Técnica

1. ANTIBIOGRAMA

2. ANTIBIOGRAMA
CONCEPTO: El antibiograma es la
prueba microbiológica que se realiza
para determinar la susceptibilidad
(sensibilidad o resistencia) de una
bacteria a un grupo de antibióticos
in vitro. Se basa en datos
Microbiológicos
Farmacodinámicos

3. CONCEPTOS CLAVES
1.Antibiograma: Técnica in vitro en la cual bajo
determinadas condiciones estandarizadas, un
microorganismos es expuesto a un antimicrobiano,
anotándose el efecto observado tras un período de
incubación.
2.Concentración Mínima Inhibitoria (CIM):
Concentración de un antimicrobiano a la cual se
inhibe el crecimiento de una UFC (unidad
formadora de colonias) de un microorganismo.

4. Conceptos Claves
Categorías Clínicas:
1. Sensible o susceptible (S): El microorganismos es
inhibido cuando se utilizan las concentraciones del
antibiótico recomendado de acuerdo al sitio de
infección.
2. Intermedio (I): La respuesta puede ser menos
predecible que en aislamientos susceptibles. Esta
categoría podría ser eficaz en sitios donde se alcancen
concentraciones altas del antibiótico.
3. Resistente (R): Aislamiento que no son inhibidos por
las concentraciones del antibiótico que se alcanzan
habitualmente en el organismos.

5. OBJETIVOS

6. MÉTODOS - ANTIBIOGRAMA

7. MEDIO DE CULTIVO
 Agar Mueller Hinton.
 pH 7.2 – 7.4

Repartir 60 ml – 70 ml (Placas petri de 150 mm) 25 ml – 30 ml (placa de
Petri de 100 mm), de manera que el grosor del agar en la placasea de 4 mm.

8. Métodos Antibiograma
Difusión: Habitualmente cualitativo. Atendiendo al halo de
inhibición que aparece alrededor del disco, se clasifican los
microorganismos como sensibles (S), intermedios (I) ó
resistentes (R) según sea la eficacia obtenida por el agente
antimicrobiano frente al microorganismo.
Sistema Épsilon- Test: Método de antibiograma por
difusión que en lugar de discos utiliza tiras de papel graduadas
con valores de CIM e impregnadas con un antibiótico en forma
de gradiente de concentración. La intersección del halo de
inhibición con la tira de papel indica la CIM del microorganismo
para dicho antibiótico.

9. MÉTODO DE DIFUSIÓN
PRINCIPIO DEL MÉTODO

10. FLUJOGRAMA DE ANTIBIOGRAMA

12. Inoculación de la placa
Con un Hisopo
estéril en tres
direcciones
inocule toda la
placa (giros de
60º)

13. Aplicación de sensidiscos
separación: los discos
deben de estar
separados 24 mm (del
centro de un
sensidisco al otro más
cercano).
Cantidad: 12
unidades en placas
de 150mm y 5
unidades en placas
se 100mm.
Cultivo en 24 –48
Horas

14. Medición de los halos
Después de incubar
las placas del
antibiograma se
procederá a la
lectura de este.
Se usa una regla y se mide el
radio del halo de inhibición
partiendo de desde donde está el
disco de antibiótico hasta donde
se inhibió el crecimiento.

17. Antibiótico Resistente Intermedia Susceptible
Ampicilina ≤ 13 14 - 16 ≥ 17
Amikacina ≤ 14 15 – 16 ≥ 17
Sulfisoxasol ≤ 12 13 - 16 ≥ 17
Gentamicina ≤ 12 13 – 14 ≥ 15
Cloranfenicol ≤ 12 13 - 17 ≥ 18
Ceftriaxona ≤ 12 14 – 20 ≥ 21
Ciprofloxacin
a
≤ 15 16 - 20 ≥ 21
Tetraciclina ≤ 14 15 - 18 ≥ 19
Acido
Nalidixico
≤ 13 14 – 18 ≥ 19
Estrptomicina ≤ 11 12 – 14 ≥ 15
anamicina ≤ 13 14 - 17 ≥ 18
Trimetroprim/
Sulfametoxas
ol
≤ 10 11 – 15 ≥ 16