Este documento presenta las técnicas para realizar exámenes coprológicos y hematológicos en fauna silvestre. Explica los objetivos del examen coprológico, cómo recolectar y procesar las muestras, y qué observar. También describe los hallazgos normales y anormales y su posible significado clínico, incluyendo parásitos, bacterias, cristales y células. El documento provee una guía para realizar análisis coprológicos y diagnosticar problemas digestivos en animales silvest

1. PARQUE ZOOLOGICO BENITO JUAREZ
SEMINARIO DE FAUNA SILVESTRE 48 ANIVERSARIO ZOO MORELIA
QFB Rufino Osorio Márquez
Área de Diagnostico Clínico PZBJ
Contacto: omrock182@gmail.com
octubre 2018
TALLER:TECNICAS
PARA EL ESTUDIO
COPROLOGICO Y
HEMATOLOGICO
EN FAUNA
SILVESTRE

2. TALLER:TECNICAS PARA EL ESTUDIO
COPROLOGICO Y HEMATOLOGICO EN
FAUNA SILVESTRE
• Objetivos generales
. Conocer la relación entre la fase preanalítica
y el correcto diagnostico clínico.
.-Tener un acercamiento a los procesos
analíticos realizados a animales silvestres en
cautiverio.
.- Realizar análisis clínicos básicos e animales
en general.
.- Identificar algunas estructuras parasitarias,
cristales y fibras.

3. Examen Coprológico
Objetivo: Observar el funcionamiento
adecuado del sistema digestivo de los
ejemplares y en su caso identificar procesos
patológicos en desarrollo, correlacionándolo
con la historia clínica.

4. • Antecedentes epidemiológicos: procedencia, hábitos, numero de
habitantes por albergue, tipo y condiciones de albergue, calidad del
agua, procesamiento de los alimentos, suelo y eliminación de
excretas.
• Antecedentes clínicos: Sinología, datos hematológicos, edad, sexo,
estado nutricional, estado inmunológico.
Generalidades del examen Coprológico:

5. • Frasco estéril para muestras clínicas, bien
tapado e identificado.
• Si se colecta con guante este debe ser de vinil (cuando se toma
directamente del recto).
• Las heces deben de ser de los últimos 30 min.
• Si se colecta del suelo debe de mencionarse, y tomar la porción
central, para evitar falsos positivos por contaminación.
Recolección de la muestra

6. • Cantidad: 10 gramos o del tamaño de una nuez.
• Para un diagnóstico más objetivo, se recomienda
realizar las muestras seriadas.

7. Observación en fresco con tinción de
lugol.
Técnica de Flotación con ZnS04 o reactivo
de Sheater.
Técnica de concentración por
centrifugación, (sedimentación).
Observación en fresco con
NaCl 0.9 %
Técnica de concentración por flotación
(Faust)
Organoléptico
Tinción con tinta china.
Coprológico

8. Coprológico
Organoléptico:
a).- Consistencia.
b).- Color
c).- Olor
d).- Presencia de sangre y moco.
e).- Presencia de larvas.
f).- Restos alimenticios.

9. 2.- Observación en fresco con NaCl al 0.9 %.
Coprológico.
Homogenizar la muestra
con ayuda de un aplicador de
madera .
Colocar una gota de solución
fisiológica en un portaobjetos y
aplicar una cantidad suficiente de
muestra
Homogenizar , colocar
cubreobjetos y observar al
microscopio, de seco débil a seco
fuerte.

10. 3.-Observacion con tinción de lugol.
Coprológico
Colocar cantidad suficiente de
muestra en portaobjetos con
ayuda de aplicador de
madera.
Agregar una gota de lugol a la
muestra y mezclar.
Colocar cubreobjetos y
observar al microscopio.

11. 4.-Tecnica de flotación con ZnS04.
• v
Coprológico
Colocar muestra en tubo de ensaye y
agregar solución de ZnSO4 hasta
formar un menisco inverso.
Colocar en el menisco un
cubreobjetos , evitando presencia
de burbujas, esperar 10 min.
Colocar una gota de lugol a un
portaobjetos y sobreponer el
cubreobjetos utilizado en la
flotación. Observar al
microscopio.

12. 5.-Tecnica de concentración por centrifugación.
Coprológico
Colocar muestra en un tubo de
ensaye y agregar sol NaCl 0.9% ,
centrifugar a 1500 rpm de 3-5 min
Desechar el sobrenadante y colocar
en un cubreobjetos la suspensión
obtenida, mezclarlo con una gota
de lugol.
Observar al microscopio y reportar.

13. 6.- Técnica de concentración por sedimentación
Coprológico
Homogenizar 10 gr de
muestra con solución
fisiológica y tamizar con
ayuda de gasas.
Colocar la muestra en un
tubo de ensaye y
centrifugar a 1500 rpm
durante 3-5min.
Desechar sobrenadante
de ser necesario, volver a
centrifugar, aplicar técnica
de flotación con ZnSO4 y
observar

14. Tinción con tinta china
Sospecha de Criptosporidiasis

15. Coproparasitoscópico

16. Algunos hallazgos
• Fibras vegetales semidigeridas

17. Fibras de colágeno
Fibras musculares

18. Células epiteliales

19. Grasa: Esteatorrea

20. Eritrocitos
Sangre

21. Cristales de cistina

22. Cristales de oxalato de calcio
Cristales de Charcot - Leyden

23. Fosfato triple, colesterol, acido úrico.

24. Subphylum Mastigophora. Protozoarios flagelados

25. Phylum Ciliophora.
Protozoarios ciliados.

26. Subphylum sarcodina :
Trofozoitos

27. Quistes

28. • Cyclospora spp
Subclase coccidia:
Isospora belli Eimeria spp

29. • Hymenolepis spp.
Céstodos
Taenia spp
Cápsula ovígera Dipillidium spp

30. Reino fungi

31. • Huevos de Ascaridos

32. Gnatosthoma spp,
Enterobius spp, Oxiuris
spp

33. Larvas

34. Ectoparásitos

35. Interpretación
Organoléptico (macroscópico)
Color Causa posible
Negro •Hemorragia digestiva alta (esófago,
estomago o duodeno)
•Tratamiento con hierro
•Carbón vegetal
•Bismuto (antiácidos)
Rojo •Hemorragia digestiva baja
Marrón oscuro Dieta rica en carnes
Verde •Biliverdina
•Dieta rica en verduras
Amarillo pálido, blanco, gris •Obstrucción del conducto biliar
•Ingesta de sulfato de bario

36. Olor Posibles causas
Pútrido fétido Suele ser un olor amoniacal.
Ácido penetrante El desarrollo de flora que
degrada carbohidratos y
rompe el equilibrio de la flora
intestinal, produce diarrea
ácida con gases.
Nauseabundo Se presenta en procesos de
descomposición
Consistencia Posibles hallazgos
Heces sólidas Quistes, ooquistes y huevos
Heces semisólidas Huevos, trofozoitos, larvas,
quistes, ooquiste.
Heces líquidas Trofozoitos, huevos.

37. Presencia de sustrato La muestra viene impregnada con algunos residuos propios del
albergue . No es de importancia clínica.
Presencia de colágeno La muestra contiene pelo, ya sea del propio ejemplar o de sus
presas. No es de importancia clínica.
Presencia de uratos Propios del proceso metabólico en aves y reptiles. No es de
importancia clínica en estos ejemplares.
Presencia de sangre Es indicativo de hemorragia del tubo digestivo bajo, debido a
que no ha sido digerida. Las posibles causas son disentería
amebiana, fisura anal, obstrucción intestinal, infecciones
bacterianas, cáncer, cirrosis hepática, pólipos colorrectales,
uncinariasis, prolapso rectal, hemorroides.
Presencia de moco Es posible indicativo de inflamación del intestino, úlcera e
infección por Shigella
Parásitos adultos Depende de la especie del parásito ya que algunos solo son
visibles microscópicamente

38. Informe
• Por campo
EN UN OBJETIVO DE 40X
+ ESCASO DE 1 A 5
++ MODERADO DE 6 A 9
+++ ABUNDANTE > 10

39. Bacterias
Su hallazgo es significativo dependiendo de la
cantidad que logremos observar y además
la presencia de leucocitos y de alimento
semidigerido.
• ⇧Bacterias+leucocitos: posible infección
bacteriana.
• ⇩Bacterias+alimento semidigerido:
problemas de digestibilidad.

40. Hongos y levaduras
• Hongos: No es común
encontrarlos
Conidioforos: No poseen gran
importancia clínica, pero
pueden provocar alergias.
Hifas: Común encontrarlos en
aves y reptiles . Son de
importancia clínica Aspergillus
spp. y Candida spp.
• Levaduras: Puede ser de la
flora normal.
No tienen valor diagnóstico, a
menos que su cantidad se
encuentre aumentada.

41. Hemoglobina
• No es común encontrarla ya que se presenta
en casos de hemorragias digestivas altas.
• Cuando la observamos en microscopio es
necesario realizar una prueba de
confirmación: sangre oculta en heces (no se
realiza en el ADC).
• Eritrocitos:Indican una hemorragia del tracto
digestivo bajo.
• Generalmente se manifiesta como sangre
evidente en el examen macroscópico.

42. Cristales
• Se forman debido a la dieta, ya que algunos están
presentes en los tejidos de frutas y verduras, y se
excretan en las heces fecales, y además debido al
pH.
• Algunos son comunes (en poca cantidad) en la
orina y/o heces, mientras que algunos otros son
indicativo de un proceso patológico.

43. Cristales
• Patologías hepáticas: Leucina y tirosina
• Patologías renales: Fosfatos, cistina,
carbonatos, oxalatos.
• Charcot- Leyden: Producidos tras la
degranulación de los eosinofilos. Por lo que
su presencia nos indica infección parasitaria
o Alergia.

44. Leucocitos
• Se observan, sobre todo neutrófilos en colitis
ulcerosa y disentería bacteriana. Su observación
es prueba preliminar para sospechar de infección
bacteriana por Salmonella, Shigella,
Campylobacter, Yersinia y Escherichia coli
enteroinvasiva.
• Bacterias que causan diarrea por producción de
toxinas como Staphylococcus aureus, especies de
Vibrio, virus y parásitos no reclutan leucocitos
fecales.

45. Almidón
• Proviene de la dieta, y de acuerdo a
la coloración que toma con Lugol,
se considera digerido (acrodextrina,
amarillo), parcialmente digerido
(eritrodextrina, rojo) y sin digerir
(morado o negro).
• La presencia de almidón puede
indicar deficiencia de amilasa
causada por una insuficiencia
pancreática exocrina.

46. Grasa
• Los lípidos al examen microscópico incluyen
grasas neutras (triglicéridos), sales de
ácidos grasos (jabones), ácidos grasos y
colesterol.

47. • «La alegría de ver y entender el mundo
es el mas perfecto don de la naturaleza»
Albert Einstein
Muchas
gracias.
QFB Rufino Osorio Márquez
omrock182@gmail.com
Área de Diagnostico Clínico PZBJ