Este documento trata sobre la coprología y la coprología funcional. Explica que la coprología incluye la observación macroscópica, microscópica, química y parasitológica de las heces. También describe los métodos de análisis como la sedimentación, centrifugación, flotación y físico-químicos. Finalmente, detalla los principales parásitos que pueden observarse en las heces como nematodos, cestodos, protozoarios y trematodos.

1. TEMA: COPROLOGIA Y COPROLOGIA FUNCIONAL
UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN ANTONIO ABAD DEL
CUSCO
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
“ESCUELA PROFESIONAL DE FARMACIA Y BIOQUÍMICA”
.
ASIGANATURA: analisis clinico II
DOCENTE: Mgt. Anahí Cardona Rivero
INTEGRANTES:
•Gimena Huarhuachi Díaz
•Shauny Dayani Yancachajlla Quispe
•Alex Pauccara Tacusi
•Nayshia Santillan Palomino
•Rony Cardenas Cachi
SEMESTRE: 2016-II
CUSCO-PERU
2016

2. COPROLOGIA
Comprende:
• observación macroscópica
• observación microscópica
• análisis químico
• parasitológico de la
deposición
Análisis de las heces
La muestra obtenida por expulsión
natural es la indicada para realizar
este tipo de examen. Debiendo evitar
que se mezcle con orina, agua o tierra
• muestra es solida dos gramos
(aprox. el tamaño de una nuez)
• muestra liquida unos 10 ml.

3. EXAMEN COPROLOGICO
FUNCIONAL
conjunto de pruebas que brindan
información oportuna y de fácil acceso
sobre la fisiopatologia digestiva,
pérdida de peso, diarreas crónicas, desnutrición –
malnutrición, pancreopatía, procesos inflamatorios
intestinales, anemia macro - microcíticas y
hemorragias.
La prueba se realiza en tres fases:
La fase Macroscópica
La fase Química
La fase Microscópica

4. COMPOSICION DE LAS HECES
• Consistencia: formada o
moldeadas
• Color: marron
• Olor: sui generis
• Reacción: alcalina
• Fibras musculares: escasas
• Almidon escaso
• Ac. Grasos: escasos
• El bolo fecal tiene un peso entre 150 y 250
• agua del 80% (se eliminan con las deposiciones
100 – 200 cc de agua)
• Solidos en un 20% q esta conformado por
almidon, acidos grasos, fibras musculares, flora
normal que componen 1/3 de las heces
caracteristicas

5. IMPORTANCIA
CLINICA
se basa en la
identificación
microscópica, en
muestras fecales
de los elementos
parasitarios
presentes
se puede
decir
un resultado analítico positivo
un resultado analítico negativo
siempre es indicación de
existencia de parasitismo
en el paciente.
no descarta la posibilidad de
parasitismo, ya que el propio
método analítico conlleva la
obtención, por causas diversas, de
falsos resultados negativos

6. principales causas de
error suelen ser:
Muestra inadecuada-mente recogida y conservada.
Escasez de parásitos en la muestra
Biología del parásito
Periodo de invasión parasitaria
Periodos negativos.

7. Muestra inadecuada-mente recogida y conservada.
son extremadamente lábiles fuera del
organismo hospedador
hace que la inadecuada
conservación de la muestra les
afecte
deformándolas o destruyéndolas
haciendo prácticamente imposible
su observación microscópica.

8. Escasez de parásitos en la muestra
La
sensibilidad,
de los
métodos
coprológicos
es
relativamente
baja
detalformaque:
, cuando el
número de
elementos
parasitarios
presentes en
las heces es
muy bajo
su presencia
puede no ser
detectada
durante el
estudio
coprológico.

9. Biología del parásito
Existen especies
parásitas intestinales
humanas que no
eliminan normalmente
sus elementos de
dispersión mezclados
con las heces del
hospedador
el examen de una
muestra fecal
daría casi siempre
un resultado
falsamente
negativo.
Este tipo de
problemas suele
presentarse en
parasitismos
humanos por
Enterobius
vermicularis o
Taenia sp

10. Periodo de invasión parasitaria
especies parásitas
que antes de
alcanzar su
localización final
en el intestino
humano, para
madurar
sexualmente
se dé un periodo
de migración por
diversos órganos
y tejidos
Ascaris
lumbricoides
solamente se
conseguirá cuando
los vermes adultos
en el intestino y las
hembras
comiencen a
eliminar huevos
vehiculizados en
las heces
En la etapa
parasitaria
previa habrá que
recurrir a otros
métodos de
diagnóstico de
laboratorio
(serológicos).

11. Periodos negativos.
la eliminación
de formas
parásitas con
las heces del
hospedador no
es constante
existen períodos
durante los cuales
existe
emisión,intercalad
os con otros
períodos
negativos, durante
los cuales no
existe
Si la muestra
estudiada ha sido
recogida durante
estos períodos
negativos,
indudablemente
el resultado no
demostrará el
parasitismo
existente.

12. Conocidas cuales son las principales causas de error, es posible aplicar
medidas para paliarlas. De forma general, estas medidas aplicadas ante
un análisis coprológico negativo serán:
• Emplear
técnicas
de
concentra
ción
parasitari
a.
• Realizar
toma
especial de
muestra
para
parásitos de
biología
peculiar.
• Repetir la
toma de
muestra y su
examen
microscópico
al menos tres
veces a
intervalos de
unos 5-7 días,
antes de
desechar la
posibilidad de
parasitismo
intestinal
• forzando la
eliminación
de
elementos
parásitos
mediante la
administraci
ón de
purgantes
de tipo
salino

13. DATOS
CLÍNICOS
edad
antecedentes
epidemio0logicos
antecedentes personales
clínica variable e
inespecífica
nauseas,vomitos
dolor abdominal
diarea crónica
diarea persistente
diarrea aguda
anemia
prurito anal
habito de pica
síntomas pulmonares
alergia cutáneas
expulcion de paracitos
DATOS
PARACLÍNI
COS
anemia
eosinofilia
aumento de Ig E

14. EXAMEN PARASITOLÓGICO:
NEMATODOS:
Gusanos redondos
Ascaris lumbricoides: Se observan huevos miden aprox.
45-75 x 30-50 mm,, producen una patología de dolor de estomago
y desnutrición.
Tricocefalo: El huevo mide de 50-55 x 22-25 mm Tiene la
forma de balón de fútbol americano, produce anemia intensa,
dolores abdominales, prolapso rectal ocasional.
Uncinarias: Tienen una forma elíptica, están cubiertas de una
membrana lisa, transparente y fina, mide de 60 - 40 x mm
producen anemia.
Strongyloides stercolaris: Se observan larvas. Produce
diarrea, vomito, desnutrición.
Enterobius vermiculares (Oxyurus):Los huevos son
ovoides con una cara convexa y una plana, Produce prurito en la
región perianal, insomnio, cambios de conducta.

15. CESTODOS:
Gusanos planos
-Taenia: Los huevos miden 20-30 x 30-40
mm, son ovoides con membrana gruesa,
amarillenta que se encuentra estriada en
forma de empalizada y encierra un embrión
de seis ganchos poco visibles. Produce
trastornos nerviosos.
- Hymenolepis nana : Huevos ovoides,
mide aprox. 50 mm tiene una membrana
interna y una externa, también puede
causar trastornos nerviosos.

16. PROTOZOARIO
S: Amebas
Entamoeba histolítica: Se observan quistes miden
aprox. 20 mm se observa con cuatro núcleos. Pueden
causar lesión de la mucosa intestinal.
Entamoeba coli: Son quistes más grandes que los de
histolítica, tiene más de cuatro núcleos. Es considerada
NO patógena.
Gardia lamblia: Es una ameba en forma de pera
produce una diarrea amarillenta y vomito.
TREMATODOS : Forma
de hoja plana Fasciola hepática: Daño en higado . quistes

17. METODOS DE ANALISIS
MACROSCOPICO
Consistencia fecal.
Presencia de elementos no
fecales.
Presencia de parásitos y
pseudoparásitos.
MICROSCOPICO
Examen directo en fresco.
Examen tras concentración
parasitaria. procedimientos
complementarios:
Examen tras tinción (para
resolver dudas de identificación
específica, especialmente en
protozoos intestinales).
Cultivos en medios artificiales (en
parasitismos escasos).

18. Muestra
inadecuada
mente
recogida y
conservada
Escasez
de
parásitos
en la
muestra.
Biología
del
parásito.
Periodo de
invasión
parasitaria.
Periodos
negativos.
PRINCIPALES CAUSAS DE
ERROR

19. • Sedimentación: Método de
Faust-Ingalls
• Centrifugación: Método de
Baroody y Most
• Flotación: Método de Willis
• Centrifugación-Flotación
MÉTODOS
FÍSICOS
• Método de Teleman
ModificadoMÉTODOS
FÍSICO-
QUÍMICOS

20. SEDIMENTACIÓN
•Método de Faust-Ingalls
•Reactivo: Solución agua-
glicerina al 0,5%
•Técnica:
•Triturar 5 g de heces e
interponerlos en el agua
glicerinada
•Llenar el vaso en el que se
ha recogido la dilución con
agua glicerinada.
•Dejar reposar una hora y
decantar el sobrenadante.
•Resuspender en reactivo
nuevo y dejar sedimentar 45
minutos
-Decantar.
-Resuspender en
reactivo nuevo y dejar
reposar 30 minutos.
-Decantar.
-Tomar muestras de la
superficie, fondo y zona
media del sedimento y
examinarlas al
microscopio.

21. Método de Baroody y Most
Reactivo: Agua corriente a 40ºC
Técnica
Diluir de 10 a 15 g de heces en un matraz conteniendo
unos 100 ml del reactivo.
Pasar la suspensión fecal por una malla colocada en un
embudo y recoger el filtrado en un tubo de centrífuga de
50 ml de capacidad.
Centrifugar a 1.500 r.p.m. durante 30 segundos.
Decantar y resuspender en agua a 40ºC.
Centrifugar.
Repetir las operaciones anteriores hasta conseguir
sobrenadante limpio (es suficiente unas tres veces).
Tomar una muestra del sedimento y observarla al
microscopio.
CENTRIFUGACIÓN

22. FLOTACIÓN
Método
de Willis
Reactivo:
Solución
sobresatu
rada de
cloruro
sódico.
Técnica:
Diluir 1 ó 2 g
de heces en el
reactivo
diluyente.
Verter la
suspensión
fecal
homogénea en
un recipiente
hasta que esté
totalmente
lleno y forme
un menisco en
la superficie.
Colocar un
portaobjetos
desengrasado
en contacto
con el menisco
líquido.
Pasados 30-45
minutos,
retirar
rápidamente el
portaobjetos,
cubrirlo y
observar los
posibles
elementos
parasitarios
retenidos en la
porción líquida
adherida al
portaobjetos.

23. ……………………..
• Centrifugación
Flotación.
……………….
• En ellos se asocian un
procedimiento de
concentración por
centrifugación, con
otro de flotación.
Presentan, en
conjunto, las mismas
ventajas e
inconvenientes de los
métodos asociados.

24. MÉTODOS FÍSICO-QUÍMICOS
………………………
Método de
Teleman
Modificado
……………………………
Tomar de la
dilución fecal
realizada para el
examen directo
en fresco 2-3 ml
y colocarlos en
un tubo de
centrífuga.
Añadir a cada
tubo un
volumen de éter
igual a la
suspensión fecal
colocada.
………………………..
-Cerrar con
tapón de caucho
y agitar
-Centrifugar
1.500/ 2.000
rpm 3min
-Resuspender el
sedimento
-colocar gota de
sedimento y
observar

25. ETAPAPRE-ANALITICA
TOMA DE MUESTRAS
No ingerir medicamentos
(carbón, sales de bario,
magnesio, bismuto y purgantes)
frascos de cierre hermético,
limpios y secos
no guardar mas 24 horas
A.- Alteración en la morfología de
los quistes de protozoos.
B.- Destrucción de las fases
trofozoicas de protozoos.
C.- Embrionamiento
D.- Metamorfosis de fases
larvarias
Heces del día
uso de conservadores para
superiores a 24 hrs

26. EXAMEN MACROSCOPICO
Consistencia
fecal
Presencia de
elementos no
fecales
Presencia de
parásitos y
seudoparasitos

27. Consistencia
• formadas o moldeadas.
• Caprinas.
• Pastosas.
• Grumosas.
• Semilíquidas.
• Liquidas.
• Acuosas.

28. aspecto
• Brillantes
• Aireases
• Voluminosas
• sangre
• gleras mucosas
• Pus
• seudoparasitos
parásitos
color
 el mismo esta dado por estercobilinogeno
 alimentación
 alteraciones funcionales
histológicas
 Bacterias
 marrón amarillo oro
 marrón anaranjado
 hipo coloreadas
 Acolia
 Verdosas
 marrón vinoso
 Grisáceas
 melenas

29. química
pH
Presencia de
almidón
Determinación de
grasas
Sustancias
reductoras
Sangre oculta
COPROLÓGIA FUNCIONAL-fase
macroscopica

30. ACIDO: Los azucares reductores que no
se absorben, fermentan y generan:
ácido láctico ,ácido acético, ácidos
grasos de cadena corta con ello el pH
baja.
Alcalino: en las diarreas de
putrefacción también suele ser
alcalina en evacuaciones de
enfermos con insuficiencia gástrica
descompensada diarrea
gastrogena
EL PH:

31. Azucaresreductores
Los disacáridos Suelen estar
ASOCIADOS con la mala
absorción de nutrientes o
flatos excesivos (gases)
por episodios de diarrea que
acompañan con una infección
gastrointestinal aguda

32. Sangre
oculta
indica hemorragias
de vías
gastrointestinales
Parte superior
del aparato
gastrointestinal
varices
esofágicas,
ulceras
péptida,
carcinoma
de colon
,colitis
ulcerativa
,disentería

33. DETERMINACION DE GRASAS
la presencia elevada de grasa en las
heces puede estar en una
pancreatitis, fibrosis quística u otras
enfermedades que afectan la
absorción de grasa
se detecta con la tinción de sudan III
,ROJO ESCARLATA

34. , En las heces podría indicar carencia
de amilasa en el tracto digestivo
sugestivo de pancreatitis.
LA PRESENCIA DE ALMIDÓN

35. TOMA DE MUESTRAS ESPECIALES
OXIUROS
• Método de Graham o del
papel adhesivo.
• La toma debe hacerse
por la mañana, antes de
que el paciente se asee o
defeque. Para facilitar la
observación
microscópica, entre el
celofán y el portaobjetos
puede colocarse una gota
de lugol o de xilol.
CONTENIDO DUODENAL
• Entero Test
• Antes de proceder al
estudio microscópico de
la mucosidad recogida,
deberá comprobarse su
pH a fin de constatar que
el hilo colector ha llegado
a estar en localización
duodenal.

36. El examen Thevenon es
un estudio se realiza
para detectar la
presencia de sangre
oculta en las heces
• Úlcera péptica
• Inflamación del intestino, que en
ocasiones está producida por una
infección
• Cáncer de estómago, colon o recto
• Hemorroides
Fundamento de la
reacción
La reacción es positiva:
azul violeta
La reacción es negativa:
incoloro o rojizo cuando
hay poca sangre
EXAMEN THEVENON
Se utilizan reactivos cromógenos
(piramidon). Estos reaccionan
con el ácido acético y peróxido
de hidrogeno y la reacción es
catalizada por el grupo hemo.

37. MÉTODO: BENEDICT-CUALITATIVO
La glucosa y otras sustancias
reductoras reducen el sulfato
cúprico, de color azul a sulfato
cuproso formando hidróxido
cuproso amarillo o de óxido
cuproso rojo que es insoluble.
Tiene importancia clínica para
detectar deficiencia de enzimas
intestinales como la lactosa
debido a una deficiencia
congénita o daños inespecíficos a
la mucosa.
Esta prueba se realiza en
pacientes que se sospecha son
intolerantes a la lactosa. La
intolerancia a la lactosa se
produce cuando el intestino
delgado no produce suficiente
lactasa.

38. SUDAN III
En la mala absorción significativa el nivel sérico de
colesterol carotenos y albumina es siempre bajo. La
malabsorción generalizada, el pH y las sustancias
reductoras totales de las heces es útil para detectar la
malabsorción de los hidratos de carbono.
.
Para realizarla se mezcla una pequeña cantidad de
muestra de heces con dos gotas de agua, dos de alcohol
etílico al 95% y varias de sudan II.
El examen con microscopio óptico revela la presencia de
glóbulos de grasa refrigerantes de color amarillo o
anaranjado.

39. LEUCOCITOS
Identifica la presencia de
leucocitos y el gram en heces
(infección, inflamación
La búsqueda de leucocitos en
heces, se realiza mediante la
coloración de la materia fecal con
azul de metileno
Esta prueba es positiva, cuando hay
más de 5 leucocitos por campo con
predominio de polimorfonucleares al ser
observados al microscopio de luz con
objetivo de 40x.
El gram es realizado por la coloración
de Wright y puede orientar hacia una
bacteria gram negativa o gram positiva.