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Diagnostico molecular-de-los-linfomas-no-hodgkin-
1. BASES MOLECULARES
DEL CÁNCER
APLICACIÓN A LA PATOLOGÍA
TUMORAL
12 de Enero de 2009
Xátiva (Valencia)
DIAGNÓSTICO
MOLECULAR DE LOS
LINFOMAS NO HODGKIN
Jerónimo Forteza Vila
Jefe de Servicio y Catedrático de Anatomía Patológica
Hospital Clínico Universitario de Santiago
3. Classification of lymphoid neoplasms: the microscope as a
tool for disease discovery.
Jaffe ES, Harris NL, Stein H, Isaacson PG.
Blood (2008) 112: 4384-4499
Elaine Jaffe Nancy Harris Harald Stein Peter G. Isaacson
8. Técnicas moleculares en el
diagnóstico de linfomas
• ¿Es realmente esencial para el diagnóstico?
– En el 90-95% de los casos, la morfología y el fenotipo
son suficientes
HE Bcl2
Linfoma folicular
– Es esencial para el diagnóstico en el 5-10% de los casos
9. Técnicas moleculares y diagnóstico
de linfomas
• ¿Qué cuestiones puede resolver?
– Benignidad vs Malignidad (clonalidad)
• Proliferaciones de células B ambiguas
• Linfomas de células T
• Síndromes linfoproliferativos en pacientes
inmunocomprometidos
– Recaídas vs segundo linfoma (identidad clonal)
– Tipos específicos de linfomas (translocaciones)
10. Técnicas moleculares en linfomas
• Estudios de clonalidad: reordenamientos de
genes codificantes de receptores de
antígenos
• Translocaciones (“clonality markers”)
11. Reordenamiento de genes codificantes
de receptores de antígenos
• Proceso inmunológico
• Generación de variabilidad genética para
obtener receptores diversos y específicos
• Proceso similar en células B y en T (Ig y
TCR)
13. Estudios de clonalidad: Métodos
• Southern blot: “gold standard”
– Necesita buena calidad de ADN (Tejido
congelado)
– Muy laborioso
– Necesidad de material reactivo
• PCR: más práctico
– Permite el uso de material fijado en formol e
incluido en parafina
– Resultados en dos días
– Más sensible
22. Estudios de clonalidad por PCR:
Limitaciones
• Resultados falso negativos
– Degradación del ADN
• Incluir un gen de control interno
– Hipermutación somática del gen IgH
• Linfoma folicular, células plasmáticas neoplásicas
– Abundante población acompañante policlonal
– Reordenamientos inusuales, interferencia con
segmentos translocados,…
23. Estudios de clonalidad por PCR:
Limitaciones
• Resultados falso positivos
– Exceso de sensibilidad
– “Pseudo-clones”: Pobreza de células diana
– Baja resolución en electroforesis (gel de
agarosa)
• Usar poliacrilamida o electroforesis capilar
24. Estudios de clonalidad por PCR:
Limitaciones
• Reordenamientos clonales tanto de los
genes Ig o TCR no es equivalente a
línea B o T.
• Infidelidad de linaje (Linfoma linfoblástico)
• Explansión clonal de células B en linfomas T
(LAI) o viceversa
25. ¡Monoclonalidad no es
sinónimo de malignidad!
- Inmunodepresión
- Reacciones hiperinmunes (infecciones virales)
- Enfermedades autoinmunes
- Enfermedad de Castleman
26. Estudios de clonalidad por PCR:
Estandarización
• BIOMED-2
– PCR Multiplex (estudio de varias regiones en
la misma reacción de PCR)
– Realizable y reproducible
– Linfomas B: 99% monoclonales
– Linfomas T: 94% monoclonales
– Lesiones reactivas: policlonalidad en la
gran mayoría
van Krieken et al. Leukemia (2007) 21: 201-206
39. Ventajas del FISH “split”
• Genes implicados en translocaciones con
diferentes ‘partners’ (MYC, ALK, BCL6)
• No hay falsos positivos virtualmente
– En contraste, señales de fusión falsas son
posibles debido a solapamiento nuclear
• Fácil evaluación
44. Translocación en BCL2
• 90 % de los
linfomas
foliculares
• 30% de los
linfomas B
difusos de
célula grande
Crom 18
bcl-2
Crom 14
Major Breakpoint Region
1 2 C+ C-PCR
IgH
5’ MBR 3’
46. FISH - BCL2: utilidad
• Hiperplasia folicular vs. Linfoma
• Linfoma folicular vs. Otros linfomas de patrón
nodular
• Linfoma B de células grandes: pronóstico (?)
47. t(11;14)
• Linfoma del manto
• Cr. 11: gen Ciclina D1
• Cr. 14: gen IgH
PCR en región MTC
(“Major Translocation Cluster”)
Sólo 50%!
1
2
3
C-C+
50. FISH – CCND1: utilidad
• Linfoma del manto
– Cuando hay problemas con la inmunotinción de
la Ciclina D1 (no debería de haberlos)
• Tricoleucemia
– Recordar que la Ciclina D1 puede ser positiva por
inmunohistoquímica pero negativa por FISH
(clinicopatológicamente es una enfermedad muy
distinta)
51. TRICOLEUCEMIA CD22
- Pancitopenia
- Aspirado seco
- Marcada esplenomegalia
- No hay adenopatías
Sangre periférica
B. Fallini (2007)
52. FISH – Translocaciones en
MALT1
• Pronóstico (Linfoma MALT gástrico)
– No respuesta a los antibióticos
– Probable diseminación
• Detección: algunos RT-PCR; FISH (biopsias
endoscópicas)
• Diagnóstico diferencial
– Infiltrados reactivos
– Otros LNH
53. Linfoma MALT
Isaacson and Spencer Histopathology 1987
“Discovery diseases. MALT lymphoma as a paradigm”
Jaffe ES, et al. Classification of lymphoid neoplasms: the microscope as a tool for
disease discovery. Blood (2008) 112:4384-4399
54. Marshall BJ y Warren JR
(Premios Nobel de Medicina en 2005)
Helicobacter Pilory (Warthin-Starry)
55. Reordenamientos de BCL6
• Gen en 3q27
• Sonda ‘Split’
• Utilidad:
– Linfoma B de células grandes
(¿pronóstico?)
57. Reordenamientos de MYC
• Característico del Linfoma de Burkitt
• Más frecuente: t(8;14)
• ‘Breakpoints’: alta variabilidad (PCR)
• FISH split: lo más útil
58. MORFOLOGÍA Y PATRÓN INMUNOHISTOQUÍMICO EN EL LINFOMA DE BURKITT
CD20
HE
CD10 BCL6
EBER MIB1
59. FISH – Reordenamiento en MYC
• También útil:
– Como marcador de progresión (Aberración
secundaria)
– Para la detección de LBCG con doble
translocación (“double hit”): BCL2 + MYC
61. Linfoma B Difuso de Células Grandes con
reordenamiento de BCL-2 y MYC
(Linfoma de la zona gris)
62. Translocación en ALK
• Usualmente los linfomas anaplásicos portan
ALK split probe
la t(2;5) – ALK/NPM
• Posibilidad de diversos patrones
ALK1
“INMUNOFISH”
63. Técnicas moleculares en el
diagnóstico de linfomas no Hodgkin
• Estudios de clonalidad: PCR
• Translocaciones características: FISH
• Material de rutina (Fijado en formol e
incluido en parafina)
• Técnicas útiles, pero deben ser interpretadas
en el contexto clínicopatológico
64. Dave SS et al. Molecular diagnosis in Burkitt’s lymphoma.
N Engl J Med (2006) 354: 2431-2442