Viabilidad y Conteo celular



             Técnicas de Cultivo
             Celular
Viabilidad

   Mide la proporción de células vivas luego de
    procedimiento
   Pruebas para determinar rompimiento de la
    integridad de la membrana
   Mide la entrada de tinte que normalmente es
    impermeable
   Trypan Blue, Erythrosin
Tintes viabilidad

   Células vivas son impermeables a Trypan
    Blue y Naphthalene Black

   Células muertas permiten la entrada del tinte
    y microscopicamente se observan teñidas
Ensayos de viabilidad

   Exclusión de tinte sobreestima viabilidad
   Usos:
         congelación,
         tripsinización,
          subcultivos
Conteo de células viables

   Hemocitómetro
   Trypan Blue
   Proporción - suspensión: tinte 1:1
   50 uL suspensión de células:50 uL tinte
   20 uL en cada lado de la cámara
   Microscopio de luz objetivo 10X
   Cuente en 5 cuadrantes vivas y muertas
Cuadrantes para conteo



           1         2

                5
           3         4
Calcule el porciento de células viables
en cada cámara

1.   El porciento de células viables es igual al
     número de células no teñidas divididas por
     el total de células contadas multiplicadas
     por 100. Saque el promedio de ambas
     cámaras. Solo debe utilizar células si el %
     de viabilidad es mayor de 90%.
Conteo celular
Conteo Celular

   Cuantificación celular es necesario para:
    *caracterización de líneas celulares
    *establecer condiciones reproducibles de
     cultivo
    *consistencia de cultivos primarios
   Conteo
    *hemocitómetro
    *conteo electrónico
Hemocitómetro

                                                 Áreas de conteo




      Este sistema tiene 2 áreas de conteo
      separadas, cada una debe contener de 0.1
      mm3 de muestra cuando se cubre con un
      cubre objetos especial
Cubre objetos especial


   Un cubreobjetos
    especial, grueso se
    monta sobre dos barras
                              Bar
    de cristal y esto forma
    las dos cámaras.



                              Bar
Cuadrículas de conteo
     Líneas finas en le piso de
     la cámara ayudan con el
     conteo celular.

El # células por ml =
Promedio del # de
células de los cuadros de
las esquinas x 104.
1, 3, 7, 9
La transferencia de la suspensión
  celular se hace por capilaridad
Llene la cámara con la
suspensión celular utilizando
una pipeta con punta fina
aplicándola sobre el área
escavada de la cámara



Deje la suspensión entrar por
capilaridad
No ejercer presión durante el
llenado con presión
Conteo celular

   El # células por ml =
    Promedio del # de células de los cuadros de las
    esquinas x 104.

   Si el conteo es muy alto se debe diluir la
    suspensión para evitar errores de muestreo
Dilución de células para el contaje


   Añada 40 ul de la suspensión de células en
    un tubo Eppendorf. Diluya con 360 ul de
    medio. Esto corresponde a una dilución
    1/10.
     1 mL = 1000 ul 100uL es 1/10 de 1000.
    Factor de dilución 101
Uso del hemocitómetro

  Cuente las células en los cuatro cuadrantes
  de las esquinas.
 Cada cuadrante es 1 x 1mm (1mm2) .La
  profundidad de la cámara es 0.1mm. Si
  contamos en un área de 1mm con
  profundidad de 0.1mm el volumen es de 0.1
  mm3 ó 104
1   2

3   4
Cálculos para determinar la
concentración de células

   El conteo total lo divide entre el número de áreas
    contadas (número de células/ 4)

    Número de células X factor de dilución X
    volumen = células/mL

Número de células X factor de dilución X 1000 =
 células/ mL

Número de células X 101 X 104 = células /mL
Determinación de concentración
celular

   Concentración deseada para el cultivo
     1.5 X10 6 células /mL
    volumen final 5 mL /frasco de cultivo
   1.5mL X106 X 5 mL=cantidad de
    células/frasco
   1mL_____ células X 5 mL X número de
    frascos = total de mL de células
Cálculo de concentración celular
para cultivar

   1mL/______células = ________/1.5 X 106
Concentración para cultivar en
laminillas

   http://www.youtube.com/watch?feature=play
    er_detailpage&v=TmPOmi2NHb0
Determinación concentración celular

   1.5 X 104 X 10=1.5 X 105 Cantidad de
    células /laminilla
   1mL/____________células            =
    ______________/1.5 X 105
   Una vez calcule el volumen de células que
    se requiere se completa hasta un volumen
    final de 4 mL.
Determinación de concentración
celular

   Cada laminilla tiene 8 pozos y se necesitan
    1.5 x 104 células por pozo. Se añaden 2
    pozos para no preparar con exactitud. Tener
    un poco adicional a lo que se necesita (2
    pozos extras). Para 10 pozos necesito un
    volumen de 400uL X 10 pozos = 4000uL= 4
    mL totales. Al volumen total (4 mL) se le
    resta el volumen de células que se calcule
    luego del contaje
Viabilidad y conteo celular
Viabilidad y conteo celular

Viabilidad y conteo celular

  • 1.
    Viabilidad y Conteocelular Técnicas de Cultivo Celular
  • 2.
    Viabilidad  Mide la proporción de células vivas luego de procedimiento  Pruebas para determinar rompimiento de la integridad de la membrana  Mide la entrada de tinte que normalmente es impermeable  Trypan Blue, Erythrosin
  • 3.
    Tintes viabilidad  Células vivas son impermeables a Trypan Blue y Naphthalene Black  Células muertas permiten la entrada del tinte y microscopicamente se observan teñidas
  • 4.
    Ensayos de viabilidad  Exclusión de tinte sobreestima viabilidad  Usos:  congelación,  tripsinización,  subcultivos
  • 5.
    Conteo de célulasviables  Hemocitómetro  Trypan Blue  Proporción - suspensión: tinte 1:1  50 uL suspensión de células:50 uL tinte  20 uL en cada lado de la cámara  Microscopio de luz objetivo 10X  Cuente en 5 cuadrantes vivas y muertas
  • 6.
  • 7.
    Calcule el porcientode células viables en cada cámara 1. El porciento de células viables es igual al número de células no teñidas divididas por el total de células contadas multiplicadas por 100. Saque el promedio de ambas cámaras. Solo debe utilizar células si el % de viabilidad es mayor de 90%.
  • 8.
  • 9.
    Conteo Celular  Cuantificación celular es necesario para: *caracterización de líneas celulares *establecer condiciones reproducibles de cultivo *consistencia de cultivos primarios  Conteo *hemocitómetro *conteo electrónico
  • 10.
    Hemocitómetro Áreas de conteo Este sistema tiene 2 áreas de conteo separadas, cada una debe contener de 0.1 mm3 de muestra cuando se cubre con un cubre objetos especial
  • 11.
    Cubre objetos especial  Un cubreobjetos especial, grueso se monta sobre dos barras Bar de cristal y esto forma las dos cámaras. Bar
  • 12.
    Cuadrículas de conteo Líneas finas en le piso de la cámara ayudan con el conteo celular. El # células por ml = Promedio del # de células de los cuadros de las esquinas x 104. 1, 3, 7, 9
  • 13.
    La transferencia dela suspensión celular se hace por capilaridad Llene la cámara con la suspensión celular utilizando una pipeta con punta fina aplicándola sobre el área escavada de la cámara Deje la suspensión entrar por capilaridad No ejercer presión durante el llenado con presión
  • 14.
    Conteo celular  El # células por ml = Promedio del # de células de los cuadros de las esquinas x 104.  Si el conteo es muy alto se debe diluir la suspensión para evitar errores de muestreo
  • 15.
    Dilución de célulaspara el contaje  Añada 40 ul de la suspensión de células en un tubo Eppendorf. Diluya con 360 ul de medio. Esto corresponde a una dilución 1/10.  1 mL = 1000 ul 100uL es 1/10 de 1000. Factor de dilución 101
  • 16.
    Uso del hemocitómetro Cuente las células en los cuatro cuadrantes de las esquinas.  Cada cuadrante es 1 x 1mm (1mm2) .La profundidad de la cámara es 0.1mm. Si contamos en un área de 1mm con profundidad de 0.1mm el volumen es de 0.1 mm3 ó 104
  • 17.
    1 2 3 4
  • 18.
    Cálculos para determinarla concentración de células  El conteo total lo divide entre el número de áreas contadas (número de células/ 4) Número de células X factor de dilución X volumen = células/mL Número de células X factor de dilución X 1000 = células/ mL Número de células X 101 X 104 = células /mL
  • 19.
    Determinación de concentración celular  Concentración deseada para el cultivo 1.5 X10 6 células /mL  volumen final 5 mL /frasco de cultivo  1.5mL X106 X 5 mL=cantidad de células/frasco  1mL_____ células X 5 mL X número de frascos = total de mL de células
  • 20.
    Cálculo de concentracióncelular para cultivar  1mL/______células = ________/1.5 X 106
  • 21.
    Concentración para cultivaren laminillas  http://www.youtube.com/watch?feature=play er_detailpage&v=TmPOmi2NHb0
  • 22.
    Determinación concentración celular  1.5 X 104 X 10=1.5 X 105 Cantidad de células /laminilla  1mL/____________células = ______________/1.5 X 105  Una vez calcule el volumen de células que se requiere se completa hasta un volumen final de 4 mL.
  • 23.
    Determinación de concentración celular  Cada laminilla tiene 8 pozos y se necesitan 1.5 x 104 células por pozo. Se añaden 2 pozos para no preparar con exactitud. Tener un poco adicional a lo que se necesita (2 pozos extras). Para 10 pozos necesito un volumen de 400uL X 10 pozos = 4000uL= 4 mL totales. Al volumen total (4 mL) se le resta el volumen de células que se calcule luego del contaje