SEPARACION Y ESPECTRO DE
ABSORCION DE PIGMENTOS
VEGETALES
Que son los pigmentos
vegetales?
En general, el color que presenta un
determinado tejido u órgano vegetal,
depende del predominio de un
pigmento o de la combinación de
varios de ellos, los “pigmentos” Son
Moléculas capaces de absorber y
reflejar la luz, estos les dan el color
característico a las plantas.
Clorofila
Las mas comunes
 Clorofila a: que tiene
un núcleo de magnesio
y un radical del grupo
metilo en el anillo a.
Clorofila b: tiene un
núcleo de magnesio y un
radical del grupo
formilo(aldehido) en el
anillo b. Park s. Novel. physicochemical and enviromental plant
physilogy, fourth edition . Capitulo 5
Carotenos
 Absorben la mayoría de
luz azul y verde en el
espectro.
 Están constituidos por
40 átomos de C.
 A la cadena principal se
ligan 8 unidades de
isopreno que se ligan 4
a 4 con dobles enlaces.
Park s. Novel. physicochemical and enviromental plant physilogy, fourth
edition. Capitulo 5
Xantofilas
La xantofila o xantófila es una
sustancia química que realiza
acción fotosintética y que
pertenece al grupo de los
carotenoides. Se puede
encontrar en la hojas de las
plantas, pero también en
semillas como la del maíz
presenta una coloración que
varia del amarillo, naranja al
rojo pardo.
Cromatografía
La cromatografía es una técnica
de separación física de mezclas,
la cual mediante el uso las
diferentes fuerzas de adsorción
que presentan en los compuestos
y la velocidad con la que son
arrastrados los compuestos sobre
un soporte revela la identidad de
los componentes de una mezcla.
La cromatografía usa el principio
de una fase móvil y una fase
estacionaria.
Espectrofotómetro
La palabra espectrofotómetro se
deriva de la palabra latina
spectrum, que significa imagen,
y de la palabra griega phos o
photos, que significa luz. El
principio de su funcionamiento
es usar la luz de una lámpara de
características especiales la cual
es guiada a través de un
dispositivo que selecciona y
separa luz de una determinada
longitud de onda y la hace pasar
por una muestra.
Espectro de absorción
Es espectro de absorción
es el rango de energía
lumínica en el que los
pigmentos vegetales logran
un punto máximo para
funcionar el cual se
representa en graficas
comparativas con el
espectro de luz o su rango
de actividad.
Park s. Novel. physicochemical and enviromental plant physilogy, fourth
edition. Capitulo 4
Metodología
Extracción y
separación de
pigmentos.
Se tritura la espinaca por 10
seg En un mortero para
pasar a un tubo se ensayo
50ml con tapón
.
• Se tritura para romper la pared
celular de las hojas y poder
separar los pigmentos del resto
de sus componentes .
Añadir 4 ml de
acetona al tubo de
ensayo.
• Para disolver ya que los
pigmentos son insolubles en
agua y sus polaridad es a fin
con los disolventes .
dejar en reposo por
10 min y agregar
4ml de agua
destilada
se agregara 3 ml de
éter de petróleo y se
agitara por 5 segundos.
• El éter de petróleo funciona como
separador de los pigmentos
Se dejara reposar hasta que
los solventes se separen y los
pigmentos hayan sido
extraídos en la capa superior
Con una pipeta Pasteur
se sacara la solución
superior verde oscuro
evitando mezclar las
dos capas. Esta será la
muestra utilizada para
correr la cromatografía.
Se tomara una tira de
papel de cromatografía
mida 2 centímetros desde
la parte inferior y se
marcara un pequeño punto
con lápiz
• No usar
lapicero ya que
este afecta el
recorrido de la
cromatografía.
Con un tubo capilar se coloca el
extracto sobre el punto marcado
anteriormente sobre el papel de
cromatografía.
Se debe realizar el
montaje de la
cromatografía montando
el papel cromatografico
en un tubo de ensayo
tapado y el disolvente.
•El disolvente hará que los pigmentos
corran a través del papel debido a su
polaridad
•Para que el montaje sea correcto el papel
no debe tocar los bordes del tubo
finalmente Se dejara correr la
cromatografía en la oscuridad o con luz
difusa
• Cuando el papel
tome los colores
respectivos de
los pigmentos
se debe medir y
dejar secar la
cromatografía
para trabajar los
valores de Rf
Determinación del
espectro de absorción
de los pigmentos
fotosintéticos
Se recortara las cuatro
bandas principales de
pigmentos de su
cromatografía
• La banda gris oscura aparecerá
entre carotenos y xantofilas
deberá ser desechada
Se colocara en tubos de
ensayo independientes, los
trozos de las bandas de
clorofila a y b y xantofilas en 2
ml acetona y los carotenoides
en 2 ml de éter de petróleo.
Se deberá cubrir cada
tubo de ensayo con papel
de aluminio y se deberá
guardar en hielo hasta
que se ejecute el
espectro de absorción.
Se deberá ejecutar un
espectro de absorción de
cada solución de pigmento
usando un
espectrofotómetro.
luego se deberá iniciar las
lecturas a 400 nm y se
deberá leer la absorbancia
cada 20 nm de intervalo hasta
700 nm
Para clorofilas a y b se
deberá reducir el
intervalo a 10 nm entre
640 y 670.
Se deberá recalibrar el
instrumento con cada
longitud de onda usando
acetona o éter de
petróleo como blanco de
acuerdo al caso.
Los resultados deben ser
registrados en una tabla, para
comparar los espectros de
absorción de los principales
pigmentos se debe realizar
graficas comparativas de su
rango de absorción.
Las graficas se realizan
con el fin de comparar y
observar los picos de
absorción de laboratorio
con las graficas de
teoría.
Bibliografía.
 Park s. Novel (2009).physicochemical
and environmental plant physiology,
fourth edition . Los Angeles, California.
Estados unidos. Academic press.
 Martínez F. G. ( 1995 )elementos de
fisiología vegetal . Edición Mundi- prensa
.
Laboratorio pigmentos

Laboratorio pigmentos

  • 1.
    SEPARACION Y ESPECTRODE ABSORCION DE PIGMENTOS VEGETALES
  • 2.
    Que son lospigmentos vegetales? En general, el color que presenta un determinado tejido u órgano vegetal, depende del predominio de un pigmento o de la combinación de varios de ellos, los “pigmentos” Son Moléculas capaces de absorber y reflejar la luz, estos les dan el color característico a las plantas.
  • 3.
    Clorofila Las mas comunes Clorofila a: que tiene un núcleo de magnesio y un radical del grupo metilo en el anillo a. Clorofila b: tiene un núcleo de magnesio y un radical del grupo formilo(aldehido) en el anillo b. Park s. Novel. physicochemical and enviromental plant physilogy, fourth edition . Capitulo 5
  • 4.
    Carotenos  Absorben lamayoría de luz azul y verde en el espectro.  Están constituidos por 40 átomos de C.  A la cadena principal se ligan 8 unidades de isopreno que se ligan 4 a 4 con dobles enlaces. Park s. Novel. physicochemical and enviromental plant physilogy, fourth edition. Capitulo 5
  • 5.
    Xantofilas La xantofila oxantófila es una sustancia química que realiza acción fotosintética y que pertenece al grupo de los carotenoides. Se puede encontrar en la hojas de las plantas, pero también en semillas como la del maíz presenta una coloración que varia del amarillo, naranja al rojo pardo.
  • 6.
    Cromatografía La cromatografía esuna técnica de separación física de mezclas, la cual mediante el uso las diferentes fuerzas de adsorción que presentan en los compuestos y la velocidad con la que son arrastrados los compuestos sobre un soporte revela la identidad de los componentes de una mezcla. La cromatografía usa el principio de una fase móvil y una fase estacionaria.
  • 7.
    Espectrofotómetro La palabra espectrofotómetrose deriva de la palabra latina spectrum, que significa imagen, y de la palabra griega phos o photos, que significa luz. El principio de su funcionamiento es usar la luz de una lámpara de características especiales la cual es guiada a través de un dispositivo que selecciona y separa luz de una determinada longitud de onda y la hace pasar por una muestra.
  • 8.
    Espectro de absorción Esespectro de absorción es el rango de energía lumínica en el que los pigmentos vegetales logran un punto máximo para funcionar el cual se representa en graficas comparativas con el espectro de luz o su rango de actividad. Park s. Novel. physicochemical and enviromental plant physilogy, fourth edition. Capitulo 4
  • 9.
    Metodología Extracción y separación de pigmentos. Setritura la espinaca por 10 seg En un mortero para pasar a un tubo se ensayo 50ml con tapón . • Se tritura para romper la pared celular de las hojas y poder separar los pigmentos del resto de sus componentes . Añadir 4 ml de acetona al tubo de ensayo. • Para disolver ya que los pigmentos son insolubles en agua y sus polaridad es a fin con los disolventes . dejar en reposo por 10 min y agregar 4ml de agua destilada
  • 10.
    se agregara 3ml de éter de petróleo y se agitara por 5 segundos. • El éter de petróleo funciona como separador de los pigmentos Se dejara reposar hasta que los solventes se separen y los pigmentos hayan sido extraídos en la capa superior Con una pipeta Pasteur se sacara la solución superior verde oscuro evitando mezclar las dos capas. Esta será la muestra utilizada para correr la cromatografía. Se tomara una tira de papel de cromatografía mida 2 centímetros desde la parte inferior y se marcara un pequeño punto con lápiz • No usar lapicero ya que este afecta el recorrido de la cromatografía.
  • 11.
    Con un tubocapilar se coloca el extracto sobre el punto marcado anteriormente sobre el papel de cromatografía. Se debe realizar el montaje de la cromatografía montando el papel cromatografico en un tubo de ensayo tapado y el disolvente. •El disolvente hará que los pigmentos corran a través del papel debido a su polaridad •Para que el montaje sea correcto el papel no debe tocar los bordes del tubo finalmente Se dejara correr la cromatografía en la oscuridad o con luz difusa • Cuando el papel tome los colores respectivos de los pigmentos se debe medir y dejar secar la cromatografía para trabajar los valores de Rf
  • 12.
    Determinación del espectro deabsorción de los pigmentos fotosintéticos Se recortara las cuatro bandas principales de pigmentos de su cromatografía • La banda gris oscura aparecerá entre carotenos y xantofilas deberá ser desechada Se colocara en tubos de ensayo independientes, los trozos de las bandas de clorofila a y b y xantofilas en 2 ml acetona y los carotenoides en 2 ml de éter de petróleo.
  • 13.
    Se deberá cubrircada tubo de ensayo con papel de aluminio y se deberá guardar en hielo hasta que se ejecute el espectro de absorción. Se deberá ejecutar un espectro de absorción de cada solución de pigmento usando un espectrofotómetro. luego se deberá iniciar las lecturas a 400 nm y se deberá leer la absorbancia cada 20 nm de intervalo hasta 700 nm Para clorofilas a y b se deberá reducir el intervalo a 10 nm entre 640 y 670.
  • 14.
    Se deberá recalibrarel instrumento con cada longitud de onda usando acetona o éter de petróleo como blanco de acuerdo al caso. Los resultados deben ser registrados en una tabla, para comparar los espectros de absorción de los principales pigmentos se debe realizar graficas comparativas de su rango de absorción. Las graficas se realizan con el fin de comparar y observar los picos de absorción de laboratorio con las graficas de teoría.
  • 15.
    Bibliografía.  Park s.Novel (2009).physicochemical and environmental plant physiology, fourth edition . Los Angeles, California. Estados unidos. Academic press.  Martínez F. G. ( 1995 )elementos de fisiología vegetal . Edición Mundi- prensa .