El documento proporciona una guía sobre el análisis integral de heces, abordando desde la recolección de muestras hasta los diferentes tipos de análisis (macroscópico, bioquímico y microscópico) que se realizan para diagnosticar afecciones digestivas. Se detalla la importancia de aspectos como la consistencia, color, olor y presencia de moco o sangre en las heces. Además, incluye procedimientos específicos y reactivos utilizados en los análisis, así como recomendaciones para la correcta manipulación de las muestras.

1. ORIANA MUNDARAY
Licenciada en Bioanálisis
ANÁLISIS INTEGRAL
DE LAS HECES
UNIVERSIDAD DE CARABOBO
Parasitologia 4°|
Escuela de Bioanálisis

2. NORMAS DEL
LABORATORIO
PARASITOLOGIA 4° AÑO
ORIANA MUNDARAY
Licenciada en Bioanálisis
UNIVERSIDAD DE CARABOBO

3. 1
2
3
4
5
6
6 Consejos
Impresidible el Uso de Bata de
Laboratorio.
Usar un tono de voz adecuado.
Escuchar y realizar las asignaciones según
las indicaciones dadas por el docente.
Trabajar con orden.
Descartar todo el material en las áreas
asignadas por los profesores.
Una vez finalizada la jornada limpiar el área
de trabajo, el MO con alcohol y guardarlo
correctamente.
Para una jornada productiva
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4. APARIENCIA Y
CONSISTENCIA
Conjunto de características
y coherencia que existe
entre los elementos heces.
Los niveles de productos serán
patológicos en cantidades
anormales, en muchos casos
dependera de la dieta así como
de un estado patológico
HECES
Materia compuesta de
residuos de alimento que
el organismo elimina tras
la digestión.
Compuestos no
absorbidos.
Producto Final de la
digestión.
CONSTITUCIÓN
Forma en que se
estructuran las heces.
Cantitdad de Agua
Remanentes de
alimentos digeridos
Productos del tracto
digestivo (pigmentos
biliares, moco, etc.)
CONCEPTOS BASICOS
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5. es una serie de pruebas que se realizan en una muestra
de heces (materia fecal) para ayudar a diagnosticar
ciertas afecciones que afectan el tubo digestivo .
Análisis Macroscópico
Análisis Bioquímico
Análisis Microscópico
Una vez llegan las muestras de heces al laboratorio,
debemos asegurarnos que las mismas esten en un
recolector de heces, debidamente identificadas con los
datos del paciente.
¿Que debemos tomar en cuenta?
¿Cómo está conformado?
¿Qué es el Analisis de las Heces?
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6. Analisis Macróscopico
Análisis Bioquímico
Análisis Microscópico
1.
2.
3.
PARTES DEL ANÁLISIS DE
HECES
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7. A
CONSISTENCIA
Grado de rigidez
dependiente del
contenido de agua.
D
OLOR
Por degradación del
triptófano en indol y
escatol (Microbiota
normal).
B
ASPECTO
Uniformidad de las
Heces
E
pH
Coeficiente que indica
el grado de acidez o
basicidad de mx.
C
COLOR
Dado por las sales
biliares (porfirinas).
Usualmente marrones.
F
MOCO Y SANGRE
Presencia o ausencia
de moco yn sdangre
en las heces
Análisis Macroscópico
1.
Características físicas
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8. Análisis Macroscópico
1.
CONSISTENCIA
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Duras: agua escasa, el aplicador no
entra fácilmente. Se pueden
observar escíbalos.
Formadas: partes iguales de agua y
elementos sólidos.
Pastosas: semejante a las formadas
pero con mayor contenido de agua.

9. Análisis Macroscópico
1.
A.CONSISTENCIA
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Blandas: con más contenido de agua sin llegar
a ser líquidas. Se asocian a intoxicaciones
alimentarias.
Líquidas: 90% agua
Disentéricas: con moco y sangre
Diarreicas: sin moco puede
tener sangre

10. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
Análisis Macroscópico
1.
A.CONSISTENCIA
Separadas, duras
y pequeñas.
TIPO 1
Pastosa, separada
en trozos con
bordes difinidos.
TIPO 5
Alargada y llena de
bultos
TIPO 2
Blandas, trozos
separados con
bordes pegados.
TIPO 6
Alargada y con
grietas en la
superficie
TIPO 3
Líquidas, sin
trozos solidos
TIPO 7
Alargada,
lisa y suave.
TIPO 4
ESCALA
DE
BRISTOL

11. Análisis Macroscópico
1.
A.CONSISTENCIA (ESCALA DE BRISTOL)
Homogéneas: color constante, parte
interna y externa iguales.
Heterogéneas: presencia de diferentes
elementos.

12. B
D
A
R
X
Negra
Roja Amarilla
Marrón
Verde Blanca
Análisis Macroscópico
1.
B.COLOR

13. Análisis Macroscópico
1.
B.COLOR
B
D
A
R
X
Negra
Roja Amarilla
Marrón
Verde Blanca
Hematoquezia:
Rojo Brillante, hemorragia
parte ↧ del tracto
digestivo.
Melena: (Negras Hb oxidada),
hemorragias en partes ↑del
tracto digestivo. ↑Hierro
Acólicas: Blancas-grisáceas.
Obstrucción biliar y hepática.
Celiaca: Amarilla
Contiene ↑Grasas,
Malabsorción. Hepatitis.
Lactantes
Transito rápido, ↑
hortalizas, meconio.
Sui generis
Bacterias ayudan a transformar la
bilirrubina en estercobilina, que es
marrón.

14. Fecal, característico o sui generis
Fétido o putrefacto
Inoloras
Rancio
Amoniacal (↑Urea)
Análisis Macroscópico
1.
B.OLOR
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15. Análisis Macroscópico
1.
B. pH
C. SANGRE Y MOCO
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pH: poca importancia clínica, pero
algunos autores refieren que pH
<5.5 (ácido) su causa más
probable es la intolerancia a la
lactosa. (Lactantes <19 meses)
Moco: cuadros inflamatorios del
intestino. Formación de un hilo en
el palillo de madera.
Sangre: hemorragias digestivas.

16. ¿EN QUÉ CONSISTE?
Cuantificación de ciertos productos mediante
el uso de reactivos y técnicas. ( Se realizan solo
bajo orden medica)
A.Grasa: (Sudán III)
B.Azucares reductores
C.Bilirrubina
D.Sangre oculta.
2.Análisis Bioquímico
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17. Se demuestra la presencia de un exceso de grasas en las heces
(esteatorrea) utilizando un colorante lipófilo (soluble en grasas).
GRASAS FECALES
A.
Lisoenzima que permite diferenciar las
grasas neutras que se tiñen de color
amarillo, las grasas minerales son
incoloras y las ácidas adquieren una
coloración roja.
Colorante Sudán III
2.Análisis Bioquímico

18. 2.Análisis Bioquímico
Determinación de pequeñas cantidades de sangre (5-10 mL). Informar al paciente
las indicaciones.
B.SANGRE OCULTA
++
Fe
Guayaco
Hidrocloruro de
bencidina
ortodianisidina
PRODUCTO DE
COLOR AZUL
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19. Semicuantitativo Sensibilidad Versátil
Se reporta en cruces
de acuerdo a la
intensidad de la
coloración.
Varía según la
sustancia
utilizada.
Hidrocloruro de
bencidina
Se puede efectuar
en tubo, lamina
porta-objeto o
papel de filtro.
2.Análisis Bioquímico
B.SANGRE OCULTA

20. Carnes Rojas.
Vitamina C o Vegetales como el rábano picante
o nabos.
Medicamentos que contengan sales de hierro.
72 horas antes de la prueba no debe ingerir:
INDICACIONES AL PACIENTE
Análisis
Macroscópico
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2.Análisis Bioquímico
B.SANGRE OCULTA

21. Se evidencia la presencia de grupos reductores en lactosa,
glucosa, maltosa, celobiosa (azúcar con OH del C anomérico
libre).
AZUCARES REDUCTORES
C.
Contiene Ión cúprico formando un complejo con citrato en
solución alcalina caliente origina un precipitado de óxido cuproso.
Reactivo de Benedict
2.Análisis Bioquímico
2+
Cu -CHO
del azúcar
NaOH caliente
Cu₂O
Producto varia de
color amarillo
hasta rojo ladrillo

22. 2.Análisis Bioquímico
C. AZUCARES REDUCTORES (MÉTODO BENEDICT CUALITATIVO)
Los azucares existentes en la materia fecal reducen el sulfato
cúprico, de color azul a sulfato cuproso formando hidróxido cuproso
amarillo o de óxido cuproso rojo que es insoluble.
COLOR-ASPECTO RESULTADO
Azul sin precipitado Negativo
Azul o Lig. turbio/ Verde sin precipitado Trazas
Verde con precipitado Amarillo Positivo (+)
Amarillo-verde oliva Positivo (++)
Marrón Positivo (+++)
Naranja o rojo ladrillo Positivo (++++)
Valores Normales: NEGATIVO
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23. Los azucares existentes en la materia fecal reducen el sulfato cúprico, de
color azul a sulfato cuproso formando hidróxido cuproso amarillo o de
óxido cuproso rojo que es insoluble.
2.Análisis Bioquímico
C. AZUCARES REDUCTORES (MÉTODO BENEDICT CUALITATIVO)

24. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
MÉTODOS
A.Directo
B.Concentración
B.a. Cualitativos
B.b. Cuantitativos
C.Leucograma fecal
C.a.Giemsa
C.b.Azul de Metileno
D.Coloraciones permanentes
3.Análisis Microscópico

25. 1
2
Solución Salina:
0,86 gr de NaCl en 100mL de agua
destilada.
Lugol:
Yoduro de Potasio......10 gr
Cristal de Yodo..............5gr
Agua destilada .........100mL
Solucion concentrada:
A.Método Directo
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3.Análisis Microscopico.
Solución concentrada...5 mL
Agua destilada.............15 mL
Solucion de trabajo:
Almacenar en frasco ambar
Solución
Salina
0,85%
Lugol
Identificación

26. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
Su uso se aplica en huevos,
quistes y larvas.
No aptos para trofozoítos.
B.A.CUALITATIVOS
Stool-Hausher
Kato Katz
3.Análisis Microscópico
B.MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN

27. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
B.A.CUALITATIVOS
3.Análisis Microscópico
B.MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN
Faust (Solución de Sulfato
de Zinc)
Willis ( Solución Saturada de
NaCl).
Por Flotación
Lutz ( Sedimentación
espontánea)
Richie (Formol-éter)
Sedimentación
Kato
Baermann
Otros

28. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
C.LEUCOGRAMA FECAL
3.Análisis Microscopico.
3 4
1 2
Las muestras que en el DO
presenten > 10 leucocitos
XC y abundante moco.
Útil para distinguir
entre diarreas de
origen bacteriano,
parasitario o viral
con una sensibilidad
del 75%
Información rápida
para orientar, junto
con la historia
clínica, el tipo de
diarrea que podría
afectar al paciente
Se recomienda
realizar
Leucograma Fecal
En condiciones
normales, las
heces no suelen
contener gran
número de
Leucocitos.

29. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
C.LEUCOGRAMA FECAL
C.A. TÉCNICA DE GIEMSA
3.Análisis Microscopico.
C.a.Técnica de
Giemsa
De A. MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO [Internet]. Uacam.mx. [citado el 22 de noviembre de 2021]. Disponible en:
https://prepaermilo.uacam.mx/view/download?file=82/Manual%202016_Temas%20SelcBiol_MPC.pdf&tipo=noticias
Realizar un frotis delgado con materia fecal
(moco) en una lámina PO.
Fijar el extendido con Metanol durante 3
min.
Se cubre la lámina con solución de Giemsa
Pura dejándola actuar por 1´ 40´´.
Transcurrido el tiempo requerido, lavar con
agua destilada.
Dejar secar a temperatura ambiente.
Observar en MO con objetivos de 40X y
100X.
El recuento diferencial de segmentados
neutrófilos, mononucleares y eosinófilos se
realiza en base a 100 células.
MO: Microscopio
Óptico
PO: Portaobjetos

30. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
3.Análisis Microscopico.
Técnica : Giemsa
Reporte de
Resultados:
Si diferencia
eosinófilos
3 4
1 2
No se observó celularidad
o no se observaron
Leucocitos en la muestra
examinada
En caso de encontrarse
un número mínimo de
polimorfonucleares:
Escasos, moderados o
abundantes
En caso de no observar
leucocitos
5 6
En caso de
encontrarse ≥ 100
polimorfonucleares
Neutrófilos ________ %
Mononucleares ______ %
Eosinófilos _________ %
C.LEUCOGRAMA FECAL
C.A. TÉCNICA DE GIEMSA

31. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
C.LEUCOGRAMA FECAL
C.B. AZUL DE METILENO.
3.Análisis Microscopico.
C.B.Técnica de
Azul de
Metileno.
De A. MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO [Internet]. Uacam.mx. [citado el 22 de noviembre de 2021]. Disponible en:
https://prepaermilo.uacam.mx/view/download?file=82/Manual%202016_Temas%20SelcBiol_MPC.pdf&tipo=noticias
MO: Microscopio
Óptico
PO: Portaobjetos
Realizar un frotis delgado con materia
fecal en una lámina portaobjetos.
Dejar secar a temperatura ambiente.
Se cubre la lámina con Azul de Metileno
dejándola actuar por 5 minutos.
Transcurrido el tiempo requerido, se lava
con agua destilada.
Dejar secar a temperatura ambiente.
Observar en microscopio óptico con
objetivos de 40X y 100X.
El recuento diferencial de
polimorfonucleares y mononucleares se
realiza en base a 100 células.

32. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
3.Análisis Microscopico.
Técnica : Azul de
Metileno
Reporte de
Resultados:
No Diferencia
Eosinófilo.
C.LEUCOGRAMA FECAL
C.A. TÉCNICA DE GIEMSA
3 4
1 2
No se observó celularidad o
no se observaron Leucocitos
en la muestra examinada
En caso de encontrarse un
número mínimo de
polimorfonucleares:
Escasos, moderados o
abundantes
En caso de no observar
leucocitos
3 4
En caso de encontrarse
≥ 100 leucocitos
Polimorfonucleares _%
Mononucleares _____ %
3 4
1 2
5 6
Polimorfonucleares
elevados (Neutrófilos)

33. Los microorganismos
patógenos más
frecuentes que
producen disentería
son:
Patógenos invasivos Parásitos: Otros:
3.Análisis Microscopico.
C.LEUCOGRAMA FECAL ( INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS)
Polimorfonucleares
elevados (Neutrófilos)
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Otros:

34. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
3.Análisis Microscopico.
Utilizadas cuando
existen dudas
diagnósticas y es
necesario
identificar las
características
morfológicas del
parásito.
D.TINCIONES PERMANENTES
Secar y ver al MO
Hematoxilina férrica
(Flagelados, amibas, Blastocystis spp.)
Coloración Tricrómica
(Flagelados, amibas, Blastocystis spp.)
Kinyoun
(Coccidios)

35. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
3.Análisis Microscópico
D.TINCIONES PERMANENTES
Ooquistes de
Cryptosporidium parvum
Coloración de Kinyoun
Trofozoítos de
Giardia lamblia
Coloración Hematoxilina F

36. Reporte de Resultados
Análisis Integral
de Heces
Universidad de Carabobo
Facultad de Ciencias de la
Salud
Escuela de Bioanálisis
Asignatura Parasitología
Fecha:__________
Paciente:__________________________ C.I.: ____________ Edad: ______
Sexo: ____
DIAGNÓSTICO COPROSCÓPICO
Características Macroscópicas:
Aspecto: Heterogéneo Consistencia: Pastosa
Color: Marrón Olor: Fecal
Reacción: Alcalina Moco: Ausente
Sangre: Ausente Restos alimenticios: Presente
Análisis Microscópico:
No se observaron formas parasitarias en la muestra analizada
Métodos utilizados: Directo (Sol. Salina y Lugol) y Kato
_______________________
Bioanalista

37. Visualización
MICROSCOPIO ÓPTICO
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38. Células epiteliales.
Lugol
Tricomas de plantas Almidón
Lugol Lugol
A.Método Directo Artefactos
3.Análisis Microscopico.

39. Pelo Vegetal
SSF
Fibra Muscular Vasos xilemáticos
Lugol SSF
A.Método Directo Artefactos
3.Análisis Microscopico.

40. Grano de Polen
SSF
Leucocitos Globulos Rojos
SSF SSF
A.Método Directo Artefactos
3.Análisis Microscopico.

41. Gotas de Grasa
SSF
Gotas De Grasa Globulos Rojos
Lugol SSF
A.Método Directo Artefactos
3.Análisis Microscopico.

42. Células epiteliales
Método directo/ Lugol
Quiste de Complejo
Entamoeba
histolytica/ E.dispar
A.Método Directo Artefactos
3.Análisis Microscopico.
UNIVERSIDAD DE CARABOBO

43. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
3.Análisis Microscópico
D.TINCIONES PERMANENTES
Quistes de
Endolimax nana
Levaduras

44. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
3.Análisis Microscópico
D.TINCIONES PERMANENTES
Hifas
Cristales de
Charcot Leyden

45. UNIVERSIDAD DE CARABOBO
RECORDEMOS
El paciente es más que una
muestra o un número.
Debemos hacernos
responsables de nuestros
resultados.
Nuestro número de colegio es
personal e intransferible, nos
hace responsables de un
resultado.