Este documento trata sobre micología. Estudia los hongos, algunos de los cuales son útiles para la industria alimentaria y farmacéutica. También cubre hongos patógenos que pueden causar enfermedades en humanos. Clasifica los hongos y describe sus características morfológicas, ciclo de vida y formas de reproducción. Además, detalla varios tipos de hongos patógenos como los dermatófitos que causan tiña, y hongos intermedios que producen infecciones subcut

1. MICOLOGÍA

2. GENERALIDADES
 La Micología estudia los hongos.
 Unos útiles: industria alimentos, bebidas y fármacos.
 Micología médica - hongos patógenos y oportunistas.
 Schoenlein y Gruby 1839 T. schoenleini, Langebeck C.
álbicans.
 Patógenos causan enfermedades: crónicas
granulomas y rebeldes al tratamiento.
 Micosis adquirida: por infección endógena y exógena.
 M. endógena; hongos de la flora, la enfermedad se
asocia a factores predisponentes: inmunosupresión,
procesos crónicas, debilitantes, terapia antibiótica de
amplio espectro, corticoides.
 M. exógena - hongos del suelo, animales e individuos
infectados transmiten por contacto directo e indirecto.

3. CONCEPTO
 Hongos son eucariontes
 Núcleo con membrana nuclear, retículo
endoplásmico, mitocondrias, aparato
secretor, son aeróbicos y facultativos.
 Secretan enzimas para descomponer
sustratos orgánicos y dar nutrientes
solubles.
 Son inmóviles, la pared celular con
polisacáridos quitina, el material de reserva
es glucógeno.
 Se reproducen sexual y asexualmente por
medio de esporas.

4. CLASIFICACIÓN
 Cuatro clases
 1. Ficomicetos (cigosporas)
 2. Basidiomicetos (basidiosporas)
 3. Ascomicetos (ascosporas)
 4. Deuteromicetos (H. imperfectos).
 Tres primeros hongos perfectos con
reproducción sexual y asexual.
 Deuteromicetos. H imperfectos no demuestran
reproducción sexual. En este grupo se ubican la
mayoría de los hongos patógenos al hombre.

5. MORFOLOGÍA
Hongos:Filamentososy Levaduriformes
 H. Filamentosos (mohos).
 Formado por filamentos ramificados tabicados o no se llaman
Hifas.
 Hifas no tabicadas o cenocíticas el citoplasma es
multinucleado se encuentra en ficomicetos
 La mayoría de hongos poseen hifas tabicadas, cada célula
separada por paredes transversas con agujeros.
 El conjunto de hifas se llama micelio
 puede ser: Micelio aéreo (reproductivo)
 Micelio vegetativo (nutricional).
 En el M. aéreo se forma esporas.
 El M. vegetativo está inmerso en el medio es nutricional.
 Su crecimiento lento 1 a 2 semanas
 Las colonias son algodonosas, velludas, pulverulentas
 Crece en Sabouraud, tem ambiental

6. REPRODUCCIÓN
 Los hongos se reproducen sexual y
asexualmente por esporas.
 Las esporas pueden ser también elementos de
resistencia.
 Las esporas de H. filamentosos nacen del
micelio aéreo, sus características sirven para
identificar a las especies de hongos.
 Las esporas pueden ser sexuales o asexuales.
 Las sexuales se forman por la unión de dos
células progenitoras haploides y las asexuales
se forman directamente de una célula
progenitora diploide (hifas).

7. ESPORAS SEXUALES
 Cigosporas: en los extremos de dos
hifas se forman células haploides de
signo contrario M y F éstas se
fusionan y forman un cigoto.
 Basidiosporas: forma esporas en la
superficie de una estructura llamada
basidio. Lo hongos se llaman
Basidiomicetos.
 Ascosporas: Se forman dentro de
una estructura redonda llamas asca,
los hongos se llaman Ascomicetos.

8. ESPORAS ASEXUALES
 Clamidiosporas: se forman en el trayecto
o extremo de una hifa, engrosa su pared,
se aíslan, son resistentes, y germinan
vegetativamente.
 Conidias: Se forman sobre estructura de
sostén (conidiósporo). Las pequeñas se
llaman microconidias,
 las grandes macroconidias
 Artrosporas: se forma entre dos tabiques.
 Esporangiosporas: se forman dentro de
una célula redonda llamada esporangio.
 Blastospora: Por gemación o brotación
en levaduras, los hongos se llaman
blastomicetos.

9. CLASIFICAICIÓN DE LAS MICOSIS
 Micosis Superficiales
 Hongos superficiales o dermatophytos afectan
piel, pelos y uñas, afecta queratina, frecuentes,
no atentan la vida , daños estéticos, ocupación.
Evolución crónica y rebeldes al tratamiento.
 Micosis Subcutánea
 Afectan piel y tejido celular subcutáneo,
invasión profunda, infecciones raras, evolución
crónica, deformantes, rebeldes al tratamiento.
 Micosis Sistémica
 Poco frecuentes, evolución crónica, afectan
tejidos y órganos profundos, a veces mortales
y rebeldes al tratamiento.
 Micosis Oportunista
 Unos pertenecen a la flora normal (cándidas),
otros provienen del medio ambiente (aspergillus).
Requieren la presencia de factores
predisponentes.

10. HONGOS SUPERFICIALES
Afectan la piel y anexos.
CLASIFICACIÓN
GÉNEROS ESPECIES LOCALIZACIÓN
Trichophyton T. rubrum
T. mentagrophytes
T. tonsurans
T. schoenleini
Piel , pelos y
uñas.
Microsporum M. canis
M. gypseum
piel y pelos
Epidermatophyton E. floccosum piel y uñas
Tricosporum T. hortay
T. giganteum
Pelos
No definidos Malassezia furfur
Pitiros orvicularis
Exophiala wernique
Piel, c uero
cabelludo y piel

11. HONGOS SUPERFICIALES
Morfología
Mayoría filamentosos
Se identifican por tipo y forma de
esporas asexuales (macroconidias
y microconidias).
Cultivo
Temp ambiente, crecen lento de 1 a 3
semanas en agar de saboraud.
Colonias algodonosas, vellosas,
pulverulentas, con pigmentos y
diferentes colores.

12. HONGOS SUPERFICIALES
 Propiedades bioquímicas
 Unas especies fermentan
azucares, producen ureasa y
pigmentos, etc.
 Patogenia
 Hongos transmitidos de humano
a humano llaman antropófilo, de
animal a humano zoó/antropófilo.
 De la tierra a humano geófilo/
antropófilo.

13. CARACTERÍSTICAS CLINICAS
DE LAS DERMATOMICOSIS
ENFERMEDAD LOCALIZACIÓN DATOS CLÍNICOS HONGOS
Tiña corporal Piel lampiña Placas circulares
bordes rojos,
vesículas, escamas,
prurito
M. canis
T. Mentagrophy
Pie de atleta Espacios
interdigitales
Eritema, escamas,
vesículas, prurito,
fisuras, escosor.
T. rubrum
T. mentagrophy
E. Floccosum
Tiña crural Ingle Eritema, escamas,
prurito, etc.
T. rubrum
T. mentagrophit
E. Floccosum
Tiña cefálica Cabello endotrix
Y exotrix.
Placas circulares,
alopesía parcial los
cabellos con
hongos dan
fluorescencia.
M. canis
T. tonsurans.

14. CARACTERÍSTICAS CLINICAS
DE LAS DERMATOMICOSIS
ENFERMEDAD LOCALIZACIÓN DATOS CLÍNICOS HONGOS
Tiña de la barba Pelos de la barba Placas
eritematosas y
edematosas.
T. rubrum
T. mentagrophyt
Onicomicosis uñas Uñas gruesas,
quebradisas,
sin lustre y
mal olor.
T. rubrum
T. mentagrophyt
E. floccosum
Dermatofítides Lados y cara
flexores de los
dedos, palmas, o
cualquier sitio.
Lesiones
pruriginosas,
vesículas
ampulares,
acompañadas de
tiñas de los pies.
No hay hongos
en las lesiones,
puede haber
infección
secundaria por
bacterias.
Dermatófides: lesiones alérgicas a distancia, con vesículas
estériles. Secundario a un foco micótico en otra localización del
cuerpo.

15. OTROS DERMATOPHYTOS
 Malassezia furfur
 Infecta la piel, causa pitiriasis versicolor,
manchas polimorfas y policromáticas.
 Microscopía
 En fresco o azul de metileno presencia de
levaduras, el cultivo es difícil.
 Pitirosporum orvicularis
 Afecta cuero cabelludo, produce la caspa
 Microscopía
 Levaduras.

16. DERMATOMICOSIS O TIÑAS
 TIÑA CORPORIS PIE DE ATLETA
 TIÑA CRURAL TIÑA CEFÁLICA


17. DERMATOMICOSIS - TIÑAS
 TIÑA DE LA BARBA ONICOMICOSIS

18. PITIRIASIS VERSICOLOR

19. DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO
 Muestras
 Raspados de piel (escamas), uñas y
pelos.
 Microscopía
 Las escamas sobre un portaobjetos,
suspender con OHK 20 40%, cubrir
con laminilla, fijar al calor de
mechero. Observar con lente 40x
estructuras como: esporas e hifas
tabicadas o no.
 Cultivo
 La muestra inocular en agar de
saboraud, incubar a 37 oC o a temp
ambiente durante 2 a 6 días las
levaduras y de 1 a 3 semanas las
filamentosas.

20. CULTIVOS
EXAMEN MACROSCÓPICO Y MICROSCÓPICO
 Trichophyton
 Colonia blanca, algodonosa.
 Micelio con hifas tabicadas y
abundantes microconidias.
 T. rubrum
 microconidia piriforme.
 T. mentagrophytes
 pocas macroconidia forma de
mazo
 T. tonsurans
 microconidias claviformes
 T. schoenleini
 Hifas bifurcadas candeleros
fávicos

21. CULTIVOS
Examen Macroscópico y microscópico
 Microsporum
 Colonias blancas amarillentas
algodonosas.
 Micelio con hifas tabicadas y
abundantes macroconidias de
extremo libre puntiagudo.
M. canis macroco extremo curvo,
M. gypseum macroco extremo
recto.
 Epidermatophyton floccosum
 Colonias amarillo verdosas.
 Abundantes macroconidias
piriformes arracimadas y de
extremo libre romo.

22. EPIDEMIOLOGÍAY CONTROL
 Infección por contacto directo de portador a
susceptible.
 La infección en niños es frecuente por
manipulación de animales domésticos.
 La tiña cefálica se adquiere en peluquerías
por el uso de utensilios contaminados.
 El pie de atleta se adquiere en balnearios,
duchas, vestideros públicos.
 CONTROL
 Eesterilización de los instrumentos.
 Tratamiento eficaz de enfermos.
 Higiene de los pies, uso de talco, evitar la
humedad, el calor, usar calzado.

23. HONGOS INTERMEDIOS
 Causan infecciones subcutáneas, viven en el
suelo y vegetales.
 Ingresan traumatismos con astillas, espinas.
 Infectan: dermis, TCS, músculos, huesos, linf.
 Más frecuentes en sitios expuestos: pies,
piernas, brazos, etc.
 Evolución lenta, crónica, granulomas.
 Entre micetomas bacterianos (actinomices,
nocardias) y los micetomas es importante su
diferenciación terapéutica.

24. FAMILIA DEMATIACEA
AGENTES DE CROMOMICOSIS
 Cromomicosis infecciones granulomatosas
en la piel, evolución lenta, por hongos
negros.
 Phialophora verrucosa, Cladosporium
carrioni, C. compactum y
C. pedrosoy (fonsecae).
 Morfología
Células redondas, pared
gruesa, pardas, 5-15 mcr
en racimos 4 -8 células
Fumagoides/esclerotes

25. FAMILIA DEMATIACEA
Cultivo
A.saboraud a temp ambiente,
colonias gris de olivo a negro
pardo, superficie con micelio
negro.
Microscopía del cultivo
P. verrucosa: phialide como
vaso o botella libera esporas
(phialosporas)
C. carrioni: conidias en ileras
separadas como pincel.
C. compactum: conidias en
ileras unidas o compactas.
C. pedrosoi: conidias en
cadenas ramificadas.

26. FAMILIA DEMATIACEA
 Cultivo A.
saboraud a temp ambiente,
colonias gris olivo a negro
pardo, superficie con micelio
negro.
 Microscopía del cultivo P.
verrucosa: phialide como vaso o
botella libera esporas
(phialosporas)
C. carrioni: conidias en ileras
separadas como pincel.
C. compactum: conidias en
ileras unidas o compactas.
C. pedrosoi: conidias en cadenas
ramificadas.

27. PATOGENIA Y DATOS CLÍNICOS
Infección:
Traumatismos piel,
evolución lenta,
meses o años, forma
nódulos coliflor,
abscesos, costras,
elefantiasis.

28. DEMATIACEAS
Diagnóstico laboratorio
Muestra: raspado/ biopsia
Microscopía: OHK 10%, lente
40X, células redondas,
recimos dentro leucocitos
células fumagoide/ esclerotes
Cultivo: colonias gris
oscuras, microconidias
características.
Epidemiología frecuente en
trópicos, agricultores.
Prevención usar calzado
evitar traumatismos.

29. AGENTES DE LA ESPOROTRICOSIS
 SPOROTRICH SCHENKII
Vive en vegetales, infecta por traumatismos
produce esporotricosis, infección crónica
granulomatosas, puede diseminarse y afecta
lifáticos drenantes y ganglios.
Morfología e identificación
En tejidos son levaduras
con gemación en forma
de puros, gram positivos

30. SPOROTRICH SCHENKII
 Cultivo Hongo dimórfico a
temp ambiente colonias
filamentosas de gris a
negras, micelio con hifas
septadas microconidias
agrupadas margarita a 37 0C
colonias levaduras
fusiformes con gemación.
 Estructura antigénica
 De cultivos se extrae
carbohidratos para pruebas
cutáneas de sensibilidad.

31. SPOROTRICH SCHENKII
ESPOROTRICOSIS
 Patogenia traumatismos
ingresan esporas a piel lesión
local, pústulas, abscesos,
úlceras, sigue trayecto de
linfáticos.
 Complicaciones: artritis,
neumopatías, infección
sistémica en debilitados.
 Epidemiologia trabajador
agrícola, varones.
 Control evita traumatimo

32. DIAGNOSTICO DE LABORATORIO
 Muestra: biopsia, exudados.
 Ex directo: KOH,T. levaduras
hematoxilina y eosina obsevan
“cuerpo asteroide” levaduras
con prolongaciónes Anticurpos
 Cultivo: Saboraud temper
ambiente colonias mohos
negros.
 Microscopía del cultivo
Micelio/hifas tabicadas,
microconidias agrupadas
(células margarita)
 Serología: poco utilizado.

33. LOS MICETOMAS
 Micetomas infecciones subcutáneas crónica
producidas por inoculación traumática de
bacterias (nocardias) u hongos eumicetos
allescheria boydii /madurella micetomi
 la lesiones granulomatosas tiene fístulas
drenan pus con gránulos (colonias) amarillos,
rojos, negros, etc.
 Localizan generalmente en miembros inf, tcs.
 Epidemiología: suelo y vegetales los
descalzos .
 prevención: usar calzado, evitar
traumatismos.

34. LOS MICETOMAS
 ACTINOMICETOMA
 EUMICETOMA

35. DIAGNÓSTICO EN EL LABORATORIO
Gránulos: masas oval , 1-5mm
amarillo, rojo, negro, etc.
Microscopía Los bacterianos
actinomicetos lobulado
llamado CLAVAS.
Los eumicetos forma
fragmentada, globuloso,
vermiforme, no clavas.
Actinomicetos: al microscopio
una parte filamentos
ramificados otro extremo
bacilos gram positivos.

36. HONGOSY MICOSIS
SISTÉMICAS O PROFUNDAS

37. COCCIIDIODES IMMITIS
 Vive en el suelo, endémico en
desiertos.
 Infección de autolimita a mortal
 Morfología: Ex directo esférula
15 a 60 mcr doble pared más
endosporas.
 Cultivo: Colonias filamentosas
micelios/ hifas tabicadas, artros-
poras alternantes y cél vacías.
 Estruc antigénica:coccidioidina
P. sensibilidad, P. inmunodifusión
P. aglutinación.

38. COCCIIDIODES IMMITIS
COCCIDIOIDIMICOSIS
 Patogenia Inhala artrosporas.
 localización pulmonar de
influenza a síndrome
Reumatismo del desierto
Fiebre del valle. 1%
disemina a huesos, SNC.
 Epidemiología – control
Hongo viable en suelo
Endémico en desiertos.
 Prevención: reducir polvo
enriquecer vegetación.

39. DIGNÓSTICO DE LABORATORIO
 Muestra: esputo, suero.
 Ex directo: Esférulas
 Cultivo: colonia algodonosas
 Hifas artrosporas caracteristi.
 Serología: 2-4 semanas IgM
IgG inmunodifusión, aglutina.
 P. cutánea: coccidioidina 0.1
ml dilución 1:100 vía ID R (+)
pápula > 5 mm 48 hrs.

40. PARACOCCIDIOIDES BRASILENSIS
PARACOCCIDIOIDIMICOSIS S.AMERICANA
 Predomina S. América
 Morfología e Identificación
En tejidos y 37 0C levadura
10-60 mcr redonda pared
gruesa multigemante
“CÉLULA TIMÓN BARCO”
 Cultivo
Dimórfico 37 0C levaduras, a
temp ambiente colonias
filamentosas, micelios e
hifas con microconidias.

41. PARACOCCIDIOIDES BRASILENSIS
PARACOCCIDIOIDIMICOSIS S.AMERICANA
 Patogenia y D. clínicos
Infecc inhalación esporas
localización 1ª pulmonar,
diseminación: bazo, hígado,
mucosas, piel, ganglios,
intestino, lesiones graves
granulomas, microabscesos.
 Epidemiología y control
Frecuente en campo.
varones más expuestos.
enfermedad no transmisible.

42. DIGNÓSTICO DE LABORATORIO
 Muestra: esputo, biop, suero
 Ex directo: C. TIMÓN BARCO
 Cultivo:
A tempera ambiente colonias
algodonosas, hifas tabicadas
microconidias. A temp 37 0C
C. TIMÓN BARCO
 Serología: Paracoccidiodina
Ag P. serológicas. Ac títulos
> 1:2048 enfermedad activa.

43. BLASTOMICES DERMATITIDIS
BLASTOMICOSIS NORTEAMERICANA
 R. sexual ascosporas
Ajellomyces dermatitidis
 Morfología e Identifición En
tejido y 37 0C levadura redond
doble pared 8-15 mcr blastos-
poras de base ancha, pared
delgada.
 Cultivo H. dimórfico 37 0C
levaduras a temperatura
ambiente colonias
filamentosas, micelio con hifas
tabicadas y microconi.

44. BLASTOMICES DERMATITIDIS
BLASTOMICOSIS NORTEAMERICANA
 Patogenia y D. clínicos
Infección vía respiratoria
localización 1ª pulmonar,
diseminación: a piel con
granulomas, úlceras,
microabscesos en huesos
y genitales.
 Epidemiología
En regiones endémicas se
infectan los perros y el
humano por inhalación de
esporas.

45. DIGNÓSTICO DE LABORATORIO
 Muestra: esputo, biopsi, suero.
 Ex directo Levadura caracterist
 Cultivo: A tempera ambiente
colonias algodonosas, hifas
tabicadas microconi A temp 37
0C Levaduras madre doble
pared, blastospora pared
delgada.
 Serología: poco aporte dx.
 Inoculación en animales
blastosporas vía intraperitonial
ratones, cobayos 5 a 20 días.

46. HISTOPLASMA CAPSULATUM
HISTOPLASMOSIS (ENF. DARLIN)
R. sexual ascosporas
Emmonsiella capsulata
Morfología e Identifición En
tejidos levadura ovale gemante
2-4 mcr en fagocitos.
Cultivo H. dimórfico a 37 0C
levaduras a temp ambiente
colon filamentosas, micelio
con hifas tabicadas y
macroconidias pared gruesa 8-
14 mcr multigemante, microco-
nidias digitiformes 2 – 4 mcr.

47. HISTOPLASMA CAPSULATUM
HISTOPLASMOSIS (ENF. DARLIN)
Patogenia y D. clínicos
Infección respiratoria localizació
1ª pulmonar, varía asintomática/
grave. Complicación:f cavitarias,
diseminación en inmunodeprimi
a SRE lifaticos, bazo e hígado.
Epidemiología y control
vive suelos, excretas aves
gallineros, murciélagos en cueva
raza negra frecuen, no transmite
de persona a persona.
Formaldehido desifectante

48. DIGNÓSTICO DE LABORATORIO
Muestra: esputo, biopsia, suero
Ex directo: Levaduras- fagocitos
Cultivo: temp ambiente colonias
algodonosas, hifas, macroconidi
con microconidias digitiformes.
Temp 37 0C levaduras-blatospora
Serología: 2 a 4 semanas.
Inmunodifusión positiva
P. sensibilidad: histoplasmina
1:100 positiva por años.

49. HONGOS OPORTUNISTAS

50. CANDIDA ALBICANS
CANDIDIASIS
 Miembro flora normal piel/mucosa
 Oportunista: desnutri, inmunodep
diabetes, antibióticos, corticoides.
 Morfología e Identifición
Levadura oval 3-6 x 2-3 mcr
blastosporas, alargadas, pseudhifa
 Cultivo 37 0C levaduras 2-6 días
colonias blancas cremosas.
A temp. ambiente pseudomicelios
pseudohifas y clamidiosporas.
 R. Bioquímicas fermenta glucosa,
maltosa, sacarosa, no lactosa.

51. CANDIDA ALBICANS
CANDIDIASIS
 Patogenia y D. clínicos
Infección F. predisponente
desnutrición , inmunodefi, etc
Candidiasis: bucal, genital, piel,
uñas, z. angulares húmedas
pulmones, inf . Sistémica,
cateterismo, etc.
 Inmunidad individuos normales
tienen títulos IgG para candida
 Epidemiología desnutrición e
inmunodepresión
predisponen.
 Control equilibrio nutricional e

52. DIGNÓSTICO DE LABORATORIO
 Muestra: orales, heces, s.genital
 Ex directo: KOH Levaduras con
blastosporas, pseudohifas, T.
germinal. levaduras gram +
 Cultivo: A saboraud, 37 0C,
Colonias levaduriforme cremosa.
 microscopía levaduras, blastospo
pseudohifas, clamidiosporas, etc.
 P. tubo germinal identifica C.
álbicans, cultivar 1 colonia en tubo
con 1 ml suero/ 2 hrs . Observa
levadura gemación digitiforme.
37 0C

53. CRIPTOCOCCUS NEOFORMANS
CRIPTOCOCOSIS
 Levadura capsulada, vive
intestino de palomas,
disemina naturaleza infección
humana oprtunista.
 Morfología e Identifición
Levadura ovalada o redonda
4-12 mcr amplia cápsula.
 Cultivo 37 0C colonias levaduri
cremosas y mucoides.
 R. Bioquímicas asimila glucosa
maltosa, sacarosa, galactosa
no lactosa e hidroliza la urea.

54. CRIPTOCOCCUS NEOFORMANS
CRIPTOCOCOSIS
 Patogenia y D. clínicos
Infección vías respiratorias esporas
d ambiente contaminado palomar,
enfermedad oprtunista afecta a
inmunodeprimidos.
Diseminar SNC, síndro meningeo.
LCR > prote linfocito, gluc normal.
Infección sin tratamien es mortal.
 Epidemiología excreta palomas
fuente infección a humanos.
 Control
Reducir población de palomas.
Decontaminar criaderos.

55. DIGNÓSTICO DE LABORATORIO
 Muestra: Esputo, LCR, suero.
 Ex directo:T. tinta china
Levaduras con gemación y cápsula
amplia y brillante. También
inmunofluorescencia.
 Cultivo: A saboraud, 37 0C,
Colonia levaduriforme cremosa
 Serología deter antígenos o
anticuerpos en suero o LCR por
aglutinación e inmunoelctroforesis