MA-02. MANUAL DE TOMA, MANIPULACION, CONSERVACION DE MUESTRAS.pdf

HOSPITAL
EMPRESA SOCIAL DEL ESTADO
HOSPITAL
MANUAL DE TOMA,
MANIPULACION Y
CONSERVACION DE
MUESTRAS

LABORATORIO CLÍNICO Y SERVICIO
TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
MANUAL DE TOMA, MANIPULACIÓN Y
CONSERVACIÓN DE MUESTRAS
Fecha de aprobación:
28/09/2018
Página 2 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
ESTE DOCUMENTO ES PROPIEDAD DE LA E.S.E. HOSPITAL SAN JOSÉ DEL GUAVIARE PROHIBIDA SU
REPRODUCCION POR CUALQUIER MEDIO, SIN AUTORIZACION ESCRITA DEL GERENTE
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
TABLA DE CONTENIDO
1. OBJETIVO .........................................................................................................................3
2. ALCANCE ..........................................................................................................................3
3. RESPONSABLES ..............................................................................................................3
4. DEFINICIONES..................................................................................................................3
5. PUNTOS CLAVES .............................................................................................................4
6. CONSIDERACIONES GENERALES .................................................................................5
7. TIPOS DE TUBOS USADOS PARA TOMA DE MUESTRAS ............................................7
8. FACTORES PREANALITICOS QUE AFECTAN LAS PRUEBAS......................................8
9. ACTIVIDADES .................................................................................................................10
10. CONSIDERACIONES PARA TOMA DE MUESTRA EN NIÑOS, NEONATOS Y
LACTANTES...........................................................................................................................14
11. TEST DE ALLEN ..........................................................................................................19
12. MUESTRAS PARA GASES ARTERIALES...................................................................21
13. IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA EN EL PROCESO PRE ANALÍTICO, ANALÍTICO
Y POST ANALÍTICO...............................................................................................................22
14. CONSIDERACIONES PARA SU PROTECCIÓN PERSONAL.....................................22
15. QUE HACER SI UN PACIENTE PIERDE EL CONOCIMIENTO DURANTE EL
PROCEDIMIENTO .................................................................................................................23
16. PROBLEMAS Y POSIBLES RIESGOS EN LA TOMA DE MUESTRA .........................23
17. PREVENCIÓN DE LA FLEBITIS ..................................................................................24
18. DESCRIPCIÓN TOMA DE MUESTRA POR EXAMEN.................................................27
19. TSH NEONATAL ..........................................................................................................55
20. CONTROL DE CALIDAD INTERNO DE LAS MUESTRAS ..........................................58
21. PRIORIDAD DE LAS MUESTRAS ...............................................................................59
22. EXÁMENES DE URGENCIA ........................................................................................59
23. CRITERIOS PARA RECHAZAR UNA MUESTRA........................................................60
24. SUPERVISIÓN PERSONAL DE BACTERIOLOGÍA EN EL PROCESO DE TOMA DE
MUESTRAS............................................................................................................................61
25. TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS...........................................................................62
26. DOCUMENTOS DE REFERENCIA ..............................................................................62
27. CONTROL DE REVISIONES Y CAMBIOS DEL DOCUMENTO ..................................63
28. ANEXOS.......................................................................................................................64

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 3 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
1. OBJETIVO
Proporcionar mecanismos de referencia para las diferentes técnicas de toma de muestra, con
el fin de garantizar la estandarización del proceso, la calidad de la muestra y las condiciones
pre analíticas de la misma.
2. ALCANCE
Aplica desde la toma de la muestra sanguínea o no sanguínea hasta la adecuación de las
mismas para ser procesadas.
3. RESPONSABLES
• La obtención de la muestra de sangre venosa está a cargo de las Bacteriólogas,
Enfermeras Jefes, Auxiliares de Laboratorio Clínico y Enfermería y profesionales de
entrenamiento bajo supervisión de la Bacterióloga (estudiantes, auxiliares o
bacteriólogas en entrenamiento)
• Las muestras como Parcial de Orina, Coprológicos, Orina de 24 horas, Espermograma
que son responsabilidad del paciente, es responsabilidad de los médicos, Jefes de
enfermería, Bacteriólogas, Auxiliares de enfermería y Laboratorio Clinico suministrar
las indicaciones a los pacientes para su correcta recolección.
• La toma de muestra de líquidos estériles (Liquido Pleural, Líquido Ascítico, Liquido
Articular y otros) está reservada a personal médico. La obtención del Líquido
Cefalorraquídeo es un procedimiento invasivo por lo tanto debe ser tomada por
personal médico autorizado para ello.
• La obtención de las muestras no sanguíneas debe ser realizadas principalmente por
las Enfermeras Jefes, Auxiliares de enfermería en pacientes hospitalizados, y en
pacientes de Consulta Externa es responsabilidad de Bacteriólogas y Auxiliares de
Laboratorio Clínico.
4. DEFINICIONES
• Toma de muestra: Procedimiento especializado que consiste en la obtención de uno
o varios especímenes biológicos con el fin de encontrar la causa o factores que
afectan la salud.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 4 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Asepsia: Serie de procedimientos o actuaciones dirigidas a impedir la llegada de
microorganismos patógenos a un medio aséptico o ausencia de microorganismos que
pueden causar enfermedad. Protección de los usuarios y del personal de la salud
contra la infección o la reinfección por la transferencia de microorganismos patógenos
de una persona a otra.
• Bioseguridad: Normas requeridas para proteger la salud de los trabajadores del área
de la salud de infecciones ocasionadas por enfermedades infecto contagiosas.
También es el conjunto de normas y procedimientos que tienen por objeto, disminuir o
minimizar los factores de riesgo biológicos que puedan llegar a afectar la salud o la
vida de las personas o puedan afectar el medio ambiente.
• Antiséptico: Sustancia química de aplicación tópica sobre tejidos vivos, que destruye
o inhibe los microorganismos sin afectar sensiblemente a los tejidos donde se aplica.
• Elementos de protección personal: Deben utilizarse cuando se esté bajo la
presencia de los factores de riesgo específicos que permitan la prevención de
accidentes y que contribuyan al bienestar laboral.
• Sondaje vesical: Procedimiento invasivo que consiste en la introducción aséptica de
una sonda o catéter a la vejiga, a través de la uretra, con el fin de establecer una vía
de drenaje temporal o permanente desde la vejiga al exterior, con finalidad diagnostica
o terapéutica.
5. PUNTOS CLAVES
El médico utiliza el laboratorio como medio de ayuda para el diagnóstico y tratamiento del
paciente.
La petición del análisis pone en movimiento una gran cantidad de maniobras, para la
obtención de un resultado. Estos son utilizados para establecer juicios clínicos.
Por qué y para qué se solicita un análisis:
• Confirmar una impresión clínica
• Descartar un diagnóstico.
• Controlar un tratamiento
• Establecer un diagnóstico.
• Realizar exploración selectiva o detección de una enfermedad.
La recogida, manipulación y procesamiento de la muestra antes de realizar el análisis son
fundamentales.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 5 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
6. CONSIDERACIONES GENERALES
• Es primordial el buen trato hacia el paciente, bríndele un saludo, una palabra amable y
respetuosa para tranquilizarlo.
• Informar al paciente y/o familiares sobre el procedimiento. Los procedimientos de
recolección de muestras pueden ser molestos y ocasionar dolor.
• Es importante transmitir confianza y profesionalismo al paciente
• Cumplir las normas de atención preferencial en el área de toma de muestras de
consulta externa.
• El paciente debe estar en una posición cómoda.
• Verificar rigurosamente con la orden médica el nombre del paciente y los exámenes a
tomar.
• Verificar el tipo de tubos a utilizar antes de tomar la muestra.
• Rotular los frascos y tubos con los datos del paciente antes de tomar la muestra.
• Aplicar las normas de bioseguridad:
Lavado de manos y uso de guantes en todos los casos de manipulación de líquidos
corporales. Uso de gafas o tapabocas con visera durante la recolección de muestras
con riesgo de salpicaduras. No re-encapuchar agujas y desecharlas en el recipiente
adecuado (Guardián® BD).
• Preservar la técnica aséptica en la obtención de muestras mediante procedimientos
invasivos (venopunción periférica, catéter central, punción lumbar, etc.)
• Evitar la yodopovidona, material que puede alterar los resultados de los exámenes,
como elevación de potasio, fósforo, ácido úrico y niveles de bilirrubina.
• La muestra de sangre nunca deberá extraerse de una zona próxima a un lugar de
infusión, se debe realizar de un brazo opuesto.
• En caso de que se tome la muestra de una vía ya instalada en el paciente, es
fundamental realizar una buena purga de la misma con el fin de evitar contaminación
química (la cánula debe enjuagarse con s/n salina isotónica en cantidad proporcional
al volumen del catéter. Los primeros 5 ml deben desecharse antes de la recolección
de la muestra de sangre.)
• El torniquete no debe prolongarse por más de 1 minuto.
• El ejercicio excesivo del puño debe evitarse.
• Respecto el tipo de muestra, siempre tener en cuenta:

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 6 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
En la toma de muestra de tubos con anticoagulante (LILA - EDTA y AZUL - Citrato). El
volumen de la sangre debe ser el indicado para que no altere los resultados. Si no se cumple
esta condición la muestra queda diluida y por ende es criterio de rechazo.
ORDEN DE LLENADO DE TUBOS
Si se recogen múltiples tubos en la misma extracción, se recomienda el siguiente orden de
llenado de los tubos para evitar contaminación tisular proveniente del sitio de venopunción:
• TAPA ROJA (suero)
• TAPA AZUL (pruebas de coagulación)
• TAPA LILA (cuadro hemático)
Si no se encuentra la vena o se pierde, no manipule la aguja dentro de la vena pues esto
ocasiona que los glóbulos rojos se rompan y se presente la hemólisis que es uno de los
factores que mayor interferencia produce en los resultados.
Enviar la muestra al laboratorio en el menor tiempo posible.
En la atención ambulatoria del servicio de toma de muestras el auxiliar de laboratorio debe
verificar si el paciente cumple con las condiciones de toma de muestra, aplicando el Formato
formulario de admisión para toma de muestras M-LC-FO-55.
En pacientes hospitalizados reportar al personal de laboratorio cualquier medicamento o
tratamiento que esté utilizando el paciente o registrar en la orden médica.
Nota: Para casos de extrema urgencia y código rojo donde no se pueda generar orden
médica para solicitud de exámenes, el médico debe realizar nota en papel blanco donde
registre el nombre del paciente, documento y servicio si tiene la información disponible, de lo
contrario puede utilizar siglas como NN. El laboratorio clínico NO aceptará muestras con
solicitudes verbales.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 7 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
7. TIPOS DE TUBOS USADOS PARA TOMA DE MUESTRAS

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 8 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
8. FACTORES PREANALITICOS QUE AFECTAN LAS PRUEBAS
FACTORES DEL PACIENTE
Inmodificables Modificables
Edad Estrés
Género Actividad física
Grupo étnico Dieta
Ciclo menstrual Fumar
Embarazo Postura
Medicamentos
ESTRÉS MENTAL O FÍSICO
Estimula Afecta
Prolactina Glucosa
Cortisol Colesterol
Catecolaminas Transferrina
Aldosterona
Factores de la
Coagulación
Renina
Es importante tener presente que existen muchos factores que pueden afectar el resultado
de las pruebas de laboratorio, algunos de los cuales pueden ser evitados con una adecuada
orientación al paciente y una correcta técnica de extracción sanguínea. A continuación se
enumera algunos factores:
• La ansiedad y la tensión mental o física pueden afectar los niveles de muchos
componentes sanguíneos. Tal es el caso de las concentraciones de Prolactina,
Cortisol, Catecolamina, Aldosterona y Renina. También puede elevar el recuento de
leucocitos.
• Los ejercicios físicos vigorosos 3 días previos a la toma de la muestra pueden alterar
los niveles de CK, LDH, AST, potasio, glucosa, lactato, prolactina y cortisol.
• El ritmo diurno de algunos fluidos corporales muestran fluctuaciones durante el día,
por ejemplo, los niveles de cortisol son altos en la mañana, pero decrecen en la tarde,
los niveles de hierro tienden a caer durante el día.
• La situación dietética del paciente puede ser importante para ciertas pruebas. Tal es el
caso de las variaciones en la concentración de lípidos después de una comida
grasosa. El suero sanguíneo muestra una apariencia lechosa debido a la presencia de

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 9 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
triglicéridos y quilomicrones. Estos sueros hiperlipidémicos influyen en las mediciones,
por lo que se recomienda indicar al paciente no realizar cambios poco comunes en la
alimentación diaria como ingerir alimentos grasosos el día anterior a la toma de la
muestra.
• La ingestión de etanol induce cambios en la composición de los líquidos corporales.
De particular interés son las enzimas hepáticas, como la Fosfatasa Alcalina,
Transaminasas, Gama Glutamil Transferasa y otros componentes como la glucosa,
triglicéridos, uratos y lactato.
• El ayuno prolongado implica importantes cambio en el metabolismo. Se aumenta la
Aldosterona, Bilirrubinas, Triglicéridos, Urea, Ácido Úrico y por el contrario van a
disminuir los aminoácidos implicados en la gluconeogénesis.
ALTERACIONES GESTACIONALES:
En el embarazo se producen cambios profundos en diversos procesos metabólicos y
bioquímicos: orina, hipófisis, tiroides, corteza suprarrenal, lípidos séricos, proteínas séricas,
función hepática y glucosuria. Disminución de la concentración de la hemoglobina y el
hematocrito.
HEMÓLISIS: Las muestras deben obtenerse por succión suave. La muestra debe
trasvasarse lentamente por las paredes del tubo después de ser eliminada la aguja.
LIPEMIA: Provocada por una concentración alta de triglicéridos en el suero provocara
resultados aparentemente altos para todas las sustancias cuyas determinaciones se basan
en la absorbancia a las mismas longitudes de onda en que las partículas de lípido también
absorben luz.
ICTERICIA: Puede interferir en las determinaciones de Albúmina, en los ensayos de
colesterol que utilizan como reactivo el cloruro férrico, en las determinaciones de glucosa
basadas en el método de la o-toluidina y en las proteínas totales por biuret, o las reacciones
que usen filtro a 405 o a 520.
TORNIQUETE: Éste puede producir éxtasis venoso localizado, la muestra se hace
hemoconcentrada, induciendo valores erróneamente altos para todos los especímenes
proteicos y todas las especies ligadas a proteínas. El mismo no debe prolongarse por más de
1 minuto.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 10 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
Se pide al paciente que cierre el puño, lo cual distiende las venas, el ejercicio excesivo del
puño debe evitarse, dado que el mismo puede producir elevación en la concentración de
potasio, como en la de la LDH. Las muestras para determinar Lactato deben ser tomadas sin
torniquete.
9. ACTIVIDADES
9.1 TIPOS DE MUESTRA
9.1.1 PUNCIÓN CAPILAR
La sangre capilar contiene más glucosa, más leucocitos, más glóbulos rojos y Hemoglobina.
Pero las plaquetas son más bajas. Los glóbulos rojos de la sangre de capilares son menos
frágiles que los venosos.
Utilizado para gota gruesa, grupo sanguíneo especialmente en niños o lactantes, prueba de
glucometria.
MATERIAL:
• Guantes
• Lancetas
• Torundas de algodón
• Gasas estériles.
• Alcohol isopropilico al 70%
TÉCNICA:
1. Seleccionar el punto para la punción. En lactantes casi siempre se elige la superficie
plantar interna o externa del talón. Otro punto es la cara lateral de un dedo junto a la uña
y el lóbulo de la oreja. La zona no debe presentar edema ni punciones anteriores.
2. Limpiar la zona de punción con una solución acuosa de alcohol al 70%. Se deja secar la
piel y no se toca la zona con ningún objeto que no haya sido previamente esterilizado.
3. La punción se lleva a cabo con una lanceta estéril, realizando un único movimiento con el
instrumento casi en paralelo con respecto a la superficie de la piel.
4. Desechar la primera gota de sangre enjugándola con una gasa estéril. Regular el flujo de
sangre mediante presión con el pulgar. No hay que realizar maniobras de ordeñe ya que
se pueden hemolizar la muestra e introducir un exceso de Líquido histico.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 11 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
9.1.2 PUNCIÓN VENOSA
La facilidad de la obtención de la muestra venosa hace que este sea el método principal de
extracción. La mayoría de las sustancias analizadas se encuentran presentes en forma
soluble o dispersas en forma homogénea. Se evitara la inyección de aire en la vena,
comprobando que el embolo esté hasta el fondo del barril. También se evitara la extracción
en la extremidad en que haya una venoclisis o transfusión de sangre, soluciones glucosadas
o con electrolitos.
Cuando se obtienen múltiples muestras, quitar el torniquete al término de un minuto de haber
comenzado la extracción de sangre, para evitar la hemoconcentración. Sin embargo hay que
considerar varias fuentes de error que se presentan durante la preparación del sujeto para la
extracción.
El responsable de efectuar la flebotomía debe tener los conocimientos básicos del
procedimiento: Concentración sanguínea local es consecuencia de una aplicación
prolongada de un torniquete. Una retracción excesiva del embolo puede contraer una vena
pequeña y la sangre no entra en la jeringa, esto puede remediarse haciendo un ligero
movimiento hacia atrás y adelante y reduciendo la fuerza de aspiración.
También puede no llegar sangre a la jeringa si se punciona solo la capa exterior de la vena,
esto se soluciona retrayendo un poco la aguja y haciéndola entrar de nuevo, esto puede
provocar hematoma, si se nota indicios de este se debe retirar la aguja y aplicar una presión
local de 10 minutos, no masajear.
Transfixión de la vena, esto también causa de que no salga sangre por haberla atravesado,
en este caso se retira la aguja un poco, se aspira suavemente para ver si entonces sale.
Sincope, su mejor tratamiento es poner al paciente en decúbito, si ya está darle atención
médica.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 12 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
Las agujas y jeringas descartables eliminan el riesgo de transmisión de hepatitis, siempre
que se realice la extracción con la técnica adecuada y se elimine las agujas en la forma
correcta en los guardianes.
Para evitar la punción accidental del operador no debe tratar de volver a encapuchar la aguja
nuevamente.
Los tubos deben contener distintos tipos de anticoagulantes según la determinación que se
debe practicar.
MATERIALES:
• Agujas
• Soporte vacutainer
• Jeringas
• Tubos
• Guantes
• Torniquetes
• Torundas de algodón
• Alcohol isopropilico al 70%
• Contenedor de dispositivos cortopunzantes
• Esparadrapo
• Contenedor de desechos peligrosos
• Gradilla para tubos
• Marcador
TÉCNICA:
1. Se debe tranquilizar al paciente, eliminando su tensión.
2. Se ha de colocar adecuadamente al paciente para tener acceso fácil y cómodo a la fosa
radial.
3. Hay que preparar todo el material necesario para la extracción. Realizar la correcta
identificación del paciente rotular los tubos con los siguientes datos:
- Nombres y apellidos - Documento de identidad
- Servicio - Fecha toma de la muestra
- Hora toma de la muestra - Quien toma de muestra

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 13 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
4. Se selecciona la vena. Se prefiere la cubital interna y la cefálica. También pueden
utilizarse las venas de las muñecas, el tobillo y la mano. Si ya existe un catéter
intravenoso en un brazo, se utilizará el otro para la extracción para evitar diluciones con
el contenido del catéter.
5. Se limpia la zona de venopunción con un algodón con alcohol al 70%. Se comienza en
el punto de la punción y se prosigue la limpieza hacia afuera, siguiendo un movimiento
en espiral, más o menos de 15 a 20 cm del sitio de inserción, descarte el algodón y repita
el mismo procedimiento con otro algodón impregnado de alcohol. Se deja secar la zona y
no se toca con ningún objeto que no haya sido esterilizado previamente.
6. En lo posible no utilizar torniquete, si este es necesario, colóquelo 10 cms arriba del
codo, después de haber realizado la asepsia y no antes porque produce
hemoconcentración y molestias al paciente, No hay que dejar un torniquete más de 1
minuto, retírelo inmediatamente haya puncionado. Las prolongaciones del tiempo del
torniquete pueden inducir cambios significativos en varios analitos especialmente
enzimas y proteínas.
7. Estabilizar la vena manteniendo la piel tensa en sentido contrario a la dirección de la
punción, con el fin de lograr la colocación traumática de la aguja.
8. Se realiza la venopunción, se penetra a través de la piel con la aguja formando un ángulo
de aproximadamente 45° C con el brazo y con el bisel hacia arriba se sigue la dirección
de la vena. La aguja debe ser calibre adecuado 0.8 porque es el diámetro del glóbulo rojo
y estos no se rompen produciendo hemólisis.
9. Mantenga fija la jeringa sin realizar movimientos bruscos para minimizar el traumatismo
de la pared del vaso.
10.Empujar el tubo para que perfore la tapa y se obtenga la sangre al vacío. Si es con
jeringa se extrae la sangre por medio del embolo la cantidad requerida.
11.Cuando la sangre comience a fluir, se suelta el torniquete
12.Una vez que se haya extraído toda la muestra, hay que indicar al paciente que relaje el
puño y que no bombee con la mano.
13.Se coloca un algodón sobre el punto de punción, se extrae la aguja y se ejerce presión
sobre la zona por lo menos durante 5 minutos. Si el sangrado no se detiene, aplique
presión constante sobre la herida durante 10 minutos más. Si el problema aún no se
soluciona, comuníquese con su superior inmediato o directamente con el médico
tratante.
14.Verificar el estado del paciente, si se ha mareado o si la hemorragia está controlada,
retire el algodón seco para finalmente colocar una cura redonda.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 14 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
15.Adicionar la muestra de sangre por la pared del tubo suavemente previamente retirada la
aguja de la jeringa. Eliminar la aguja en el guardián correspondiente y la jeringa en la
caneca roja.
16.Se mezclan los tubos por inversión suave de 10 a 15 veces.
10. CONSIDERACIONES PARA TOMA DE MUESTRA EN NIÑOS,
NEONATOS Y LACTANTES
10.1 TÉCNICA PARA PUNCIÓN CAPILAR Y VENOSA
Seguir correctamente las indicaciones para la punción capilar y venosa descrita
anteriormente.
Realizar el procedimiento valiéndose de ayuda de compañeros(as) de trabajo.
Sujetar firmemente el brazo del niño, aun cuando el pequeño paciente no oponga resistencia
al procedimiento, usualmente los niños tiende a reaccionar bruscamente al someterlos a
procedimientos de extracción de sangre. Esta reacción puede producir una herida mayor en
el niño, como el rompimiento de la aguja dentro de la vena.
Es recomendable, en la medida que sea posible, que la madre del bebé no presencie el
procedimiento.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 15 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
10.2 TÉCNICA PARA OBTENCIÓN DE MUESTRAS DE ORINA Y MATERIA
FECAL.
Lave los genitales con jabón y abundante agua. Secar muy bien con un paño limpio.
Adherir la bolsa al periné del niño incluyendo sus genitales.
Cada 30 minutos, en caso de que no se haya producido la micción, se debe cambiar la bolsa,
repitiendo toda la operación.
Enviar inmediatamente al laboratorio. Si no, se puede refrigerar la orina hasta por 2 horas.
Para la recolección de materia fecal se puede recoger del pañal, asegurándose que las
heces hayan sido recién emitidas y que no hayan sido absorbidas por el pañal.
10.3 TÉCNICA DE OBTENCIÓN MUESTRA DE ORINA POR SONDA
Es el paso de una sonda estéril a la vejiga a través del meato urinario y la uretra.
El riñón es el órgano responsable de la eliminación de la mayor parte del agua pérdida en el
organismo. La orina se obtiene a través de todo el sistema renal: riñones, uréteres, vejiga y
sale al exterior por la uretra.
Sondas de Nelatón: son sin balón, transparentes y sólo se utilizan para extraer orina y se
retira después del drenaje.
Indicación del uso de la sonda vesical: obtención de orina para examen de Urocultivo o
parcial de orina previa solicitud médica.
El personal auxiliar del laboratorio es el responsable de la inserción de la sonda y toma de la
muestra a los pacientes que ingresan por el servicio ambulatorio al laboratorio clínico.
Medidas de prevención asociadas al dispositivo:
• Educación al personal en las técnicas correctas de inserción y cuidado de la sonda
• Explicar el procedimiento al paciente
• Realizar lavado de manos antes y después de la inserción de la sonda
• Usar normas de Bioseguridad

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 16 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Utilizar sonda vesical de calibre adecuado para minimizar el trauma uretral
Selección de la Sonda e indicaciones para la toma de la muestra:
El tamaño de las sondas está graduado de acuerdo a la escala de French (Fr).
Para hombres adultos se utilizan los calibres de sonda vesical de 16 a 18 Fr. En caso de
estrechez uretral de 12 a 14 Fr. En mujeres adultas el calibre es de 14 Fr. En niños de 5 a 12
Fr, según la edad. Utilizar sondas de menor calibre, disminuye el riesgo de complicaciones
infecciosas.
• Hombres: Se pide al paciente que esté en posición supina con los pies ligeramente
separados. Limpiar con solución antiséptica los genitales externos y el meato uretral,
sujetando el pene del paciente en posición vertical, retraer el prepucio para hacer una
asepsia completa con movimientos únicos circulares, de la parte superior y hacia
abajo del cuerpo del pene, utilizando una gasa para cada movimiento. Repetir la
asepsia 3 veces.
• Mujeres: Colocar a la paciente en posición ginecológica, realizar limpieza con solución
antiséptica los genitales externos y el meato uretral, iniciando de la sínfisis púbica
hacia abajo, es necesario separar los labios mayores y menores para hacer la asepsia
completa, con movimientos de arriba hacia abajo únicos, utilizando una sola gasa en
cada movimiento; se repite la asepsia 3 veces.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 17 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
TÉCNICA:
• Elegir el calibre de sonda de acuerdo para el paciente.
• Rotular el frasco recolector de orina con los datos del paciente
• Lavarse las manos con agua y jabón.
• Colocar al paciente en posición ginecológica (mujeres) o supina (hombres)
• Colocarse guantes no estériles
• Realizar higiene de los genitales con jabón quirúrgico, suero fisiológico y gasas.
• Realizar cambio de guantes a estériles
• En mujeres separe los labios mayores y menores con una gasa para evitar
contaminación.
• Lubricar la sonda con xilocaína gel en caso de ser necesario
• En los hombres se procede a la introducción la sonda con firmeza y suavidad, levanta
el pene en un ángulo de 60 a 90 grados y con la mano que lo sostiene retrae el
prepucio para visualizar el meato urinario e introduce la sonda hasta la bifurcación,
observar la salida de la orina
• En las mujeres, con los dedos pulgar e índice abre con cuidado la vulva para permitir
visualizar el orificio de la uretra, que está localizado inmediatamente por arriba del
orificio vaginal, 2.5 cm aproximadamente por debajo del clítoris, se introduce
aproximadamente 8 cm ya que la uretra es más corta
• Insertar la sonda dentro de la uretra hasta obtener la orina.
• Descartar la primera orina y recoger en el frasco recolector la cantidad necesaria
• Retirar la sonda suavemente
• Retire el equipo y cubra al paciente.
10.4 TOMA DE UROCULTIVO EN PACIENTES CON SONDA VESICAL
PERMANENTE
• Desocupar el Cystofló y colapsar el tubo colector durante 30 – 60 minutos.
• Desinfectar la parte media de la sonda vesical y oprimir el sitio que hay entre la
bifurcación y la unión sonda-tubo colector.
• Con la jeringa estéril puncionar la sonda vesical por encima de la bifurcación,
dirigiendo el bisel hacia el lado de la sonda que va a la uretra del paciente.
• Aspirar de 5 a 10 c.c. de orina.
• Limpiar nuevamente el área puncionada con solución antiséptica.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 18 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Descolapsar el tubo colector.
• Rotular la muestra con los datos del paciente
El riesgo de introducir la infección durante el cateterismo o de otras complicaciones es bajo si
el personal entrenado emplea la técnica correcta.
Es contraindicado el sondaje vesical en los siguientes casos:
• Presencia de heridas en uretra, asociadas al trauma pélvico.
• Sospecha de rotura uretral
• Prostatitis aguda.
10.5 BAÑO GENITAL EXTERNO CON TÉCNICA ASÉPTICA
Es la limpieza que se hace con técnica aséptica a los genitales externos, el objetivo es
disminuir el riesgo de infecciones de genitales y anexos en el paso de sonda vesical. Aplica
para Toma de muestras para laboratorio como Urocultivo, parcial de orina.
• Explique el procedimiento al paciente
• Colocar el paciente en posición ginecológica
• Colocar el pato
• Descubra la región a desinfectar, dejando protegido parte externa de muslos con
sobre sabana
• Colocar la toalla sobre el abdomen
• Colocarse los guantes no estériles
• Impregnar de jabón quirúrgico la gasa y colocarla sobre la región perineal
• Realizar movimientos circulares siempre de arriba hacia abajo en paciente femenino y
del centro hacia fuera del glande en paciente masculino.
• Enjuagar con solución salina estéril
• Secar con gasas estériles
RECOMENDACIONES:
• Lavar las manos antes y después del procedimiento (de acuerdo a protocolo de lavado
de manos)
• Realizar todo el procedimiento con delicadeza.
• Dar privacidad al paciente durante el procedimiento.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 19 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Utilizar cada gasa una sola vez y siempre de arriba hacia abajo en paciente femenino
y del centro hacia fuera del glande en paciente masculino.
• Dejar al paciente seco y cómodo.
10.6 SEGUIMIENTO PACIENTE CON INSERCIÓN DE SONDA
El personal auxiliar de laboratorio realiza llamada al paciente que se le ha realizado
procedimiento de inserción de sonda para examen de laboratorio clínico como parcial de
orina y Urocultivo, a las 72 horas y 5 días, preguntando si ha presentado los siguientes
síntomas:
• Fiebre
• Disuria
• Hematuria
• Dolor lumbar
• Ardor al orinar
• Orina con olor fétido
Se debe registrar la información dada por el paciente en el libro Registro de pacientes con
Inserción de sonda vesical.
Si el paciente refiere algún síntoma de infección, se debe solicitar al paciente consultar al
médico de su EPS, y hacer seguimiento a la atención médica. Solicitar al paciente copia del
resultado del examen solicitado.
11. TEST DE ALLEN
El test de Allen sirve para el verificar el correcto flujo de sangre a través de la arteria cubital.
Se recomienda realizar ésta prueba antes de proceder a la punción de la arteria radial.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 20 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
Instruya al paciente a cerrar fuertemente el puño del brazo elegido, de ésta manera se fuerza
a la sangre hacia fuera de la mano. Si el paciente no está en condiciones de cerrar el puño
en forma activa, el especialista puede hacerlo cerrándole el puño y ajustándolo ligeramente.
Usando sus dedos índice y medio de cada mano el clínico deberá de ejercer una presión
externa sobre las zonas de ambas arterias, de éste modo obstruir el flujo de sangre hacia la
mano (ver figura A).
Ejerciendo presión sobre las arterias pedir al paciente que abra la mano, usted podrá notar el
color pálido blanquecino en la palma de la mano y especialmente en las yemas de los dedos
por falta de irrigación sanguínea (ver figura B).
Libere la presión sobre la arteria cubital y deberá observar el flujo de sangre hacia la mano
en un lapso entre 5 y 15 segundos (ver figura C). Éste flujo de sangre es considerado normal
y adecuado. Si observa el normal flujo de sangre liberando la arteria cubital mientras
mantiene presionada la arteria radial se considerará que el resultado es positivo y el paciente
está apto para continuar con la punción de la arteria radial.
Libere la presión sobre la arteria cubital y deberá observar el flujo de sangre hacia la mano
en un lapso entre 5 y 15 segundos (ver figura C). Éste flujo de sangre es considerado normal
y adecuado. Si observa el normal flujo de sangre liberando la arteria cubital mientras
mantiene presionada la arteria radial se considerará que el resultado es positivo y el paciente
está apto para continuar con la punción de la arteria radial.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 21 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
Una respuesta negativa del test de Allen nos indica que la circulación del flujo de sangre por
la arteria cubital está comprometida y por lo tanto es recomendable evitar la punción de la
arteria radial.
12. MUESTRAS PARA GASES ARTERIALES
Las muestras de Gases Arteriales deben de cumplir con un mínimo requerimientos para
proveer correctos valores de AGA durante su análisis.
Mínimos requerimientos
• La muestra debe ser tomada directamente de una arteria permitiéndole a la sangre
fluir libremente, o ser aspirada en forma continua.
• El tiempo de extracción no debe ser mayor de 15 segundos.
• La jeringa no debe contener espacios ni burbujas de aire, la sangre debe llenar
completamente el volumen requerido de muestra.
• Cuando se usa heparina líquida el volumen de la heparina debe ser inferior al 2% del
total de la muestra.
• La jeringa debe estar completamente cerrada para evitar la contaminación con aire
externo.
• La jeringa debe ser previamente heparinizada para evitar la coagulación. (Máximo
20UI/mL). Lo recomendable es una cantidad total de 7 UI de heparina de Litio.
• Las cantidades mínimas son: 0.3 mL para neonatos, niños y adultos. La muestra ideal
es 0.5 ml..
• Las muestras que no cumplen con esas cantidades deberán ser desechadas.
• La muestra debe ser homogeneizada con la heparina inmediatamente después de ser
extraída, para ello debe rolarse la jeringa entre las manos durante 10 a 15 segundos e
invertir varias veces.
• La cantidad y calidad de heparina debe ser controlada para evitar alteraciones de los
valores medidos con respecto a los valores reales de la sangre en el paciente. Se
recomienda una concentración final menor de 20 UI/ml. La cantidad mínima requerida
para asegura la anti coagulación es de 1UI/ml.
• La muestra debe ser etiquetada
• La muestra debe ser inmediatamente enviada al laboratorio en cava de icopor con
hielo. Éste a su vez debe analizarla tan pronto llegue. Se recomienda analizar la
muestra en un tiempo no mayor a 15 minutos después de su extracción. Solo en el

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 22 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
LABORATORIO CLINICO
HOSPITAL SAN JOSE DEL GUAVIARE
Nombre Paciente: ______________________________________
HC Paciente:_______________________Servicio:____________
Fecha toma de muestra: ________________________________
Hora toma de muestra: _________________________________
Quien toma la muestra: ___________________________
caso de saber a priori que la muestra va hacer analizada en un tiempo mayor de 20
minutos se recomienda ponerla en hielo entre 3 y 7ºC o en la nevera.
13. IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA EN EL PROCESO PRE
ANALÍTICO, ANALÍTICO Y POST ANALÍTICO.
Pre analítico: El tubo primario contiene un sticker donde se registran los datos completos del
paciente:
- Nombres y apellidos
- Documento de identidad
- Servicio
- Fecha toma de la muestra
- Hora toma de la muestra
- Quien toma de muestra
Analítico: En caso de que la muestra deba reenvasarse en tubo secundario, esta muestra
debe permanecer con los datos de identificación del tubo primario: Nombres y apellidos,
documento de identidad, servicio, fecha toma de la muestra, hora toma de la muestra, quien
toma de muestra.
Post analítico: Las muestras de suero y plasma ya analizadas deben mantener la
identificación del paciente. Las muestras se refrigeran de 2 a 8 °C durante 8 días en la
nevera de almacenamiento de muestras biológicas.
14. CONSIDERACIONES PARA SU PROTECCIÓN PERSONAL

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 23 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Todas las muestras de especímenes biológicos deben considerarse potencialmente
infecciosas.
• Vacunarse contra los principales agentes infecciosos.
• Procurar no producir "salpicaduras" con la muestra obtenida. Debe limpiarse y
desinfectarse cualquier superficie contaminada por algún espécimen biológico.
• Lavarse las manos correctamente, después de haber tenido contacto con cada
paciente y al concluir cualquier procedimiento.
• No deben ingerirse comidas, bebidas, goma de mascar o fumar durante los diferentes
procedimientos en el Laboratorio.
• Vigile que los elementos de trabajo estén en perfectas condiciones físicas. Algún
elemento en mal estado, podría causarle una herida.
15. QUE HACER SI UN PACIENTE PIERDE EL CONOCIMIENTO
DURANTE EL PROCEDIMIENTO
• Retire inmediatamente la aguja del lugar de la punción.
• Sostenga al paciente con fuerza para evitar que caiga y se golpee. Solicite ayuda.
Coloque sobre la herida de la punción, un apósito, algodón o gasa con sostenida
presión, para evitar que siga sangrando.
• Puede acostarse al paciente en el suelo o en una camilla y deben levantarse sus
piernas (Posición de Trendelemburg). Coloque un algodón impregnado con alcohol
frente a la nariz del paciente.
• Permita que el paciente tenga buena ventilación. Abra el cuello de su camisa y
desajuste la corbata si es el caso. El paciente por si solo sabrá cuando podrá
incorporarse. Si las circunstancias lo permiten, haga medición de la presión
sanguínea. Si al transcurrir 1 minuto el paciente no está consciente trasladar al
servicio de urgencias.
16. PROBLEMAS Y POSIBLES RIESGOS EN LA TOMA DE
MUESTRA
• La obtención mediante un pinchazo de la vena puede producir cierto dolor.
• La posible dificultad en encontrar la vena apropiada puede dar lugar a varios pinchazos.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 24 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Aparición de un hematoma (moratón o cardenal) en la zona de extracción, suele deberse
a que la vena no se ha cerrado bien tras la presión posterior y ha seguido saliendo
sangre produciendo este problema.
• Inflamación de la vena (flebitis), a veces la vena se ve alterada, bien sea por una causa
meramente física o por que se ha infectado. Se deberá mantener la zona relajada unos
días. Si el problema persiste o aparece fiebre se deberá consultar con el médico.
17. PREVENCIÓN DE LA FLEBITIS
DEFINICIÓN DE FLEBITIS
Corresponde a la inflamación en la pared de una vena que se produce generalmente como
consecuencia de una mala circulación o por las malas prácticas clínicas durante los
procedimientos de Venopunción y que puede llegar a ser potencialmente peligrosa en la
medida de que de la zona afectada se desprenda un trombo.
Pueden ser de dos tipos: superficial y profunda siendo estos últimos los menos comunes
pero los más graves y difíciles de manejar.
Se caracterizan por producir: inflamación local en el sitio de punción, dolor en la parte
afectada del cuerpo, enrojecimiento de la piel, calor y sensibilidad sobre la vena.
CLASIFICACIÓN DE LA FLEBITIS DE ACUERDO A LA ETIOLOGÍA
Flebitis Mecánica: Su aparición es dentro de las primeras 12 horas, es una irritación de la
íntima de la vena, en el sitio de punción, causada por el contacto con el material del catéter o
aguja y la inmovilización.
Flebitis Química: Se produce de manera inmediata, es una irritación del endotelio vascular
originado por el contacto con soluciones hipertónicas o soluciones utilizadas durante la
desinfección del área de punción.
Flebitis Bacteriana: Se evidencia después de las 72 horas. Inflamación originada por
cualquier tipo de microorganismo, generalmente causada por la falta de aplicación de una
adecuada técnica a séptica.
CLASIFICACIÓN DE LA FLEBITIS DE ACUERDO A LAS CARACTERÍSTICAS CLÍNICAS

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 25 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
CLASIFICACIÓN CARACTERISTICAS
0 No hay síntomas clínicos
1
Eritema, con o sin dolor. Edema puede o no estar presente. No hay
formación de estrías. No hay cordón venoso palpable
2
Eritema, con o sin dolor. Edema puede o no estar presente.
Formación de estrías. No hay cordón venoso palpable.
3
Eritema, con o sin dolor. Edema puede o no estar presente.
Formación de estrías. Cordón venoso palpable.
Trombosis: Se desarrolla trombos en el área de entrada de la aguja en la pared vascular y
se manifiesta después de que éste ha sido extraído; es asintomática o moderadamente
dolorosa.
Tromboflebitis: Habitualmente está acompañada de fiebre, malestar general y leucocitosis
que puede indicar compromiso bacteriano. Los síntomas agudos se manifiestan en pocos
días pero la hipersensibilidad local puede perdurar por varias semanas, produciendo la
formación de un cordón venoso no doloroso; este cuadro puede evolucionar a una
tromboflebitis supurativa evidenciado por la salida de material purulento del sitio.
Técnicas seguras para minimizar los riesgos de aparición de flebitis como una
complicación derivada del procedimiento.
PASOS A SEGUIR
• Cumplir con lo establecido en el procedimiento de laboratorio en lo referente a lo
recepción e identificación del paciente y de los dispositivos médicos a utilizar.
• Lavado de manos antes de realizar el procedimiento de acuerdo al protocolo
institucional
• Aplicación de técnica aséptica en la zona elegida para la venopunción. Y verificando
que antes de la puncion la solución aplicada haya secado completamente
• No uso de joyas en manos (pulseras, anillos, reloj)
• Uñas cortas y sin esmalte
• Aplicación de normas de bioseguridad. Todas las punciones venosas deben realizarse
con guantes.
• Manejo correcto de residuos hospitalarios

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 26 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
• Se deben elegir la aguja de menor calibre con respecto a la vena, que cumpla con el
objetivo de la punción de modo que se evite trauma o irritación local.
• Elija la vena de mejor calibre y acorde con la aguja a utilizar.
• La piel del sitio de punción debe estar intacta, sin rastros de eritemas, irritaciones y/o
escoriaciones.
• De preferencia se deben utilizar las venas de las extremidades superiores
Fosa antecubital: Vena basílica (de gran calibre, fácil visualización y móvil), cefálica (de
gran calibre y fácil acceso) y mediana (se originan en la palma de la mano y desembocan en
la basílica o mediana cubital).
Antebrazo: Vena radial superficial, vena cubital superficial y mediana.
Dorso de la mano: Metacarpianas (fáciles de ver y palpar, primera elección en pediatría, no
se recomienda en ancianos).
Lactantes: las venas a canalizar de preferencia son: Metacarpianas, Fosa antecubital,
Safena, Arco dorsal de los miembros inferiores

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 27 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
18. DESCRIPCIÓN TOMA DE MUESTRA POR EXAMEN
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA CONDICIONES DEL PACIENTE RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
MANUAL DE TOMA, MANIPULACIÓN Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS
Ayuno estricto de 10 a 12 horas, no
haber ingerido alcolhol ni haber fumado
mínimo durante 24 horas anteriores. En
este lapso de tiempo el paciente debe
permanecer en reposo y sin consumir
ningun alimento.
Medicamentos que intefieren: Ácido
ascorbico (dejar de usarlo 24 horas
antes del examen).
Pacientes diabéticos en uso continuado
de clorpropamida pueden desarrolar
hipoglicemias importantes que son
dificiles de corregir.
Valores de glucosa basal permitidos
para dar cargas de glucosa:
110-125 mg/dL
*A toda paciente materna con orden
médica de curva de glicemia, se le
toma muestra basal, se le suministra
100 g de glucosa en 300 mL de agua y
se le toman muestras a las 2 horas y 3
horas postcarga.
* En tamizaje semana 24 -26 de
gestación se le suministra 50 g de
glucosa en 300 mL de agua y a la hora
se le toma la 2 muestra.
Paciente adulto:
*Se toma la muestra en ayunas.
*Se disuelve 75 g de glucosa en 300
mL de agua.
*Se le da a tomar al paciente y se
empieza a contar el tiempo, a partir del
momento que termine de tomar el líquido
se toma cada hora hasta ajustar el
tiempo que pide el médico, de 2 o 3
horas.
En menores de 12 años o personas
con menos de 30 kg de peso:
Suministrar 1,75 gr de dextrosa por
cada Kg. de peso y disolver en 250 mL
de agua.
Glucosa
Prueba de
Tolerancia Oral
a la Glucosa
Curva de
Tolerancia a la
Glucosa
Suero
Tubo tapa
amarilla o roja
Cantidad de
muestra
Adultos: 5 mL
de sangre.
Pediatría:
3 mL
de sangre.
Neonatos:
3 mL
de sangre.
La punción debe
ser realizada
en condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del mismo
brazo donde
se le esté
aplicandto líquidos
al paciente.
Conservación
después de la
centrifugación:
Pueden permanecer a
temperatura ambiente
de 22°C a 25 °C por
8 horas.
Refrigerar de 2 °C
a 8 °C hasta
por 3 días.
Congelar a -20 °C
de 3 a 6 meses.
Transporte:
La muestra debe ser
transportada en
posición vertical en el
menor tiempo posible y
en nevera para conservar
la integridad de la muestra,
así como para evitar
accidentes a la persona
que la transporta.
ver protocolo de
embalaje, remisión y
transporte de muestras
biológicas y material
probatorio lab. clinico y
servicio transfusional.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 28 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Conservación después
de la
centrifugación:
Puede permanecer a
temperatura ambiente de
22 °C a 25 °C por 8
horas.
Refrigerar de 2 °C a 8 °C
hasta por 3 días. Congelar
a
-20 °C de 3 a 6 días,
según analito.
La creatinina es estable 7
dias entre 2-8 °C.
Para analitos fotosensibles
es importante evitar la
exposición a la luz,
protegiendo los tubos con
papel carbón o papel
aluminio.
Transporte:
La muestra debe ser
transportada en posición
vertical en el menor
tiempo posible y en
nevera para conservar la
integridad de la muestra,
accidetes a la persona que
la transporta.
ver protocolo de
probatorio lab. clinico y
Ácido úrico
Albúmina
Bilirrubina
Total
Billirubina
Directa
Creatinina
Nitrogeno
ureico
Proteinas
totales
PCR
RA-TEST
Astos
VIH
Gravindez
Hepatitis B
(Prueba
rápida)
.
Suero
No se requiere ayuno. No
haber bebido alcohol o
fumado por 24 horas.
En bilirrubinas los
resultados se ven
alterados en pacientes
sometidos a terapia y
sueros hemolizados.
El ácido úrico aumenta con
el estrés, estados de
ayuno prolongado y
aumento de peso corporal.
Niveles elevados de
vitamina C produce
interferencia-
El ejercicio físico, el uso
prolongado del torniquete
aumenta el valor de las
proteínas, sueoros
hemolizados provocan
valores falsamente
elevados.
No usar suero con resto de
fibrina o altamente
hemolizados, lipémicos
para análisis de PCR.
Tubo tapa
amarilla o roja.
Adultos: 5 ml
de sangre.
Pediatría: 3 ml
de sangre.
Neonatos: 3 ml
de sangre.
La
puncióndebe
ser realizada
en
condiciones
asépticas y
por punción
venosa, no se
debe sangrar
del mismo
brazo donde
se le esté
aplicando
líquidos al
paciente.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 29 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Conservación
después de la
centrifugación
pueden permanecer
a temperatura
ambiente de 22 °C
a 25 °C por 8 horas.
Refrigerar de 2 °C a
8 °C hasta por 3
días. Congelar a
-20 °C de 3 a 6
días, según analito.
Solo para el
colesterol HDL no
se recomienda
conservar la muestra
a temperatura
ambiente.
Transporte:
La muestra debe
ser transportada
en posición
vertical en el
menor tiempo
posible y en nevera
para conservar la
integridad de la
muestra, así como
para evitar accidetes
a la persona que la
transporta.
ver protocolo de
embalaje, remisión
y trasnporte de
muestras
biológicas y
material probatorio
lab. clinivo y
servicio
transfusional.
Perfil Lípidico:
Colesterol Total
Colesterol HDL
Colesterol LDL
Triglicéridos
Suero
Ayuno estricto de 12 a 14 horas.
No haber bebido alcohol o
Tubo tapa
amarilla o roja
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
3 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml
de sangre.
La punción debe
ser realizada en
condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del
mismo brazo
donde se le esté
aplicando líquidos
al paciente

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 30 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES DE
RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Amilasa
Fostasa alcalina
GOT
GPT
CK Total
CKMB
Troponina
Cualitativa
LDH
EXAMENES
ESPECIALES
Gamma glutamil
transferasa
Fostasa ácida
total
Fostasa ácida
prostática
Conservación
después de la
centrifugación:
Pueden permanecer
a temperatura
ambiente de 22 °C a
25 °C por 8 horas.
Refrigerar de 2 °C a
8 °C hasta por 3 días.
Congelar a
-20 °C de 3 a 6 días,
según analito.
En cuanto a la
Fosfatasa alcalina, la
muestra se debe
procesar en 24 horas
y no se debe
refrigerar. Las
fosfatasas ácidas
totales y prostáticas
se deben mantener lo
menos posible a
y se deben refrigerar
de 2 a 8 °C.
Transporte:
La muestra debe ser
transportada en
posición vertical en
el menor tiempo
posible y en nevera
para conservar la
integridad de la
muestra, así como
para evitar accidetes a
la persona que la
transporta.
ver protocolo de
transporte de
muestras biológicas
y material probatorio
lab. clinivo y servicio
transfusional.
Suero
No se requiere ayuno. No
haber bebido alcohol o
El ejercicio aumenta la CK
total, su fracción MB y la
LDH. El alcohol afecta las
enzimas hepáticas.
Tubo tapa
amarilla o roja
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
3 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml
de sangre.
La punción
debe
ser realizada
en condiciones
asépticas y por
punción
venosa, no se
debe sangrar
del mismo
brazo donde se
le esté
aplicando
líquidos al
paciente.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 31 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Conservación después
de la
centrifugación:
Pueden permanecer a
temperatura ambiente de 22
°C a 25 °C por 8 horas.
Refrigerar de 2 °C a 8 °C
hasta por 3 días. Congelar a
-20 °C de 3 a 6 días, según
analito.
Se debe tener en cuenta
que el calcio y el magnesio
se deben procesar antes de
4 horas o conservarlos
refigerados ( 2 °C a 8 °C)
donde son estables por 7
días y en congelación hasta
3 meses.
Transporte:
La muestra debe ser
tiempo posible y en nevera
para conservar la integridad
de la muestra, así como
para evitar accidentes a la
persona que la transporta.
ver protocolo de embalaje,
remisión y transporte de
muestras biológicas y
material probatorio lab.
clinico y servicio
transfusional.
Cloro
Potasio
Sodio
Suero sin
Hemólisis
No requiere ayuno y se debe
tener en cuenta que el
ejercicio disminuye los
niveles de hierro en el
organismo.
Tubo tapa
amarilla o roja.
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
3 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml
de sangre.
La punción
debe
ser realizada
en condiciones
asépticas y por
punción
venosa, no se
debe sangrar
del mismo
brazo donde
se le esté
aplicando
líquidos al
paciente.
El potasio no
se procesa en
suero
hemolizado.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 32 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
ESPECIALES
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y TRANSPORTE
Calcio
Magnesio
Hierro
Fosforo
Suero libre
de hemólisis
No requiere ayuno y se debe
tener en cuenta que el ejercicio
disminuye los niveles de hierro
en el organismo.
No usar torniquete
Datos clínicos del paciente
Tubo seco
(tapa amarilla o
roja)
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
5 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml de
sangre.
La punción debe
ser realizada en
condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del mismo
brazo donde se le
esté aplicando
líquidos al
paciente.
Conservación después de la
centrifugación:
Pueden permanecer a temperatura
ambiente de 22 °C a 25 °C por 8
horas.
Refrigerar de 2 °C a 8 °C hasta por 3
días. Congelar a
-20 °C de 3 a 6 días, según analito.
Se debe tener en cuenta que el calcio
y el magnesio se deben procesar
antes de 4 horas o conservarlos
refigerados ( 2 °C a 8 °C) donde son
estables por 2 días y en congelación
hasta 3 meses.
Transporte:
La muestra debe ser transportada en
posición vertical en el menor tiempo
posible y en nevera para conservar la
integridad de la muestra, así como
para evitar accidetes a la persona que
la transporta.
ver protocolo de embalaje, remisión
y transporte de muestras biológicas
y material probatorio lab. clinico y

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 33 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Conservación
Debe analizarse lo mas
pronto posible, de lo
contrario mantener en
refrigeración de 2 a 8
°C.
Transporte:
La muestra debe ser
transporta en posición
tiempo posible y en
nevera para conservar
la integridad de la
muestra, así como
para evitar accidetes a
la persona que la
transporta.
ver protocolo de
transporte de
material probatorio
lab. clinico y servicio
transfusional.
Citoquimico
líquidos
corporales
LDH
Glucosa
Proteinas
totales
Líquido
cefalorraquid
eo
Líquido
Pleural
Líquido
Ascitico
Líquido
Peritoneal
Líquido
Pericárdico
Líquido
Sinovial
No requiere ninguna condición
especial.
Tubo seco
esteril
En el paciente
adulto y
pediatríco 5 ml,
neonatos 3.0
ml.
La punción
debe
ser realizada en
condiciones
asépticas.
Es tomado por
el
médico en el
servicio.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 34 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
ESPECIALES
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
Tiempo de
Protombrina
Tiempo parcial de
tromboplastina
activada PTT
Tiempo de
Trombina
Fibrinógeno
Protíena C de la
Coagulación
Anticoagulante
Lúpico
Factor VIII de la
Coagulación
Dimero D
Plasma
Citratado
No tomar medicamentos el día
anterior como salicilatos,
anticoagulantes como la
heparina y warfarina producen
aumento en los productos de
degradación.
Tubo citratado
(Tapa Azul)
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
5 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml de
sangre.
La punción debe
ser realizada en
condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del mismo
brazo donde se le
esté aplicando
líquidos al
paciente.
Conservación después de la
centrifugación:
la muestra una vez a sido tomada
debe ser envíada al laboratorio en
menos de 1 hora. Debe ser
centrifugada inmediatamente.
Después de centrifugada la muestra
se debe guardar el plasma en tubo
plástico asi: 2 a 8°C por 4 horas, -20 °
C 2 semanas
Transporte:
la transporta.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 35 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
Gases Arteriales
Sangre
Arterial
No requiere ayuno. El paciente
debe estar estable y libre de
estress.
Jeringa plástica
heparinizada
con tapón.
Jeringa de 1 ml se
requiere 0,5 ml
para adultos y 0,3
para niños.
Ver anexo 1. Test
de Allen.
Conservación
Después de tomada la muestra se
coloca inmediatamente en un
recipiente con pila de gel congelada.
Transporte:
frio en el menor tiempo posible y en
nevera para conservar la integridad de
la muestra, así como para evitar
accidetes a la persona que la
transporta.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 36 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
CANTIDAD DE LA
MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Grupo
sanguineo
RH
Cooms Directo
Rastreo de
Anticuerpos
Pruebas de
Compatibilidad
Examenes
especiales
Hemoglobina
Glicosilada
Sangre con
EDTA
No requiere ayuno. El paciente
debe estar estabale y libre de
estrés. Se utilizan tubos
con EDTA
(Tapa lila)
Para adultos se utiliza
4.5 ml, para pediatria
3.0 ml y en neonatos
0.5 ml, teniendo en
cuenta la proporción
1:9 en relación
anticoagulante-
sangre.
La punción debe
ser realizada
en condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del mismo
brazo donde
se le esté
aplicandto líquidos
al paciente.
Conservación :
Pueden permanecer a
máximo 6 horas, en
caso de requerir más
tiempo se pueden
refrigerar de 2 °C
a 8 °C por 48 horas.
Hemoglobina
Glicosilada: 8 días
refrigerada 2 a 8°C.
.
Transporte:
La muestra debe ser
transportada en
en nevera para
conservar la integridad
de la muestra, así
como para evitar
accidetes a la persona
que la transporta.
ver protocolo de
trasnporte de
material probatorio
transfusional.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 37 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
Conservación:
Después de la toma
Las muestras deben ser
conservadas a temperatura
ambiente máximo por 2
horas, en caso de requerir
más tiempo se pueden
guardar en refrigeración de
2 a 8 °C.
Los alcoholes se conservan
a temperatura ambiente por
24 horas y de 2 a 8 °C por
8 días.
Transporte:
La muestra debe ser
vertical en el menor tiempo
posible y en nevera para
conservar la integridad de
la muestra, asi como para
evitar accidentes a la
Ver protocolo de
embalaje,remisión y
probatorio lab clinico y
No requiere condiciones especiales.
Lo ideal es hacerse en el momento
en que el paciente presenta los
signos de intoxicación aguda.
MANUAL TOMA DE MUESTRAS
EXÁMENES MUESTRA CONDICIONES DEL PACIENTE
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
Tubo con Fluoruro,
tapa gris
4,5 ml de
sangre para 0,5
ml de
anticoagulante
Toma de muestra:
La punción debe
ser tomada en
condiciones
asépticas y por
punción venosa.
Hay que tener
presente que la
asepsia para la
toma de la muestra
no debe hacerse
con alcohol
antiséptico, solo
agua destilada o
solución salina.
Examen directo
con KOH al 10
%
Examen directo
con tinta china
Cultivo de
micobacterias
Coloración de
Zielh Neelsen
Esputo
Debe ser la primera muestra de la
mañana previo aseo bucal. Se debe
tapar el frasco entre una y otra
expectoración para evitar
contaminación.
Frasco esteríl de
boca ancha,
transparente y tapa
rosca.
La mayor
cantidad de
muestra que
pueda recoger
el paciente.
Toma de muestra:
Inspirar
profundamente
llenando sus
pulmones de aire
tanto sea posible.
Retener el aire un
momento
Expulsar luego la
expectoración con
esfuerzo de tos.
Recoger el esputo
producido dentro
del envase.
Tapar el frasco y
lavar las manos con
agua y jabón.
Alcoholemia
Alcohol Etílico
Alcohol Metílico
Sangre con
Fluoruro de
sodio o de
potasio
Conservación:
Llevar al laboratorio dentro
de las 2 horas siguientes a
la recolección.
En caso de no ser
procesada inmediatamente
conservar a 4°C no más de
24 horas.
Transporte:
La muestra debe ser
Ver protocolo de

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 38 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
ESPECIALES
CANTIDA
D DE LA
MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Pruebas de función Tiroidea:
Hormona tiroidea estimulante TSH
T3 Total
T3 Libre
T4 Total
Hormona paratiroidea
(Paratohormona)
Reproductivas:
Hormona Foliculo Estimulante
FSH
Hormona Luteinizante
Prolactina
Progesterona
Hormona Gonadotripina Corionica
La punción debe
ser realizada
en condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del
mismo
brazo donde
se le esté
aplicandto
líquidos
al paciente.
Conservación para el
suero después de la
centrifugación
Refrigeración de 2 a 8 °C
Estabilidad: Favor preguntar
en el laboratorio Clínico.
Transporte:
La muestra debe ser
transporta en posición vertical
en el menor tiempo posible y
en nevera para conservar la
integridad de la muestra, así
como para evitar accidetes a
la persona que la transporta.
Conservación de la
Paratohormona después de
la toma la muestra
Debe permanecer en posición
horizontal en agua con hielo.
Después de la centrifgación:
El plasma separado puede
ser conservado en
congelación a -20 °C por 1
mes.
Transporte :
debe ser frío, en posición
vertical en nevera y en el
menor tiempo posible.
remisión y trasnsoprte de
material probatorio lab.
clinico y servicio
transfusional.
Humana (BHCH)
Estradiol
Otras:
Cortisol
Insulina
Tiroglobulina
Marcadoros Tumorales:
PSA Total
AFP
CEA
Ca 15.3
CEA 125
Ca 19.9
Drogas terapeuticas: Ácido
Valproico, Carbamazepina
Suero libre de
hemólisis y
lipemia
Plasma EDTA
sólo para:
(Paratohorm
ona)
Se requiere ayuno máximo de 12
horas
T3, T4 libre y total no requieren
ayuno, tomar antes de las 11:0 am
Para la extracción de la muestra
basal para medir los niveles de
prolactina en suero debe ser dos
horas después de levantarse,
colectando en una sola muestra,
excepto en casos en que el
médico solicite un pool de suero.
En estos casos después de
extraer la primera muestra serán
recolectadas la segunda y tercera
con intervalos de 30 minutos.
Para la extracción de Cortisol en
suero se debe tomar la muestra a
las 8:00 am y 4:00 pm.
No ingerir bebidas alcohólicas 72
horas previas al examen.
PSA Antígeno: No tomar si en los
últimas 72 horas se ha realizado
alguna manipulación prostática
previa. No prácticar deportes 48
horas antes. No haber tenido
relaciones sexuales 3 días antes
de la toma de la muestra.
Insulina: Tomar antes de las
11:00 am.
Ácido Valproico: Relacionar
fecha, dosis, hora, vía de
administración y diagnóstico del
paciente.
Carbamazepina: Tomar la
muestra mínimo 8 horas después
de la última dosis. Relacionar
fecha, dosis, hora, vía de
administración y diagnóstico del
paciente.
Tubo seco (tapa
amarilla o roja)
Paratohormona
se utiliza con
tubo EDTA
(Tapa lila).
Suero: 5 ml
Plasma: 5
ml

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 39 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
ESPECIALES
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
Vitamina B12
Acido Fólico
Suero
Datos clínicos del paciente.
Tubo seco
(Tapa amarilla o
roja)
Suero: 5 ml
Libre de hemólisis
Protegida de la luz
directa
La punción debe
ser realizada en
condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del mismo
brazo donde se le
esté aplicando
líquidos al
paciente.
Conservación
La muestra de suero para Vit B12
despues de centrifugada es estable a
temperatura ambiente 15-25°C: 2
días
Refrigerada 2-8°C: 5 dias
Congelada -20°C: 2 meses
La muestra de Acido Fólico es
estable después de centrifugada
refrigerada 2-8°C: 5 días
Transporte:
la transporta.
ver protocolo de embalaje, remisión y
transporte de muestras biológicas y
material probatorio lab. clinico y

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 40 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
ESPECIALES
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Carga Viral
Hepatitis
VIH Carga Viral
Citomegalovirus
Carga Viral
Plasma con
EDTA
VIH Carga Viral:Tomar la
muestra antes de iniciar
tratamiento retroviral, no
haber presentado episodios
gripales en la 4 últimas
semanas, no haber sido
vacunado 4 semanas antes
de la toma de la muestra, no
habe consumido licor y/o
sustancias psicoactivas 72
horas antes, no realizar
ejercicio físico 48 horas
antes, no haberse desvelado
la noche anterior.
Demás pruebas los datos
clínicos del paciente.
Tubo con
EDTA (Tapa
lila) Sangre: 4.5 ml
Citomegalovirus
Herpes
Toxoplasma
IgG e IgM
Leptospira
Dengue
Suero libre
de hemólisis
Datos clínicos del paciente Tubo Seco
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
5 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml
de sangre.
La punción
debe
ser realizada
en condiciones
asépticas y por
punción
venosa,
no se debe
sangrar del
mismo
brazo donde
se le esté
aplicandto
líquidos
al paciente.
Conservación
Para carga viral CMV
plasma refrigerado
de 2 a 8 °C por 5
días.
Para carga viral VIH,
plasma refrigerado
de 2 a 8 °C por 6
días.
El plasma congelado
dura 2 meses.
Ver protocolo de
transporte de
transfusional.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 41 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
Troponina
Cuantativa
Sangre con
EDTA
Datos clínicos del paciente. Tubo con EDTA
(Tapa lila)
Adultos:
5 ml
de sangre.
Pediatría:
5 ml de sangre.
Neonatos: 3 ml de
sangre.
La punción debe
ser realizada en
condiciones
asépticas y por
punción venosa,
no se debe
sangrar del mismo
brazo donde se le
esté aplicando
líquidos al
paciente.
Conservación
Refrigerada 2-8°C: 5 dias
Transporte:
frio en el menor tiempo posible y en
nevera para conservar la integridad de
la muestra, así como para evitar
accidetes a la persona que la
transporta.
muestras biológicas y material
probatorio lab. clinico y servicio
transfusional.
Recuento de
Eosinófilos Moco Nasal
No requiere estar en ayunas,
debe tomarse la muestra
especialmente en horas de la
mañana.
Lámina
portaobjetos
Cantidad
adecuada
2 extendidos en
forma circular.
Tomar 2
aplicadores e
introducir cada
uno en cada fosa
nasal haciendo
una pequeña y
suave rotación.
Realizar 2 láminas
una para fosa
nasal izquierda y
otra para fosa
nasal derecha.
Conservación:
Las placas se conservan una vez son
extendidas por varios días, deben
colorearse para preservarlas por más
tiempo si hubiere necesidad.
Transporte
La muestra debe ser transportada
directamente en la lámina y colocando
las láminas por separado con la parte
de la muestra hacia arriba. No colocar
papel para cubrir la placa.
Ver protocolo de embalaje, remisión

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 42 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
Conservación
Las placas se conservan
una vez son extendidas por
varios dias, deben
colorearse para
preservalrlas por mas
tiempo.
Transporte:
Esta muestra es
transportada directamente
en la placa donde
inicialmente se hizo el
extendido. El tranporte se
realiza colocando las
placas en forma separada,
con la parte que tiene la
muestra hacia arriba. No
colocar papel no otra placa
para cubrirla.
Ver protocolo de
Directo de
Leishmania
Frotis por
raspado la
lesión
La muestra debe tomarse previa
limpieza de la lesión con solución
salina.
Permite observar al microscopio
amastigotes de Leishmania spp.
Presentes en la lesión, los cuales
varían según el tiempo de evolución
y la forma clinica de la enfermedad.
Su sensibilidad varia del 32,7
Lámina porta
objetos
Se sugiere una
cantiadad
adecuada
Previa isquemia del
área tomar del
borde de la lesión
linfa con el borde
romo de la lanceta.
Orina
No requiere estar en ayunas, debe
tomarse la muestra especialmente
en horas de la mañana.
La muestra mas representativa es la
primera orina de la mañana, pero
esta puede ser recogida en cualquier
momento.
En el caso de las mujeres se debe
tomar tres días después de la
menstruación.
Frasco Recolector
plástico
Bolsa plastica para
niños, lactantes y
neonatos.
Se sugiere una
cantiadad de
40 ml.
Lave los genitales
con jabón y
abundante agua.
Secar muy bien con
un paño limpio.
Descarte la primera
parte de la micción
de orina, recoja la
segunda parte
directamente en el
recipiente y
descarte la última
parte. recoger la
muestra
directamente en un
envase esteríl, de
plástico con tapa
rosca.
Enviar
inmediatamente al
laboratorio. sino se
puede refrigerar la
orina hasta por 2
horas.
MANUAL TOMA DE MUESTRAS
EXÁMENES MUESTRA CONDICIONES DEL PACIENTE
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
Conservación
Se debe procesar antes de
1 hora a T° ambiente o
guardarla en refrigeración
de 2 a 8C° por 6 horas.
Transporte:
La muestra debe ser
Ver protocolo de
Parcial de
Orina
Urobilinógeno
Glucosa

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 43 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE LA
MUESTRA
TOMA DE LA MUESTRA CONSERVACIÓN Y TRANSPORTE
Hemocultivo Sangre
Frasco con
medio de cultivo
Frasco de volumen
35 ml de medio de
cultivo: adicionar 3,5
ml de sangre
Frasco de volumen
20 ml de medio de
cultivo: adicionar 2
ml
Frasco de 30 ml
método
colorimétrico con
resinas: 8-10 ml de
sangre
Frasco de 25 ml
método
colorimétrico con
resinas: 1-3 ml de
sangre
Seleccionar la vena
adecuada, usar guantes
estériles.
Desinfectar con solución
alcohólica de Iodo toda la
zona seleccionada. Colocar
torniquete, tomar la
muestra con jeringa estéril
desechable. Usar mechero.
Limpiar el tapón del frasco
de hemocultivo con alcohol
iodado, con la jeringa en
posición vertical hacer
cambio de aguja y penetrar
el tapón e inocluar
rápidamente la muestra.
Retirar la aguja y mezclar
suavemente la muestra,
incubar a 37 °C.
Conservación
Incubación 37°C por 7 días
Transporte:
la transporta.
Ver protocolo de embalaje,
muestras biológicas y material
probatorio lab. clinico y servicio
transfusional.
Espermograma Semen
Abstinencia sexual mínimo
cuatro días y máximo siete días.
No ingerir alcohol 3 días antes,
no debe tomarse la muestra con
lubricantes, preservativos ni
coito interrrumpido.
Indicado para control de
vasectomía, fertilidad y traumas.
Frasco limpio
boca ancha
(Recolector de
orina)
Se debe recoger el
total del eyaculado
Hacer lavado del área
genital, secarse bien
incluidas las manos.
Proceder a masturbarse
teniendo cerca el envase
de manera que no se
derrame o caiga afuera
parte de la muestra.
La muestra debe ser
tomada en el laboratorio
clínico (Baño toma de
muestras)
Conservación:
Después de recibida la muestra debe
incubarse a 37°C para su análisis.
Transporte
la transporta.
Ver protocolo de embalaje, remisión

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 44 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
ESPECIALES
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Examen con KOH
Tinta China
Cultivo para
Micobacterias
Cultivo para
gérmenes
comunes
ADA
Adenosin
deaminasa
Liquido
Cefalorraquideo
No se requiere ninguna
condición especial
Tubo seco
esteril
5 ml para adulto
3 ml pediátrico.
El médico debe
realizar la punción
guardando las
normas de
bioseguridad y
esterilidad.
Conservación:
Se puede refrigerar a 4
°C por 12 horas.
ADA: Congelada a
-20°C: 2 meses.
Transporte:
La muestra debe ser
transportada en
en nevera para
conservar la integridad
de la muestra, así como
para evitar accidentes a
la persona que la
transporta.
ver protocolo de
trasnporte de muestras
probatorio lab. clinivo
y servicio
transfusional.

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 45 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
MUESTRA
CONDICIONES DEL
PACIENTE
RECIPIENTE
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Examen con
KOH
Cultivo para
Micobacterias
Cultivo para
germenes
comunes
Liquido
Sinovial
No se requiere
ninguna condición
especial
Tubo esteril
5 ml para adulto
y 3 ml pediátrico.
El médico debe
realizar la punción
guardando las
normas de
bioseguridad y
esterilidad.
Conservación:
Se puede refrigerar a 4
°C por 12 horas.
Transporte:
La muestra debe ser
tiempo posible y en
nevera para conservar la
integridad de la muestra,
accidetes a la persona
que la transporta.
ver protocolo de
trasnporte de muestras
probatorio lab. clinivo y

TRANSFUSIONAL
Código: M-LC-MA-02
Versión: 2.0
28/09/2018
Página 46 de 75
_______________________________________________________________________________________________________________
COPIA CONTROLADA
HOSPITAL
HOSPITAL
EXÁMENES
DE RUTINA
CANTIDAD DE
LA MUESTRA
TOMA DE LA
MUESTRA
CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE
Materia fecal
Coprológico y Coprocultivo:
No requiere ninguna condición
especial.
Coproscópico: Dieta previa 3
días antes, no consumir
productos cárnicos, embutidos,
carnes rojas, morcilla, vino,
ciruela, b´rocoli, coliflor, uvas,
bananos, remolacha ni
suplementos de vitamina C.
Frasco estéril,
boca ancha, tapa
rosca.
Sólida: 1 gramo
Líquida: 5 ml
Coprológico
Coproscópico
Coproscópico
por
concentración
Sangre oculta
Azucares
reductores
Coprocultivo
Recoja la muestra
espontaneamente en un
recipiente estéril de
plástico. La muestra no
debe estar contaminada
con orina. Si se ha
realizado estudio
radiográfico con bario,
debe transcurrir 3 días
para recoger la
muestra.
Tomar la muestra
idealmente en las
primeras horas de la
aparición de los
sintomas, en lo posible
sin tratamiento
antibiótico. Si la
muestra se toma con
hisopo estéril debe
tenerse cuidado en
introducirlo hasta
soprepasar el esfinter
anal, rotarlo
cuidadosamente y
luego retirarlo para
colocarlo en el tubo con
tapa rosca con el medio
Cary blair. Entregar la
muestra al laboratorio
en un tiempo menor de
2 horas, contando
desde el momento de
la recogida.
Conservación:
Llevar la muestra
inmediatamente al
laboratorio para ser
procesada o en su
defecto guardar en
refrigeración de 4-8
°C.
Coprocultivo:
Refrigeración 2-8°C: 6
horas
Hasta por 8 días en el
medio Cary Blair, en
frasco estéril debe ser
entregada
inmediatamente al
laboratorio para su
cultivo.
Transporte:
La muestra debe ser
tiempo posible y en
nevera para conservar
la integridad de la
muestra, así como
para evitar accidetnes
a la persona que la
transporta.
ver protocolo de
trasnporte de
lab. clinivo y servicio
transfusional.

MA-02. MANUAL DE TOMA, MANIPULACION, CONSERVACION DE MUESTRAS.pdf

MA-02. MANUAL DE TOMA, MANIPULACION, CONSERVACION DE MUESTRAS.pdf

Recomendados

Recomendados

Más contenido relacionado

La actualidad más candente

La actualidad más candente (20)

Similar a MA-02. MANUAL DE TOMA, MANIPULACION, CONSERVACION DE MUESTRAS.pdf

Similar a MA-02. MANUAL DE TOMA, MANIPULACION, CONSERVACION DE MUESTRAS.pdf (20)

Último

Último (20)

MA-02. MANUAL DE TOMA, MANIPULACION, CONSERVACION DE MUESTRAS.pdf