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PRUEBAS CRUZADAS
EQUIPO #1
El inmunólogo Karl
Landsteiner descubrió que
la sangre de dos personas
podía ser "compatible" o
"incompatible"
Fueron introducidas por Hektoen en 1907 para
detectar incompatibilidad ABO
Estos métodos se han utilizado desde entonces
para elegir de forma confiable al donador.
La compatibilidad sanguínea
es la posibilidad de mezcla de
sangre sin que se produzcan
trastornos, tales como los
fenómenos de la lisis o de la
aglutinación.
A causa de este fenómeno
biológico en las transfusiones de
sangre no es suficiente con
conocer que la sangre del donante
y la del receptor son del mismo
grupo
P.CRUZADA
Mayor
Prueba mayor Mezcla de
glóbulos rojos del donador
con suero del receptor
Menor
Mezcla suero del donador
con glóbulos rojos del
receptor
Autotestigo
Eritrocitos del receptor
más suero del receptor
• Hemólisis • Aglutinación
Asegurar que
todos los
glóbulos rojos
transfundidos
son
compatibles
con los
anticuerpos
en el plasma
del paciente.
Evitar estimular la
producción de nuevos
anticuerpos contra los
glóbulos rojos en el
receptor, especialmente
anti-Rh D.
Las pruebas
cruzadas y la
búsqueda de
anticuerpos son de
suma importancia,
ya que nos ayudan
a prevenir la
transfusión de
sangre
incompatible, y
proveen al
paciente de
máxima seguridad
y beneficio.
Incluye técnicas que permiten demostrar la
ausencia de anticuerpos regulares e
irregulares de importancia clínica en el
suero del receptor contra eritrocitos del
donador.
Detecta anticuerpos en el suero del receptor,
particularmente cuando se pretende transfundir
sangre total proveniente de un donador con
antecedentes propiciadores de inmunización.
(Embarazos o transfusiones previas).
Con estas pruebas podemos identificar fácilmente
si la sangre es compatible y segura.
3. El autotestigo: Contiene el suero y los eritrocitos del
paciente (AT).
1. Prueba mayor: Contiene el suero del
paciente y eritrocitos del donador (D).
2. Prueba menor: Contiene el
suero del donador y los eritrocitos
del paciente (R).
• Tubos de 13 x 100 mm
• Tubos de 10 x 75 mm
• Solución salina isotónica (0.9%)
• Suero antiglobulina humana
(AGH, «suero de Coombs»)
• Albúmina bovina al 22%
• Incubadora a 37°C
• Centrífuga
 Sangre del donador.
Tomada del segmento
piloto de la bolsa de
transfusión.
 5 a 10 ml de sangre fresca del
paciente (sin anticoagulante).
Realizar una suspensión de
eritrocitos al 5% en solución
salina.
Centrifugar 5
minutos a 3500
rpm los tubos y
separar
completamente el
suero // plasma, de
los eritrocitos del
coagulo.
Centrifugar un minuto.
Buscar
presencia de
hemolisis o
aglutinación.
Centrifugar un minuto.
Buscar
presencia de
hemolisis o
aglutinación.
Incubar 15 minutos.
Centrifugar un minuto.
Realizar 3 lavados a los
eritrocitos.
Decantar tras el último
lavado.
Centrifugar un minuto.
Buscar
presencia de
hemolisis o
aglutinación.
La aglutinación indica incompatibilidad ya que significa que algún Ac del
suero del receptor se ha unido a los hematíes del donante.
La valoración se puede hacer con cruces, o bien se puede hacer una prueba
cruzada titulada empleando diluciones dobles progresivas.
Para diferenciar aloAc de los autoAc se
debe disponer de un autocontrol, y cuando
éste es negativo se sospecha la existencia de
aloAc en una prueba cruzada incompatible.
Los Ac se deben identificar antes de que el
paciente reciba la transfusión.
Si el autocontrol es positivo se sospecha la
presencia de autoAc.
Los aloAc producen reacciones
transfusionales más graves que los autoAc.
La prueba cruzada es compatible si
no hay aglutinación, ya que indica
que no existen aloAc eritrocitarios en
el suero del receptor.
No obstante hay que tener en cuenta
que todas las pruebas de la
antiglobulina negativas deben ser
comprobadas para asegurar que la
técnica se ha realizado correctamente.
Para ello, se añaden hematíes
sensibilizados y lavados (GR control)
a todos los tubos que contienen
resultado negativo.
Si los resultados son correctos los hematíes
control deben ser aglutinados. En cambio si
no se observa aglutinación, la prueba no es
válida y debe repetirse.

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Pruebas cruzadas

  • 1.
  • 3. El inmunólogo Karl Landsteiner descubrió que la sangre de dos personas podía ser "compatible" o "incompatible"
  • 4. Fueron introducidas por Hektoen en 1907 para detectar incompatibilidad ABO Estos métodos se han utilizado desde entonces para elegir de forma confiable al donador.
  • 5. La compatibilidad sanguínea es la posibilidad de mezcla de sangre sin que se produzcan trastornos, tales como los fenómenos de la lisis o de la aglutinación. A causa de este fenómeno biológico en las transfusiones de sangre no es suficiente con conocer que la sangre del donante y la del receptor son del mismo grupo
  • 6.
  • 7.
  • 8.
  • 9. P.CRUZADA Mayor Prueba mayor Mezcla de glóbulos rojos del donador con suero del receptor Menor Mezcla suero del donador con glóbulos rojos del receptor Autotestigo Eritrocitos del receptor más suero del receptor
  • 10. • Hemólisis • Aglutinación
  • 11. Asegurar que todos los glóbulos rojos transfundidos son compatibles con los anticuerpos en el plasma del paciente.
  • 12. Evitar estimular la producción de nuevos anticuerpos contra los glóbulos rojos en el receptor, especialmente anti-Rh D.
  • 13. Las pruebas cruzadas y la búsqueda de anticuerpos son de suma importancia, ya que nos ayudan a prevenir la transfusión de sangre incompatible, y proveen al paciente de máxima seguridad y beneficio.
  • 14. Incluye técnicas que permiten demostrar la ausencia de anticuerpos regulares e irregulares de importancia clínica en el suero del receptor contra eritrocitos del donador.
  • 15. Detecta anticuerpos en el suero del receptor, particularmente cuando se pretende transfundir sangre total proveniente de un donador con antecedentes propiciadores de inmunización. (Embarazos o transfusiones previas). Con estas pruebas podemos identificar fácilmente si la sangre es compatible y segura.
  • 16.
  • 17. 3. El autotestigo: Contiene el suero y los eritrocitos del paciente (AT). 1. Prueba mayor: Contiene el suero del paciente y eritrocitos del donador (D). 2. Prueba menor: Contiene el suero del donador y los eritrocitos del paciente (R).
  • 18. • Tubos de 13 x 100 mm • Tubos de 10 x 75 mm • Solución salina isotónica (0.9%) • Suero antiglobulina humana (AGH, «suero de Coombs») • Albúmina bovina al 22% • Incubadora a 37°C • Centrífuga
  • 19.  Sangre del donador. Tomada del segmento piloto de la bolsa de transfusión.  5 a 10 ml de sangre fresca del paciente (sin anticoagulante).
  • 20. Realizar una suspensión de eritrocitos al 5% en solución salina.
  • 21. Centrifugar 5 minutos a 3500 rpm los tubos y separar completamente el suero // plasma, de los eritrocitos del coagulo.
  • 22.
  • 23.
  • 24.
  • 25. Centrifugar un minuto. Buscar presencia de hemolisis o aglutinación.
  • 26.
  • 27. Centrifugar un minuto. Buscar presencia de hemolisis o aglutinación.
  • 29.
  • 30. Centrifugar un minuto. Realizar 3 lavados a los eritrocitos.
  • 31. Decantar tras el último lavado.
  • 32.
  • 33. Centrifugar un minuto. Buscar presencia de hemolisis o aglutinación.
  • 34.
  • 35. La aglutinación indica incompatibilidad ya que significa que algún Ac del suero del receptor se ha unido a los hematíes del donante. La valoración se puede hacer con cruces, o bien se puede hacer una prueba cruzada titulada empleando diluciones dobles progresivas. Para diferenciar aloAc de los autoAc se debe disponer de un autocontrol, y cuando éste es negativo se sospecha la existencia de aloAc en una prueba cruzada incompatible. Los Ac se deben identificar antes de que el paciente reciba la transfusión. Si el autocontrol es positivo se sospecha la presencia de autoAc. Los aloAc producen reacciones transfusionales más graves que los autoAc.
  • 36. La prueba cruzada es compatible si no hay aglutinación, ya que indica que no existen aloAc eritrocitarios en el suero del receptor. No obstante hay que tener en cuenta que todas las pruebas de la antiglobulina negativas deben ser comprobadas para asegurar que la técnica se ha realizado correctamente. Para ello, se añaden hematíes sensibilizados y lavados (GR control) a todos los tubos que contienen resultado negativo. Si los resultados son correctos los hematíes control deben ser aglutinados. En cambio si no se observa aglutinación, la prueba no es válida y debe repetirse.