El documento describe un método para determinar manualmente la hemoglobina en sangre. El método implica la oxidación de la hemoglobina a cianmetahemoglobina usando ferricianuro de potasio, lo que produce un compuesto estable de color rojo que puede medirse fotométricamente. El procedimiento incluye la preparación de la muestra y el reactivo, la mezcla y reposo de la muestra en el reactivo, y la medición espectrofotométrica a 540 nm para cuantificar la hemoglobina en la muestra.
Parte 3.2 del Módulo VI del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Mblgo. José Chafloque Chafloque
Fecha: 25 de Octubre de 2015. Trujillo - Perú.
Parte 02 del Módulo V del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Dr. Pedro Mercado Martinez
Fecha: 27 de Setiembre de 2015. Trujillo - Perú.
Quiero compartir la información que recopilé, ya que estuve dudando por la variación de las fuentes y afirmaciones. Después de haber verificado que esto es correcto, decidí subirlo para facilitarle la vida a alguien. ¡Espero sirva de ayuda!
Parte 3.2 del Módulo VI del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Mblgo. José Chafloque Chafloque
Fecha: 25 de Octubre de 2015. Trujillo - Perú.
Parte 02 del Módulo V del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Dr. Pedro Mercado Martinez
Fecha: 27 de Setiembre de 2015. Trujillo - Perú.
Quiero compartir la información que recopilé, ya que estuve dudando por la variación de las fuentes y afirmaciones. Después de haber verificado que esto es correcto, decidí subirlo para facilitarle la vida a alguien. ¡Espero sirva de ayuda!
INTRODUCCIÓN
Para el estudio satisfactorio del frotis sanguíneos, es necesario colorearlos. En la mayoría de los laboratorios los colorantes más empleados para la tinción hematológica se basan en el de Romanowsky constituido fundamentalmente con la mezcla de eosina (ácido) y azul de metileno (básico). Además se han incorporado el empleo de derivados por oxidación del azul de metileno que se conoce con el nombre de azures (A, B, C). Son los azures los responsables de la coloración púrpura o roja de ciertas estructuras.
Tanto la eosina como el azul de metileno son muy sensibles a las variaciones de pH de las diferentes estructuras celulares, de forma que las que tienen carácter básico fijan la eosina mientras que las que poseen propiedades ácidas fijan principalmente el azul de metileno. Esto explica que las estructuras basófilas se tiñan de color azul mientras que los competente acidófilas adquieren un color rosado. La diferente afinidad de ciertas granulaciones citoplasmáticas por dichos colorantes permite clasificar a los leucocitos polimorfonucleares.
TINCIÓN DE WRIGHT
Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.
La tinción de Wright.
Es de gran trascendencia clínica ya que gracias a ella es capaz de identificarse diversas estructuras en una célula así como la morfología y en su caso patología celular no solo de las células del sistema inmunológico sino de todas aquellas que componen la sangre ya sea en un paciente sano o con un estado patológico.
MATERIALES
Colorante Wright
Laminas porta objeto
Laminas cubre objetos
Aceite de inmersión
Agua destilada
Gotero
Rejilla
Materiales extracción de muestra:
• Guantes
• Algodón
• Ligadura
• Jeringa
• Tubo lila con EDTA
• Plumón
• Alcohol
• Capilar
EQUIPO
o Microscopio óptico con luz incorporada.
MUESTRA
Sangre periférica
EXTRACCIÓN DE LA MUESTRA SANGUÍNEA.
• Cuando el paciente esté cómodo echamos un vistazo a sus brazos para decidir un sitio para la punción. El brazo debe ser extendido y lo relajado posible.
• Palpamos la vena para averiguar sus características (tamaño, elasticidad o rigidez, determinar si de desplaza o no) y su curso.
• Limpiamos con alcohol la zona elegida para la punción.
• Colocamos el torniquete, este puede ayudarnos para decidir dónde pincha, pedir al paciente de cerrar el puño para aumentar el volumen de sangre intravenosa (Un tiempo de compresión demasiado largo causa la acumulación de sangre y ciertas sustancias en la vena que pueden alterar el resultado de
La biometría hemática completa, también llamada hemograma o conteo sanguíneo completo, consta de tres partes; la serie roja, serie blanca y serie plaquetaria.
Dentro de la serie blanca, podemos encontrar el conteo total y el diferencial. Aquí encuentran los detalles sobre la diferenciación de leucocitos.
Olvidé poner bibliografías, pero quiero hacer notar que esto no es de mi autoría, sino que recopilé la información de varios sitios en internet y hasta consulté un par de libros.
INTRODUCCIÓN
La velocidad de sedimentación globular (VSG) es una propiedad física de la sangre. Si se dispone de un tubo de sangre con anticoagulante y se deja en reposo se observa que después de un cierto tiempo las células se sedimentan formando 2 fases bien de limitadas que corresponden al plasma y a las células constituidas prácticamente en su totalidad por hematíes. La VSG es equivalente a la longitud del recorrido descendente de la parte superior de la columna de hematíes en un intervalo determinado de tiempo y varios factores contribuyen a este valor.
FUNDAMENTO
El test de velocidad de sedimentación globular (VSG) mide la sedimentación de eritrocitos en su plasma nativo.
VSG es un test no específico que puede ser utilizado para detectar un amplio rango de enfermedades y para monitorear el curso evolutivo de ciertas enfermedades crónicas como los procesos inflamatorios crónicos (artritis reumatoidea, polimialgia reumática y tuberculosis) o la respuesta a la terapia, por ejemplo con citostáticos (enfermedad de Hodgkin, linfomas y mieloma múltiple). Sin embargo en ocasiones cuadros tan graves como neoplasias y la cirrosis pueden presentar una VSG normal. Constituye uno de los tests más utilizados como screening en el laboratorio clínico. Se trata de un método sencillo para realizar y que requiere equipamiento simple.
OBJETIVO
o Que el estudiante realice el procedimiento de cómo se procesa la velocidad de sedimento globular.
o Que el estudiante conozca e investigue por que se realiza este tipo de prueba en el laboratorio clínico.
o Que el estudiante aprenda a realizar la lectura del VSG.
MATERIALES UTILIZADOS EN LA PRÁCTICA
Sangre total (extracción venosa)
Solución anticoagulante
Pipeta de eritrosedimentación (pipeta de Westergreen)
Soporte que inmovilice la pipeta en posición vertical.
Cronómetro
Aguja
Ligadura
Alcohol
Algodón
INDUMENTARIA
Mandilón
Guantes
INSTRUCTIVO PARA LA OBTENCIÓN DE SANGRE PERIFÉRICA POR PUNCIÓN VENOSA
1. Durante la toma de muestra deben guardarse las más estrictas normas de higiene.
2. El material descartable a usar se abrirá sólo al momento de su utilización y, una vez manipulado, no podrá guardarse nuevamente aun cuando se lo considere nuevo.
3. Una vez realizada la toma de muestra, descartar inmediatamente los materiales usados en recipientes para ese fin.
4. Al momento de hacer la extracción colocarse los guantes desechables, los cuales se mantendrán puestos durante todo el procedimiento.
5. Antes de iniciar la toma de muestra, tener TODO el material preparado.
6. Elegir una vena bien visible en el antebrazo, localizándola visualmente y por palpación.
Colocar el lazo y volver a palpar la vena, indicarle al paciente que abra y cierre el puño para facilitar la extracción.
7. Una vez identificada la vena, limpiar el área circundante con algodón empapado en alcohol. Dejar secar.
Parte 5 del Módulo VI del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Mblgo. José Chafloque Chafloque
Fecha: 25 de Octubre de 2015. Trujillo - Perú.
I. OBJETIVOS:
Adiestrar al alumno en la preparación de muestras parasitologías.
Diferenciar y observar las muestras parasitologías en heces.
Identificar los distintos elementos normales en las heces por medio de la observación microscópica con la finalidad de diferenciarlos posteriormente de las formas parásitas que puede encontrarse en un diagnóstico.
INTRODUCCIÓN
Para el estudio satisfactorio del frotis sanguíneos, es necesario colorearlos. En la mayoría de los laboratorios los colorantes más empleados para la tinción hematológica se basan en el de Romanowsky constituido fundamentalmente con la mezcla de eosina (ácido) y azul de metileno (básico). Además se han incorporado el empleo de derivados por oxidación del azul de metileno que se conoce con el nombre de azures (A, B, C). Son los azures los responsables de la coloración púrpura o roja de ciertas estructuras.
Tanto la eosina como el azul de metileno son muy sensibles a las variaciones de pH de las diferentes estructuras celulares, de forma que las que tienen carácter básico fijan la eosina mientras que las que poseen propiedades ácidas fijan principalmente el azul de metileno. Esto explica que las estructuras basófilas se tiñan de color azul mientras que los competente acidófilas adquieren un color rosado. La diferente afinidad de ciertas granulaciones citoplasmáticas por dichos colorantes permite clasificar a los leucocitos polimorfonucleares.
TINCIÓN DE WRIGHT
Esta coloración es conocida como policromática debido a que produce varios colores. Es una solución de alcohol metílico de un colorante ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno). El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al portaobjetos. El amortiguador, que consiste en una solución tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la mejor absorción por los diferentes componentes celulares.
La tinción de Wright.
Es de gran trascendencia clínica ya que gracias a ella es capaz de identificarse diversas estructuras en una célula así como la morfología y en su caso patología celular no solo de las células del sistema inmunológico sino de todas aquellas que componen la sangre ya sea en un paciente sano o con un estado patológico.
MATERIALES
Colorante Wright
Laminas porta objeto
Laminas cubre objetos
Aceite de inmersión
Agua destilada
Gotero
Rejilla
Materiales extracción de muestra:
• Guantes
• Algodón
• Ligadura
• Jeringa
• Tubo lila con EDTA
• Plumón
• Alcohol
• Capilar
EQUIPO
o Microscopio óptico con luz incorporada.
MUESTRA
Sangre periférica
EXTRACCIÓN DE LA MUESTRA SANGUÍNEA.
• Cuando el paciente esté cómodo echamos un vistazo a sus brazos para decidir un sitio para la punción. El brazo debe ser extendido y lo relajado posible.
• Palpamos la vena para averiguar sus características (tamaño, elasticidad o rigidez, determinar si de desplaza o no) y su curso.
• Limpiamos con alcohol la zona elegida para la punción.
• Colocamos el torniquete, este puede ayudarnos para decidir dónde pincha, pedir al paciente de cerrar el puño para aumentar el volumen de sangre intravenosa (Un tiempo de compresión demasiado largo causa la acumulación de sangre y ciertas sustancias en la vena que pueden alterar el resultado de
La biometría hemática completa, también llamada hemograma o conteo sanguíneo completo, consta de tres partes; la serie roja, serie blanca y serie plaquetaria.
Dentro de la serie blanca, podemos encontrar el conteo total y el diferencial. Aquí encuentran los detalles sobre la diferenciación de leucocitos.
Olvidé poner bibliografías, pero quiero hacer notar que esto no es de mi autoría, sino que recopilé la información de varios sitios en internet y hasta consulté un par de libros.
INTRODUCCIÓN
La velocidad de sedimentación globular (VSG) es una propiedad física de la sangre. Si se dispone de un tubo de sangre con anticoagulante y se deja en reposo se observa que después de un cierto tiempo las células se sedimentan formando 2 fases bien de limitadas que corresponden al plasma y a las células constituidas prácticamente en su totalidad por hematíes. La VSG es equivalente a la longitud del recorrido descendente de la parte superior de la columna de hematíes en un intervalo determinado de tiempo y varios factores contribuyen a este valor.
FUNDAMENTO
El test de velocidad de sedimentación globular (VSG) mide la sedimentación de eritrocitos en su plasma nativo.
VSG es un test no específico que puede ser utilizado para detectar un amplio rango de enfermedades y para monitorear el curso evolutivo de ciertas enfermedades crónicas como los procesos inflamatorios crónicos (artritis reumatoidea, polimialgia reumática y tuberculosis) o la respuesta a la terapia, por ejemplo con citostáticos (enfermedad de Hodgkin, linfomas y mieloma múltiple). Sin embargo en ocasiones cuadros tan graves como neoplasias y la cirrosis pueden presentar una VSG normal. Constituye uno de los tests más utilizados como screening en el laboratorio clínico. Se trata de un método sencillo para realizar y que requiere equipamiento simple.
OBJETIVO
o Que el estudiante realice el procedimiento de cómo se procesa la velocidad de sedimento globular.
o Que el estudiante conozca e investigue por que se realiza este tipo de prueba en el laboratorio clínico.
o Que el estudiante aprenda a realizar la lectura del VSG.
MATERIALES UTILIZADOS EN LA PRÁCTICA
Sangre total (extracción venosa)
Solución anticoagulante
Pipeta de eritrosedimentación (pipeta de Westergreen)
Soporte que inmovilice la pipeta en posición vertical.
Cronómetro
Aguja
Ligadura
Alcohol
Algodón
INDUMENTARIA
Mandilón
Guantes
INSTRUCTIVO PARA LA OBTENCIÓN DE SANGRE PERIFÉRICA POR PUNCIÓN VENOSA
1. Durante la toma de muestra deben guardarse las más estrictas normas de higiene.
2. El material descartable a usar se abrirá sólo al momento de su utilización y, una vez manipulado, no podrá guardarse nuevamente aun cuando se lo considere nuevo.
3. Una vez realizada la toma de muestra, descartar inmediatamente los materiales usados en recipientes para ese fin.
4. Al momento de hacer la extracción colocarse los guantes desechables, los cuales se mantendrán puestos durante todo el procedimiento.
5. Antes de iniciar la toma de muestra, tener TODO el material preparado.
6. Elegir una vena bien visible en el antebrazo, localizándola visualmente y por palpación.
Colocar el lazo y volver a palpar la vena, indicarle al paciente que abra y cierre el puño para facilitar la extracción.
7. Una vez identificada la vena, limpiar el área circundante con algodón empapado en alcohol. Dejar secar.
Parte 5 del Módulo VI del Diplomado en Hematología y Banco de Sangre.
Ponente: Mblgo. José Chafloque Chafloque
Fecha: 25 de Octubre de 2015. Trujillo - Perú.
I. OBJETIVOS:
Adiestrar al alumno en la preparación de muestras parasitologías.
Diferenciar y observar las muestras parasitologías en heces.
Identificar los distintos elementos normales en las heces por medio de la observación microscópica con la finalidad de diferenciarlos posteriormente de las formas parásitas que puede encontrarse en un diagnóstico.
Porfafolio de evidencias Laboratorio de BacteriologiaEmmanuelVaro
Práctica 1 Introducción al trabajo de laboratorio en bacteriología
Práctica 2 Aplicación de los criterios de Cowan y Steel para la
identificación de bacterias
Práctica 3 Caracterización de bacterias no fermentadoras
Práctica 4 Caracterización del género Pseudomonas
Práctica 5 Caracterización de bacterias de los géneros
Haemophilus y Brucella
Práctica 6 Caracterización de bacterias de los géneros
Neisseria y Moraxella
Práctica 7 Caracterización de enterobacterias: lactosas positivas
Práctica 8 Caracterización de enterobacterias: lactosas negativas
Práctica 9 Caracterización del género Vibrio
Práctica 10 Caracterización de bacterias de los géneros
Streptococcus y Enterococcus
Práctica 11 Caracterización de bacterias del género Staphylococcus
Práctica 12 Caracterización de Bacilos Grampositivos: Bacillus
Presentación del Módulo de Laboratorio de Cultivos celulares correspondeinte al Curso de especialización en cultivos celulares.Real Decreto 93/2019, 1 de marzo
Las capacidades sociomotrices son las que hacen posible que el individuo se pueda desenvolver socialmente de acuerdo a la actuación motriz propias de cada edad evolutiva del individuo; Martha Castañer las clasifica en: Interacción y comunicación, introyección, emoción y expresión, creatividad e imaginación.
Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3.pdfsandradianelly
Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestr
ROMPECABEZAS DE ECUACIONES DE PRIMER GRADO OLIMPIADA DE PARÍS 2024. Por JAVIE...JAVIER SOLIS NOYOLA
El Mtro. JAVIER SOLIS NOYOLA crea y desarrolla el “ROMPECABEZAS DE ECUACIONES DE 1ER. GRADO OLIMPIADA DE PARÍS 2024”. Esta actividad de aprendizaje propone retos de cálculo algebraico mediante ecuaciones de 1er. grado, y viso-espacialidad, lo cual dará la oportunidad de formar un rompecabezas. La intención didáctica de esta actividad de aprendizaje es, promover los pensamientos lógicos (convergente) y creativo (divergente o lateral), mediante modelos mentales de: atención, memoria, imaginación, percepción (Geométrica y conceptual), perspicacia, inferencia, viso-espacialidad. Esta actividad de aprendizaje es de enfoques lúdico y transversal, ya que integra diversas áreas del conocimiento, entre ellas: matemático, artístico, lenguaje, historia, y las neurociencias.
2. • El Fe(II) de la hemoglobina, oxihemoglobina yEl Fe(II) de la hemoglobina, oxihemoglobina y
carboxihemoglobina es oxidado a Fe(III) por elcarboxihemoglobina es oxidado a Fe(III) por el
ferricianuro, dando lugar a la metahemoglobina queferricianuro, dando lugar a la metahemoglobina que
en la presencia de ión cianuro, origina laen la presencia de ión cianuro, origina la
cianmetahemoglobina compuesto de color rojo ycianmetahemoglobina compuesto de color rojo y
estable, que se puede determinar fotométricamente.estable, que se puede determinar fotométricamente.
FUNDAMENTOFUNDAMENTO
3. MATERIALMATERIAL
Muestra:Muestra:
Sangre anticoagulada conSangre anticoagulada con
EDTA (Tapón morado)EDTA (Tapón morado)
MaterialesMateriales::
•Reactivo de Drabkin.Reactivo de Drabkin.
• Patrón de 15g/dl dePatrón de 15g/dl de
hemoglobina.hemoglobina.
• Material de laboratorio:Material de laboratorio:
Pipetas automáticas, tubosPipetas automáticas, tubos
desechables, puntas de pipeta,desechables, puntas de pipeta,
gradillas, cubetasgradillas, cubetas
espectrofotometro, etc.espectrofotometro, etc.
• Espectrofotómetro.Espectrofotómetro.
4. TÉCNICATÉCNICA
1.- Preparar el reactivo de trabajo a partir del reactivo de Drabkin1.- Preparar el reactivo de trabajo a partir del reactivo de Drabkin
concentrado, la dilución depende de la marca utilizada. Una vezconcentrado, la dilución depende de la marca utilizada. Una vez
preparada debe preservarse de la luz.preparada debe preservarse de la luz.
5. TÉCNICATÉCNICA
2.- Prepara en una gradilla tubo desechables (por ejemplo de capacidad 10ml), uno2.- Prepara en una gradilla tubo desechables (por ejemplo de capacidad 10ml), uno
por cada muestra más uno para el patrón, ya que lo tratarás como una muestrapor cada muestra más uno para el patrón, ya que lo tratarás como una muestra
más, y uno para el blanco (este puede ser opcional). No olvides identificar todosmás, y uno para el blanco (este puede ser opcional). No olvides identificar todos
los tubos.los tubos.
3.- Distribuye en cada tubo la cantidad de reactivo que marque el protocolo del3.- Distribuye en cada tubo la cantidad de reactivo que marque el protocolo del
fabricante que estés utilizando.fabricante que estés utilizando.
6. TÉCNICATÉCNICA
4.- Tras homogeneizar la sangre (ojo, no olvides nunca esta maniobra), toma la4.- Tras homogeneizar la sangre (ojo, no olvides nunca esta maniobra), toma la
cantidad que marque el protocolo (generalmente entre 10 y 20 μl de muestra).cantidad que marque el protocolo (generalmente entre 10 y 20 μl de muestra).
7. 5.- Mézclala con el reactivo de Drabkin. Repite esta operación para cada muestra5.- Mézclala con el reactivo de Drabkin. Repite esta operación para cada muestra
y para el patrón. Deja reposar entre 5 y 10 minutos.y para el patrón. Deja reposar entre 5 y 10 minutos.
TÉCNICATÉCNICA
8. 5.-Ha llegado el momento de realizar las medidas espectrofométricas:5.-Ha llegado el momento de realizar las medidas espectrofométricas:
• Ajusta la longitud de onda a 540 nm.Ajusta la longitud de onda a 540 nm.
• Haz un blanco utilizando reactivo de Drabkin.Haz un blanco utilizando reactivo de Drabkin.
• A continuación y utilizando distintas cubetas para cada muestra y para el patrónA continuación y utilizando distintas cubetas para cada muestra y para el patrón
ve tomando las lecturas de cada una de ellas.ve tomando las lecturas de cada una de ellas.
TÉCNICATÉCNICA
9. CONSIDERACIONESCONSIDERACIONES
1.1. Mantén las reglas de bioseguridad generales; guantes, bata, etc.Mantén las reglas de bioseguridad generales; guantes, bata, etc.
2.2. Prepara todo el equipo y material previamente.Prepara todo el equipo y material previamente.
3.3. Comprueba las condiciones de la muestra: Identificación, ausencia deComprueba las condiciones de la muestra: Identificación, ausencia de
hemólisis (el sobrenadante no debe estar rojizo), ausencia de burbujas,hemólisis (el sobrenadante no debe estar rojizo), ausencia de burbujas,
condiciones de conservación, etc.condiciones de conservación, etc.
4.4. Los valores de hemoglobina de las distintas muestras se obtienenLos valores de hemoglobina de las distintas muestras se obtienen
relacionando la absorbancia del patrón, cuya concentración conocemos,relacionando la absorbancia del patrón, cuya concentración conocemos,
con las absorbancias de las distintas muestras sabiendo que en lascon las absorbancias de las distintas muestras sabiendo que en las
condiciones de trabajo existe una proporcionalidad directa entrecondiciones de trabajo existe una proporcionalidad directa entre
absorbancia y concentración.absorbancia y concentración.
Ejemplo:Ejemplo:
•Absorbancia patrón de 15 g/dl de hemoglobina es igual 0,420.Absorbancia patrón de 15 g/dl de hemoglobina es igual 0,420.
•Absorbancia de muestra de concentración de hemoglobina desconocida esAbsorbancia de muestra de concentración de hemoglobina desconocida es
igual a 0,390.igual a 0,390.
[Hb muestra] = (15 g/dl · 0,390) / 0,420 = 13,90 g/dl de hemoglobina[Hb muestra] = (15 g/dl · 0,390) / 0,420 = 13,90 g/dl de hemoglobina
10. CONSIDERACIONESCONSIDERACIONES
1.1. Mantén las reglas de bioseguridad generales; guantes, bata, etc.Mantén las reglas de bioseguridad generales; guantes, bata, etc.
2.2. Prepara todo el equipo y material previamente.Prepara todo el equipo y material previamente.
3.3. Comprueba las condiciones de la muestra: Identificación, ausencia deComprueba las condiciones de la muestra: Identificación, ausencia de
hemólisis (el sobrenadante no debe estar rojizo), ausencia de burbujas,hemólisis (el sobrenadante no debe estar rojizo), ausencia de burbujas,
condiciones de conservación, etc.condiciones de conservación, etc.
4.4. Los valores de hemoglobina de las distintas muestras se obtienenLos valores de hemoglobina de las distintas muestras se obtienen
relacionando la absorbancia del patrón, cuya concentración conocemos,relacionando la absorbancia del patrón, cuya concentración conocemos,
con las absorbancias de las distintas muestras sabiendo que en lascon las absorbancias de las distintas muestras sabiendo que en las
condiciones de trabajo existe una proporcionalidad directa entrecondiciones de trabajo existe una proporcionalidad directa entre
absorbancia y concentración.absorbancia y concentración.
Ejemplo:Ejemplo:
•Absorbancia patrón de 15 g/dl de hemoglobina es igual 0,420.Absorbancia patrón de 15 g/dl de hemoglobina es igual 0,420.
•Absorbancia de muestra de concentración de hemoglobina desconocida esAbsorbancia de muestra de concentración de hemoglobina desconocida es
igual a 0,390.igual a 0,390.
[Hb muestra] = (15 g/dl · 0,390) / 0,420 = 13,90 g/dl de hemoglobina[Hb muestra] = (15 g/dl · 0,390) / 0,420 = 13,90 g/dl de hemoglobina