AC SE HAN
PRODUCIDO.
• HACER UN SEGUIMIENTO POST TRASPLANTE POR POSIBLE
RECHAZO O POSIBLE 2DO TRASPLANTE
HIPERSENSIBILIZADO MAYOR DE 80%: PACIENTE HIPERINMUNIZADO
MENOR POSIBILIDAD DE TRASPLANTARSE, MENOR SUPERVIVENCIA
DEL INJERTO Y MENOR SUPERVIVENCIA DEL PACIENTE  POR ESO SE
HACE PRIODICAMENTE. TITULOS ALTOS DE AC  REACCION CONTRA
ANTIGENOS SIMILARES
AHORA SE USA EL cPRA  SE BASA EN ANTIGENOS HLA
IDENTIFICADOS  SE CALCULA A PARTIR DE LOS HLA
PREDOMINANTES EN LA POBLACION  REPRESENTA EL PORCENTAJE
DE DONANTES QUE EXPRESAN HLA PROHIBIDOS

17. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES POR FASE SOLIDA
 EN FASE SOLIDA (NO SE USA CELULAS)
 POR CITOMETRIA DE FLUJO
DETECTA ANTICUERPOS CON ANTICUERPOS CONJUGADOS A
FLUOROCROMOS (LA FLUORESCENCIA LA HACE UNA TECNICA MAS
SENSIBLE)
 ELISA: INMUNOPRECIPITADOS DE GP DE HLA EN POCILLOS DE
UNA MICROPLACA
 SE USA TAMBIEN MICROPARTICULAS (MICROESFERAS) DE
POLIESTIRENO QUE LLEVAN EN LA SUPERFICIE MOLECULAS DE
HLA.
 LUMINEX ADEMAS DE FLUOROCROMO (SEÑAL POSITIVA 
SENSIBILIDAD) SE USAN MICROPARTICULAS DE COLOR
(ESPECIFICIDAD)
VENTAJAS:
CUANTIFICAR POR INTENSIDAD DE LA FLUORESCENCIA : INTENSIDAD
MEDIA DE FLUORESCENCIA (MFI)  UMBRAL ENTRE 3000 Y 5000 PERO
OJO CON EFECTO PROZONA (ALTAS [ ] DE AC ENMASCARADAS POR
BAJO MFI POR EXCESIVO ANTI HLA)
DETALLA ESPECIFICIDADES ANTIGENICAS : ANTIGENOS PROHIBIDOS Y
PERMITIDOS

18. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES POR FASE SOLIDA
 EN FASE SOLIDA (NO SE USA CELULAS)
 POR CITOMETRIA DE FLUJO
DETECTA ANTICUERPOS CON ANTICUERPOS CONJUGADOS A
FLUOROCROMOS (LA FLUORESCENCIA LA HACE UNA TECNICA MAS
SENSIBLE)
 ELISA: INMUNOPRECIPITADOS DE GP DE HLA EN POCILLOS DE
UNA MICROPLACA
 SE USA TAMBIEN MICROPARTICULAS (MICROESFERAS) DE
POLIESTIRENO QUE LLEVAN EN LA SUPERFICIE MOLECULAS DE
HLA.
 LUMINEX ADEMAS DE FLUOROCROMO (SEÑAL POSITIVA 
SENSIBILIDAD) SE USAN MICROPARTICULAS DE COLOR
(ESPECIFICIDAD)
VENTAJAS:
CUANTIFICAR POR INTENSIDAD DE LA FLUORESCENCIA : INTENSIDAD
MEDIA DE FLUORESCENCIA (MFI)  UMBRAL ENTRE 3000 Y 5000 PERO
OJO CON EFECTO PROZONA (ALTAS [ ] DE AC ENMASCARADAS POR
BAJO MFI POR EXCESIVO ANTI HLA)
DETALLA ESPECIFICIDADES ANTIGENICAS : ANTIGENOS PROHIBIDOS Y
PERMITIDOS

19. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES
 ANTICUERPOS DONANTE
ESPECIFICO: PRESENCIA DE
ANTICUERPOS DIRIGIDOS
CONTRA ANTIGENOS HLA
EXPRESADOS EN LOS
ORGANOS DEL DONANTE:
PREFORMADOS O DE NOVO.
PRINCIPAL FORMA DE DAÑO :
ACTIVACION DEL
COMPLEMENTO (citotoxicidad
y activacion de endotelio
vascular)
 AUMENTA EL RIESGO DE
PERDIDA DEL INJERTO

20. DETECCION DE ANTICUERPOS
CIRCULANTES
 ANTICUERPOS DONANTE
ESPECIFICO: PRESENCIA DE
ANTICUERPOS DIRIGIDOS
CONTRA ANTIGENOS HLA
EXPRESADOS EN LOS
ORGANOS DEL DONANTE:
PREFORMADOS O DE NOVO.
PRINCIPAL FORMA DE DAÑO :
ACTIVACION DEL
COMPLEMENTO (citotoxicidad
y activacion de endotelio
vascular)
 AUMENTA EL RIESGO DE
PERDIDA DEL INJERTO

21. PRUEBA CRUZADA

22. PRUEBA CRUZADA (CROSSMATCH,
XM)
 CONSISTE EN EL ANALISIS DE LA SENSIBILIZACION
ESPECIFICA DEL RECEPTOR CONTRA EL DONANTE :
DETECCION DE AC PREFORMADOS
 POR LINFOCITOTOXICIDAD (XM-CDC) 1 HR - 1HR
15MIN
• INCUBAR SUEROS DEL RECEPTOR CON LINFOCITOS
DEL DONANTE: SI SE PRODUCE LISIS MAYOR AL 20%
(AC CONTRA AG DEL DONANTE)  ELEVADO RIESGO
DE RECHAZO HIPERAGUDO
• SE HACE PRUEBA CON EL SUERO MAS REACTIVO
HISTORICAMENTE Y EL MAS RECIENTE
• PRUEBA CRUZADA ACTUAL NEGATIVA + PRUEBA
CRUZADA HISTORICA POSITIVA ??? SE CONTINUA SI ES
QUE PRUEBA HISTORICA TIENE MAS DE UN AÑO
• HAY AC NO DIRIGIDOS CONTRA EL SISTEMA HLA (EN
ENDOTELIO CONTRA CEL DEL ENDOTELIO) ANTI MICA.
NO SE DETECTAN POR PERO SI POR LUMINEX

23. PRUEBA CRUZADA (CROSSMATCH,
XM)
 CONSISTE EN EL ANALISIS DE LA SENSIBILIZACION
ESPECIFICA DEL RECEPTOR CONTRA EL DONANTE :
DETECCION DE AC PREFORMADOS
 POR LINFOCITOTOXICIDAD (XM-CDC) 1 HR - 1HR
15MIN
• INCUBAR SUEROS DEL RECEPTOR CON LINFOCITOS
DEL DONANTE: SI SE PRODUCE LISIS MAYOR AL 20%
(AC CONTRA AG DEL DONANTE)  ELEVADO RIESGO
DE RECHAZO HIPERAGUDO
• SE HACE PRUEBA CON EL SUERO MAS REACTIVO
HISTORICAMENTE Y EL MAS RECIENTE
• PRUEBA CRUZADA ACTUAL NEGATIVA + PRUEBA
CRUZADA HISTORICA POSITIVA ??? SE CONTINUA SI ES
QUE PRUEBA HISTORICA TIENE MAS DE UN AÑO
• HAY AC NO DIRIGIDOS CONTRA EL SISTEMA HLA (EN
ENDOTELIO CONTRA CEL DEL ENDOTELIO) ANTI MICA.
NO SE DETECTAN POR PERO SI POR LUMINEX

24. PRUEBA CRUZADA (CROSSMATCH,
XM)
 CONSISTE EN EL ANALISIS DE LA SENSIBILIZACION
ESPECIFICA DEL RECEPTOR CONTRA EL DONANTE :
DETECCION DE AC PREFORMADOS
 POR LINFOCITOTOXICIDAD (XM-CDC) 1 HR - 1HR
15MIN
• INCUBAR SUEROS DEL RECEPTOR CON LINFOCITOS
DEL DONANTE: SI SE PRODUCE LISIS MAYOR AL 20%
(AC CONTRA AG DEL DONANTE)  ELEVADO RIESGO
DE RECHAZO HIPERAGUDO
• SE HACE PRUEBA CON EL SUERO MAS REACTIVO
HISTORICAMENTE Y EL MAS RECIENTE
• PRUEBA CRUZADA ACTUAL NEGATIVA + PRUEBA
CRUZADA HISTORICA POSITIVA ??? SE CONTINUA SI ES
QUE PRUEBA HISTORICA TIENE MAS DE UN AÑO
• HAY AC NO DIRIGIDOS CONTRA EL SISTEMA HLA (EN
ENDOTELIO CONTRA CEL DEL ENDOTELIO) ANTI MICA.
NO SE DETECTAN POR PERO SI POR LUMINEX

25. PRUEBA CRUZADA (CROSSMATCH,
XM)
 CONSISTE EN EL ANALISIS DE LA SENSIBILIZACION
ESPECIFICA DEL RECEPTOR CONTRA EL DONANTE :
DETECCION DE AC PREFORMADOS
 POR LINFOCITOTOXICIDAD (XM-CDC) 1 HR - 1HR
15MIN
• INCUBAR SUEROS DEL RECEPTOR CON LINFOCITOS
DEL DONANTE: SI SE PRODUCE LISIS MAYOR AL 20%
(AC CONTRA AG DEL DONANTE)  ELEVADO RIESGO
DE RECHAZO HIPERAGUDO
• SE HACE PRUEBA CON EL SUERO MAS REACTIVO
HISTORICAMENTE Y EL MAS RECIENTE
• PRUEBA CRUZADA ACTUAL NEGATIVA + PRUEBA
CRUZADA HISTORICA POSITIVA ??? SE CONTINUA SI ES
QUE PRUEBA HISTORICA TIENE MAS DE UN AÑO
• HAY AC NO DIRIGIDOS CONTRA EL SISTEMA HLA (EN
ENDOTELIO CONTRA CEL DEL ENDOTELIO) ANTI MICA.
NO SE DETECTAN POR PERO SI POR LUMINEX

26. PRUEBA CRUZADA
 POR CITOMETRIA DE FLUJO (CF XM)
 SE USAN AC ANTI IGG CONJUGADOS A
FLUOROCROMO
 VENTAJA: DETECTA AC A TITULOS
BAJOS Y AC QUE NO ACTIVAN EL
COMPLEMENTO
 DESVENTAJA: MENOS ESPECIFICO
 AC DETECTADOS POR ESTE METODO
SON MUY NOCIVOS (RECHAZOS MAS
FRECUENTES Y GRAVES) 
ACONSEJABLE REALIZARLA EN
PACIENTES QUE PERDIERON INJERTO
DE FORMA PRECOZ Y EN PACIENTES
SENSIBILIZADOS PREVIO AL
TRASPLANTE

27. PRUEBA CRUZADA VIRTUAL (VXM)
 CONOCER HLA DEL DONANTE Y AC EN EL SUERO DEL RECEPTOR  SI EL DONANTE TIENE AG PROHIBIDO PREVISIBLEMENTE PRUEBA
CRUZADA SERA POSITIVA = PRUEBA CRUZADA VIRTUAL POSITIVA
 EVITANDO USAR CDC O CITOMETRIA
 VENTAJAS:
• GANAR TIEMPO Y VER SI EL ORGANO ES VALIDO PARA UN RECEPTOR EN OTRA CIUDAD.
• AÑADE MAYOR PRECISION AL CROSSMATCH
• INDICADA EN PACIENTES SENSIBILIZADOS
• MEJOR ELECCION PAREJA D-R (MAYOR ESPECIFICIDAD)
• MENOR TIEMPO DE ISQUEMIA FRIA
 DESVENTAJAS:
• REQUIERE UNA TIPIFICACION EXACTA Y COMPLETA DEL HLA DEL DONANATE Y TIPIFICACION EXACTA DE TODOS LOS AC ANTI HLA DEL
RECEPTOR (COSTOS)
• POSIBILIDAD DE NEGAR UN ORGANO A UN PACIENTE QUE PODRIA SER TRASPLANTADO CON EXITO
• XM CDC (-) SE CORRESPONDE CON MUY ALTA FRECUENCIA A VXM (-) PERO SI XM (+) Y VXM (-) ???

28. SELECCION DE ANTICUERPOS
BASADA EN EPITOPOS:
LOS AC SOLO RECONOCEN
CIERTAS REGIONES
INMUNOGENICAS EN TODA LA
MOLECULA DEL HLA (EPITOPOS):
TRIPLETS O EPLETS, Y SE UNEN
POR REGIONES DETERMINANTES
DE COMPLEMENTARIDAD (CDR) 
PARATOPO … EL SIGUIENTE PASO
TENER UNA LISTA COMPLETA DE
ESOS EPITOPOS PARA USARLOS
EN LA COMPATIBILIDAD

29. CONCLUSIONES
 CUANTIFICAR Y MINIMIZAR LA PERDIDA DEL INJERTO A CORTO Y LARGO
PLAZO
 LOS RESULTADOS NO SOLO EVITAN TRASPLANTES DE ALTO RIESGO, SINO
QUE ADEMAS AYUDAN EN LA ELECCION DE UN TRATAMIENTO
ADECUADO DE ACUERDO A CADA NIVEL DE RIESGO
 PARA DETERMINAR LOS ALOANTICUERPOS EXISTEN DIFERENTES
METODOS CON DIFERENTE SENSIBILIDAD Y DIFERENTE VALOR
PRONOSTICO, UNOS DETERMINAN EL RIESGO DE RECHAZO
HIPERAGUDO, OTROS EL RIESGO DE PERDIDA DE INJERTO EN
RETRASPLANTES

30. BIBLIOGRAFIA
 Molina J, Navas A, Aguera. Avances en inmunologia del trasplante renal.
NefroPlus 2018;10(2):11-19.
 Tait BD, Hudson F, Cantwell L, Brewin G, Holdworth R, Bennett G, Jose M.
Review article: Luminex technology for HLA antibody detection in organ
transplantation. Nephrology 2009; 14: 247-254.
 Lim WH, Wong G, Heidt S, Claas FHJ. Novel aspects of epitope matching and
practical application in kidney transplantation. Kidney Int. 2018;93:314-24.
 Terasaki PI, Ozawa M, Castro R. Four-year follow-up of a prospective trial of
HLA and MICA antibodies on kidney graft survival. Am J Transplant 2007; 7:
408-415.