Presentación sobre anisakis desde el punto de vista parasitológico

1. Anisakiasis

2. Introducción
La anisakiasis es una zoonosis causada por larvas de la familia Anisakidae, en especial de los géneros
Anisakis y Pseudoterranova. Se adquiere mediante el consumo de crustáceos o carne de pescado crudo,
ahumada o sometida a cocción insuficiente y afecta esencialmente el tracto digestivo. Los parásitos
adultos se desarrollan adultos se desarrollan en mamíferos marinos que diseminan la infección.
Reino: Animalia
Phylum: Nematoda
Clase: Secernentea
Familia: Anisakidae
Generos: Anisakis, Pseudoterranova, Contracaeucum, Hysterothylacium

3. Pseudoterranova
decipiens
PREVALENCIA
Anisakis
simplex
Pseudoterranova
decipiens
Otros.
Anisakis
simplex
Distribución geográfica

4. Pseudoterranova decipiens en Merluza Anisakis simplex en carne de salmón

5. Anisakis simplex sensu stricto
Anisakis simplex C
Anisakis rypica
Anisakis pregreffi
Anisakis insignis
Anisakis paggiae
Anisakis spp.
Anisakis physeris
Anisakis brevispculata
Anisakis ziphidarum
P. decipiens, s.s.
P. karvie
P. bulbosa
P. azarasi
P. decipiens E
P. cattani
P. ceticola
P. kogiae
Especies
Género Anisakis Género Pseudoterranova

6. Ciclo biológico

7. 3
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Forma Extra gastrointestinal o
ectopica
03 ● Afecta a órganos externos al TGI, como:
ovarios, higado, amigdalas, cavidad bucal, etc.
Forma Intestinal
02
● Intestinal Aguda
● Intestinal Cronica (Fase Flegmon, Absceso,
Absceso-granuloma, Granuloma)
Forma Gastrica
01
● Gastrica Aguda
● Gastrica Cronica (Fase Flegmon, Absceso,
Absceso-granuloma, Granuloma)
Forma Alergica
04 ● Hipersensibilidad tipo I mediada por IgE.
Cuadro clínico

8. L3 - L4
● Aspecto filiforme
● 20 a 30mm longitud
● Ventrículo
● Aspecto blanquecino
Morfología de Anisakis spp. o Anisakis simplex
A: Diente de penetración oral** y poro
excretor.
B: Mucrón o espina
C: Labios periorales.
D: Falta de mucrón

9. Extremos anteriores de L4 Extremo posterior
Morfología de Pseudoterranova spp. o Pseudoterranova
decipiens
● Aspecto filiforme
● 25 a 44 mm longitud
● Coloración marrón rojiza
● Ciego intestinal en la región
ventricular.
● Cambios morfológicos de estadio
similares a A. simplex.

10. A: Anisakis spp
B: Pseudoterranova spp
C: Contracaecum spp

11. ● Endoscopía
● Biopsia
● PCR
● Secuenciación
● Aglutinación en látex
● ELISA
● Inmunofluorescencia
Morfológico / Histológico a
través de microscopía
Molecular Inmunodiagnóstico
Diagnóstico
Anamnesis: ingesta de
pescado crudo.

12. Larvas obtenidas a través de:
● Boca (tos)
● Ano**
● Endoscopía gástrica o
intestinal.
Diagnóstico por
microscopía
La observación e
identificación de las larvas
que producen anisakiasis es
suficiente para confirmar el
diagnóstico.
¿Qué hallazgos debemos
buscar en las larvas?
Para la observación de la estructura interna de los nemátodos se
pueden transparentar usando lactofenol de Amman.

13. Se utilizan cortes
histológicos obtenidos por
biopsia, mediante el examen
de endoscopia o por cirugía
en caso de ser necesaria.
Es más común en casos
gástricos crónicos o en
formas extraintestinales.
Diagnóstico por
microscopía
Las muestras se tiñen con
hematoxilina-eosina.
¿Qué hallazgos podemos
encontrar?

14. Diagnóstico por
microscopía
Anisakis spp. en biopsia gástrica (H&E)
100x y 400x

15. Diagnóstico
molecular
● PCR anidada
Protocolo con uso de primers NC5 y NC2, el cual permite la
identificación de hasta 11 especies de anisákidos.
Posteriormente se utilizan primers para amplificar la región
ITS1-28S (primers AniT1F1 y AniT1R1)
[ITS=espaciador transcrito interno, ADNr)
Finalmente se compara la secuencia obtenida para
determinar la especie.
Gracias a esto el PCR permite confirmar género y especie.
● Secuencianción
● Ani s 10 (alergeno recombinante).

16. Titulación de anticuerpos anti-anisakidos.
Inmunofluorescencia indirecta.
Técnicas inmunoenzimáticas (ELISA)
Inmunodiagnóstico
Aglutinación de partículas de látex.
Relacionados a la fuerte respuesta
humoral.
Baja especificidad

17. ELISA-UA3
Detección de IgE anti-anisakis
Anticuerpos monoclonales

18. Tratamiento
Antihelmínticos como pamoato de
pirantel, tiabendazol, mebendazol o
ivermectina en caso de ser
necesario. No existe evidencia de
que alguno de estos sea
completamente efectivo.
Antihistaminicos, corticoides,
epinefrina para los cuadros
alérgicos.
01
02
Extracción de la larva por medio de
endoscopia o cirugía en caso de ser
necesaria.

19. Edad: 22 - 59 años
Dos casos femeninos
y uno masculino
Infección por
Pseudoterranova
cattani
Localización:
Santiago, Chile.
2008 2014
Human Infections with Pseudoterranova
cattani Nematodes, Chile

20. Desarrollo clínico.
Mecanismo de
infección
Consumo de ceviche
Síntomas
Sensación de
hormigueo y tos
Los tres pacientes
regurgitaron los
parásitos
Características
Larvas expulsadas de 20 mm de largo,
color blanco rojizo, con presencia de tres
labios anteriores y un cecum dirigido
anteriormente.
Método diagnóstico
Observación
microscópica y PCR
Huéspedes paraténicos
Gayi merluccius,
Genypterus maculatus y
Cilus gilberti.

21. Edad: 52 años
Un caso femenino
Infección por
Anisakiasis simplex
Localización:
Colombia.
2008 2014
Gastro-allergic anisakiasis: The first case
reported in Colombia and a literature review

22. Desarrollo clínico.
Mecanismo de
infección
Consumo de pescado crudo,
como una tradición familiar
Síntomas
Dolor epigástrico agudo,
nauseas, vomitos, diarreas y
urticaria
Se realizó una
endoscopia alta de
exploración en donde se
detectó un verme móvil
Características
Larva extraída de 35 mm de largo y 0,6 mm de
ancho, color blanco, con presencia de tres labios
bilobulados en la región cefálica, diente perforador
ventral, glándulas excretoras anteriores, estómago
largo, sin ciego y cola en punta de roma
Método diagnóstico
Observación
microscópica.
Tratamiento
Extracción de larva y
administración de una
dosis de 400 mg de
Albendazol

23. Edad: 28 años
Un caso masculino
Infección por
Pseudoterranova
decipiens
Localización: Japon.
2008 2014
A case of hepatic anisakisasis caused by
Pseudoterranova decipiens mimicking
metastatic liver cancer.

24. Desarrollo clínico.
Antecedentes
Paciente recibió una
orquiectomia derecha
debido a un cáncer
Hallazgos clínicos
Presencia de tumor hipovascular
en forma de mancuerna de un
tamaño de 20 mm en el segmento
7 del hígado
Hepatectomía parcial
laparoscópica del
segmento 7
Examen microscopico
Mostró granuloma epitelioide con necrosis central
e infiltración de células inflamatorias como
monocitos y eosinófilos infiltrados alrededor del
granuloma, se encontró material exógeno.
Método diagnóstico
Observación
microscópica detallada
y PCR
8 casos documentados
de anisakiasis hepática
al momento de realizar
este paper.

25. -Esta parasitosis al no presentar síntomas
específicos se puede confundir con otras
afecciones al ser humano, la clave se encuentra en
la búsqueda del clínico para saber si se ha
consumido pescado crudo durante el último
tiempo.
-Lo más importante es que se puede evitar
siguiendo algunas indicaciones, como asegurando
la congelación a -2°C de los pescados durante
mínimo de 24 horas o su cocción a 60°C durante
10 minutos.
Conclusión

26. Bibliografía
● CDC - DPDx - Anisakiasis. (2019). Centers for Disease Control and Prevention. Recuperado 06 octubre 2020 de
https://www.cdc.gov/dpdx/anisakiasis/index.html
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Jun 15;39(2):241-246. English, Spanish. doi: 10.7705/biomedica.v39i2.3936. PMID: 31529811.
● Weitzel, T., Sugiyama, H., Yamasaki, H., Ramirez, C., Rosas, R. y Mercado, R. (2015). Infecciones humanas por nematodos
Pseudoterranova cattani, Chile. Enfermedades infecciosas emergentes , 21 (10), 1874-1875.
https://dx.doi.org/10.3201/eid2110.141848.
● Murata, Y., Ando, K., Usui, M., Sugiyama, H., Hayashi, A., Tanemura, A., Kato, H., Kuriyama, N., Kishiwada, M., Mizuno, S., Sakurai, H.,
& Isaji, S. (2018). A case of hepatic anisakiasis caused by Pseudoterranova decipiens mimicking metastatic liver cancer. BMC
infectious diseases, 18(1), 619. https://doi.org/10.1186/s12879-018-3540-8

27. Bibliografía
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Recuperado 8 de octubre de 2020, de http://www.aefa.es/wp-content/uploads/2014/04/Anisaquiosis.-
epidemiolog%C3%ADa-profilaxis-diagn%C3%B3stico-y-tratamiento.pdf
● Caballero, M. L. (2011, febrero). Ani s 10, a new Anisakis simplex allergen: Cloning and heterologous expression. (N.o
434).
● Castellanos-Garzón, Jenniffer Alejandra, Falla-Zúñiga, Luis Felipe, Salazar, Liliana, & Pustovrh-Ramos, María Carolina.
(2020). Anisákidos y anisakidosis: generalidades y su actualidad en Colombia. Revisión bibliográfica. Iatreia, 33(2),
143-154. https://dx.doi.org/10.17533/udea.iatreia.47
● Díaz Caneiro, C, (2019). Parásitos en mamíferos marinos varados en el litoral gallego (Tesis de pregrado),
Universidad de Santiago de Compostela.