1. UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE FILOSOFÍA, LETRAS Y CIENCIAS DE LA
EDUCACIÓN
CARRERA DE PEDAGOGÍA DE LAS CIENCIAS
EXPERIMENTALES QUÍMICA Y BIOLGÍA
KARELLYS MARTINEZ
SEGUNDO B
BIOLOGÍA CELULAR
PERIODO: 2021-2021
2. PROPIEDADES DINÁMICAS DE LOS
MICROTÚBULOS
Aunque los microtúbulos morfológicamente parecen muy similares,
cualquiera que sea su localización dentro de la célula, hay
diferencias notables en la estabilidad de estos polímeros.
Las células vivientes pueden someterse a gran variedad de
tratamientos que provocan desensamblado de los microtúbulos
citoesqueléticos. Estos tratamientos incluyen temperaturas frías;
presión hidrostática; concentración elevada de Ca2+, y empleo de
varías sustancias químicas.
3. LABILIDAD DE LOS MICROTÚBULOS
Refleja que son polímeros originados por asociaciones no
covalentes de los bloques diméricos de construcción.
Susceptibles de destrucción.
¿QUÉ QUIERE
DECIR?
Esta facilidad para despolimerizarse revela el potencial de los
microtúbulos del citoesqueleto de una célula viviente para
sufrir cambios dinámicos en su estado de organización
estructural.
4. LABILIDAD
Los microtúbulos del huso mitótico o del citoesqueleto son
sumamente lábiles
Los microtúbulos de neuronas maduras son mucho menos
lábiles
los de cilios y flagelos son muy estables, es decir no son
labiles.
5. Ejemplos :
Durante la interfase, la mayor parte de las células del cultivose
encuentran firmemente fijas al fondo del plato de cultivo y
poseen un citoesqueleto microtubular altamente organizado
Una onda de desensamblado recorre sus microtúbulos
citoesqueléticos
El desensamblado del aparato mitótico va seguido por el
reensamblado de los microtúbulos citoesqueléticos y el
aplanamiento de la célula contra la superfice del plato.
6. INESTABILIDAD DINAMICA
Comportamiento de los microtúbulos, de alternar hacia
adelante y atrás entre las fases de crecimiento y acortamiento.
La inestabilidad dinámica conduce a un rápido
intercambio entre subunidades de tubulina y
polímeros.
En todo momento algunos microtúbulos crecen en
longitud, en tanto que otros se encogen.
7. Ejemplo
Cuando se observan polímeros in vitro, se nota que
crecen o se encogen por cambios en cualquiera de sus
extremos.
Aunque tanto el ensamblado como el desensamblado
pueden ocurrir con mayor rapidez en el extremo más.
Sin embargo, la observación de células vivientes
sugiere que el crecimiento y encogimiento in
vivo ocurren de manera predominante en el
extremo más del polímero, el extremo opuesto al
centrosoma.
8. Temperatura
Factores que influyen en el ensamblado
y desensamblado
Se observó que los microtúbulos podían desensamblarse y
reensamblarse una y otra vez con sólo descender y elevar la
temperatura de la mezcla de incubación.
Microtúbulos
ensamblados en
el tubo de ensayo
9. Presencia de un dímero de
tubulina y GDP
Los dímeros de tubulina y GTP muestran mayor afinidad
entre sí que los dímeros de tubulina y GDP. Como
resultado, sería de esperar que la presencia de tubulina
y GTP en el extremo de un protofilamento favoreciera
la fijación de otra tubulina y GTP.
Micrografía electrónica
mostrando el ensamblado
in vitro de tubulina
cerebral
10. 11.- Contrastar los papeles de la miosina I y la miosina II en las
actividades celulares.
MIOSINA I MIOSINA II
• Generan fuerza en
diferentes tipos de
tejido muscular y
también en varias
actividades no
musculares,
incluyendo división de
una célula en dos
mediante citocinesis.
• Se encuentra asociada
a organelos
membranosos y se
cree que es la
proteína motora que
desplaza vesículas
citoplásmicas a lo
largo de vías
constituidas por
microfilamentos.
11. Bibliografía
Karp, G. (2006). Citoesqueleto y motilidad
celular. En G. Karp, Biología Celular y Molecular
(4ta Ed.) pp 326-387. Mcgraw-Hill
