El documento detalla el análisis de heces en parasitología, incluyendo la recolección de muestras, los métodos diagnósticos como el análisis macroscópico, bioquímico y microscópico, así como la identificación de formas parasitarias. Se describen características de las heces, su relación con enfermedades, y se presentan distintos métodos de tinción y fijación. Además, se ofrece información sobre la dieta, patología y la clasificaciones de los parásitos.

1. Universidad de Carabobo
Facultad de Ciencias de la Salud
Escuela de Bioanálisis
Asignatura Parasitología FACULTAD DE CIENCIAS
DE LA SALUD
ESCUELA DE
BIOANÁLISIS

2. ▪ Análisis de las heces.
▪ Constitución muestra heces.
▪ Partes del Coproanálisis:
Análisis Macroscópico,
Bioquímico y Microscópico.
▪ Recolección de muestra.
▪ Métodos Diagnóstico: Directo,
Concentración, Fijación y
Tinción permanente.
MSc. Diana Graterol
Análisis Integral de las
Heces

3. Análisis de las Heces
Examen de Heces Repulsión por la materia fecal
Olor desagradable
Identificación de formas parasitarias
Características macroscópicas y fisicoquímicas varía con
las condiciones fisiológicas del individuo
❖ Alimentación
❖ Hidratación
❖ Presencia de Hemorragias intestinales
❖ Procesos infecciosos
3

4. Constitución Muestra Heces
4
HECES
AGUA
Alimentos
no
digeridos o
indigeribles
Productos en
descomposición
Productos
del tracto
digestivo

5. Fisiología tracto intestinal
Cantidad de Heces por Evacuación:
150 – 250 grs por día
Dieta
Estado
Patológico
❖ Vegetarianos: ≥ 370 grs. diarios
❖ Dieta rica en proteínas: < 60 grs. diarios
❖ Diarreas Agudas Graves: Desde un Kilo hasta varios litros.
❖ Tumores del Colon Descendente: Estreñimiento o Constipación.
5

6. Partes del Análisis de las Heces
6
ANÁLISIS
MACROSCÓPICO
ANÁLISIS
BIOQUÍMICO
ANÁLISIS
MICROSCÓPICO

7. Análisis Macroscópico
7
CONSISTENCIA
Duras (escíbalos)
Formada
Pastosas
Blandas
Disentéricas
Diarreicas
ASPECTO
Homogéneo
Heterogéneo
COLOR
Marrón (dieta balanceada o
mixta)
Marrón Claro (dieta rica en
vegetales)
Marrón Oscuro (dieta rica en
proteínas)
Amarillo Claro en
Lactantes.
Procesos Patológicos

8. Escala de heces de Bristol
8

9. Análisis Macroscópico
9
CONSISTENCIA
Duras (escíbalos)
Formada
Pastosas
Blandas
Disentéricas
Diarreicas
ASPECTO
Homogéneo
Heterogéneo
COLOR
Marrón (dieta balanceada o
mixta)
Marrón Claro (dieta rica en
vegetales)
Marrón Oscuro (dieta rica en
proteínas)
Amarillo Claro en
Lactantes.
Procesos Patológicos

10. 10
Heces Acólicas
• Color blanco-gris
• Obstrucción Vías Biliares y Hepáticas.
Hematoquezia
• Color Rojo Rutilante (rojo vivo o escarlata)
• Hemorragias en la parte baja del tracto gastrointestinal como colon o
recto.
Melena
Color Negro
Hemorragias en la parte alta del tracto gastrointestinal como Duodeno; Yeyuno e Íleon.
Sangre en la parte interna indica Hemorragias Internas.
• Sangre en la parte externa indica lesiones en el Ano o Hemorroides.
• Pardo Oscuras indican procesos líticos como Anemia Hemolítica
Análisis Macroscópico

11. Análisis Macroscópico
11
OLOR
Característico o sui
generis
Putrefacto o Podrido
Inodoras
Rancio
Amoniacal
pH
Alcalino
Dietas ricas en
proteínas
Ácido
Dietas ricas en
carbohidratos
MOCO Y
SANGRE
MOCO
Cuadros inflamatorios
del Intestino.
Colitis funcional.
SANGRE
Hemorragias
Abundantes del tracto
gastrointestinal.

12. Análisis Bioquímico
12
Cuantificación de Grasas Fecales:
Mala Absorción Intestinal
Determinación de Bilirrubina:
Afecciones Hepáticas
Determinación de Sangre Oculta:
Ulcera o Carcinoma Gástrico

13. 13
Sangre Oculta en Heces
Detección de mínimas cantidades de sangre que no son
visualizadas al microscopio óptico.
❖ Normal: 2 a 2,5 mL sangre diarios
❖ Cantidades entre 5-10 mL: No detectables (Sangre Oculta)
❖ > 10 mL diarios: Oxidación de la hemoglobina
(hemorragias altas)
Melena o Hematoquezia
Análisis Bioquímico

14. 14
HEMOGLOBINA
Grupo
Hemo
(Hierro)
Globina
Capacidad
Oxidativa
Grupo Hemo
(Hierro)
Catalizador
Peróxido de
Hidrogeno
Producto
de color
Azul
Guayaco;
Hidrocloruro de
bencidina,
Ortodianisidina
Sangre Oculta en Heces
Análisis Bioquímico

15. 15
Sangre Oculta en Heces
❖ Semicuantitativa.
❖ Se reporta en cruces de acuerdo a la intensidad de la coloración.
❖ Grado de sensibilidad varía según la sustancia utilizada.
Hidrocloruro de bencidina más sensible
❖ Se puede efectuar en tubo, lamina porta-objeto o papel de filtro.
❖ Indicaciones al Paciente:
72 horas antes de la prueba no debe ingerir:
▪ Carnes Rojas
▪ Vitamina C o Vegetales como el rábano picante o nabos.
▪ Medicamentos que contengan sales de hierro.
Análisis Bioquímico

16. Análisis Microscópico
16
ALIMENTOS
DIGERIDOS
•Células, Fibras y
Pelos Vegetales
•Fibras
Musculares
•Grasas Neutras y
Aceite Mineral
(Sudán III)
PROVENIENTES
DEL
ORGANISMO
• Células Epiteliales
• Leucocitos (Azul
metileno Löeffler)
• Levaduras
(Chilomastix mesnili
y E. nana)
• Bacterias
• Cristales de Oxalato
de calcio, fosfato
amónico-magnésico
• Cristales de Charcot-
Leyden
FORMAS
PARASITARIAS
• Huevos de
Helmintos
•Adultos de
Helmintos
• Larvas de
Helmintos
•Trofozoítos y
Quistes de
Protozoarios

17. 17
Pelo vegetal
Larva Strongyloides stercoralis
Análisis Microscópico

18. 18
Célula vegetal
Huevo de Anquilostomideo
Huevo de Ascaris lumbricoides
Grano de Polen
(Artefacto)
Análisis Microscópico

19. 19
Fibras musculares
Gotas de grasa teñidas
con lugol
Análisis Microscópico

20. Análisis Microscópico
20
ALIMENTOS
DIGERIDOS
•Células, Fibras y
Pelos Vegetales
•Fibras
Musculares
•Grasas Neutras y
Aceite Mineral
(Sudán III)
PROVENIENTES
DEL
ORGANISMO
• Células Epiteliales
• Leucocitos (Azul
metileno Löeffler)
• Levaduras
(Chilomastix mesnili
y E. nana)
• Bacterias
• Cristales de Oxalato
de calcio, fosfato
amónico-magnésico
• Cristales de Charcot-
Leyden
FORMAS
PARASITARIAS
• Huevos de
Helmintos
•Adultos de
Helmintos
• Larvas de
Helmintos
•Trofozoítos y
Quistes de
Protozoarios

21. 21
Células epiteliales
Levaduras
Leucocitos
Cristales de Charcot Leyden
Análisis Microscópico

22. 22
Células epiteliales Quiste del Complejo Entamoeba spp.
Quistes de Iodamoeba bütschlii
Análisis Microscópico

23. 23
Quiste del Complejo Entamoeba spp.
Leucocitos
Análisis Microscópico

24. 24
Levaduras en gemación
Burbuja de aire
Análisis Microscópico

25. 25
Levaduras
Quistes de Endolimax nana
Análisis Microscópico

26. 26
Hifas
Cristales de Charcot
Leyden
Análisis Microscópico

27. Análisis Microscópico
27
ALIMENTOS
DIGERIDOS
•Células, Fibras y
Pelos Vegetales
•Fibras
Musculares
•Grasas Neutras y
Aceite Mineral
(Sudán III)
PROVENIENTES
DEL
ORGANISMO
• Células Epiteliales
• Leucocitos (Azul
metileno Löeffler)
• Levaduras
(Chilomastix mesnili
y E. nana)
• Bacterias
• Cristales de Oxalato
de calcio, fosfato
amónico-magnésico
• Cristales de Charcot-
Leyden
FORMAS
PARASITARIAS
• Huevos de
Helmintos
•Adultos de
Helmintos
• Larvas de
Helmintos
•Trofozoítos y
Quistes de
Protozoarios

28. Clasificación de los Parásitos
28
Protozoarios
(Unicelulares)
Helmintos
(Pluricelulares)
Huevo Larva
Adulto
Trofozoíto
Quistes

29. 29
Huevo de Trichuris trichiura
Método de Kato
Adultos de Ascaris lumbricoides
Análisis Microscópico

30. 30
Larvas de Strongyloides stercoralis
Análisis Microscópico

31. 31
Quiste de Entamoeba coli
Solución Salina
Quiste de Endolimax nana
Solución de Lugol
Análisis Microscópico

32. Recolección de Muestra
32
Indicaciones al Paciente
Fijación de las Muestras
Procesamiento en el
Laboratorio
• Recipiente
• No contaminar ni llenar el
recipiente demasiado
• Indicar cuales medicamentos
interfieren en el examen
• Alcohol polivinílico (trofozoítos,
quistes)
• Formalina al 5-10 % (huevos,
larvas)
• Schaudinn (todos los tipos
parásitos)
• Muestras diarreicas o disentéricas:
30 min después de emitida o
refrigeradas.
• Muestras duras, formadas o
pastosas pueden esperar y
conservarse sin fijación en nevera
durante 24 horas.

33. Fijación muestras heces
33
Alcohol polivinílico (PVA):
Solución concentrada:
Acido acético glacial……….5 mL
Glicerina……………………...1,5 mL
Solución Schaudinn………….93,5 mL
Solución trabajo:
Solución concentrada………..100 mL
Alcohol polivinílico……………5 grs
Calentar a 75º C. Almacenar en frasco ámbar

34. Fijación muestras heces
34
Solución trabajo:
Formaldehído 0.5% ………..5 mL
Solución salina……………….95 mL
Para quistes y ooquistes 5%
Para huevos y larvas 10%
Formalina 5-10%:

35. Fijación muestras heces
35
Schaudinn:
Solución concentrada:
Cloruro de mercurio…………11,4 grs
Agua destilada………………..200 mL
Etanol 95%..............................100 mL
Solución trabajo:
Solución concentrada………..47 mL
Acido acético glacial…………3 mL
Almacenar en frasco ámbar

36. Métodos Diagnóstico
36
MÉTODO
DIRECTO
• Solución Salina al 0,85 %
• Solución Dobell y O’Connor o Lugol
MÉTODO DE
CONCENTRACIÓN
• Método de Kato
• Técnica de Faust
• Método de Willis
• Método de Baermann
FIJACIÓN Y
TINCIÓN
PERMANENTE
• Tinción de Quensel
• Tinción de Kinyoun
• Solución acuosa de Azul de Metileno
• Hematoxilina Férrica

37. Directo (Salina y Lugol)
37
Salina:
0,85 grs NaCl en 100 mL agua destilada
Lugol:
Solución concentrada:
Yoduro de potasio……….10 grs
Cristales de yodo………...5 grs
Agua destilada…………...100 mL
Solución trabajo:
Solución concentrada………..5 mL
Agua destilada………………..15 mL
Almacenar en frasco ámbar

38. Métodos Diagnóstico
38
MÉTODO
DIRECTO
• Solución Salina al 0,85 %
• Solución Dobell y O’Connor o Lugol
MÉTODO DE
CONCENTRACIÓN
• Método de Kato
• Técnica de Faust
• Método de Willis
• Método de Baermann
FIJACIÓN Y
TINCIÓN
PERMANENTE
• Tinción de Quensel
• Tinción de Kinyoun
• Solución acuosa de Azul de Metileno
• Hematoxilina Férrica

39. Tinciones permanentes
39
Quistes de Entamoeba coli
Solución de Azul de Metileno
Trofozoíto de Dientamoeba fragilis
Colorante de Quensel

40. Tinciones permanentes
40
Quiste de Iodamoeba bütschlli
Colorante Hematoxilina Férrica
Quiste de Entamoeba coli
Colorante Tricrómica

41. Tinciones permanentes
41
Ooquistes de Cryptosporidium parvum
Colorante de Kinyoun
Ooquiste de Cystoisospora belli
Colorante de Kinyoun

42. Bibliografía
42
❖ Becerril MA. (2019). Parasitología Médica. 5ta Edición. México: Editorial McGraw-Hill Interamericana.
❖ Botero D, Restrepo M. (2019). Parasitosis humanas. 6ta Edición. Colombia: Corporación para Investigaciones Biológicas.
❖ Bustos D, Greco G, Yapur V, Facente A, Di Carlo M, Bustos F, Dapia A, Negri G. (2000). Quantification of fecal neutrophils
by MPO determination (myeloperoxidase) in patients with invasive diarrhea. Acta Gastroenterol Latinoam. 30(2): 85-87.
❖ Fine KD, Ogunji F. (2000). A new method of quantitative fecal fat microscopy and its correlation with chemically measured
fecal fat output. Am J Clin Pathol. 113: 528-534.
❖ Fine KD, Ogunji F, George J, Niehaus MD, Guerrant RL. (1998). Utility of a rapid fecal latex agglutination test detecting the
neutrophil protein, lactoferrin, for diagnosing inflammatory causes of chronic diarrhea. Am J Gastroenterol. 93(8): 1300-1305.
❖ Hómez J, Soto R, De Soto S, Méndez H, Mármol P. (2007). Parasitología, Libro de Texto. 11va Edición. Venezuela: Editorial
de la Universidad del Zulia (Ediluz).
❖ Incani RN. (2012). Guía de Parasitología. Venezuela: Escuela de Medicina, FCS- UC.
❖ John D, Petri W. (2020). Markell & Voge's Medical Parasitology. 10ma Edición. USA: Editorial W.B. Saunders.
❖ Rey L. (2008). Parasitología. 4ta Edición. Brasil: Editorial Guanabara-Koogan.
❖ Todd A, Sanford L, Davidsohn P. (1988). Diagnóstico y tratamiento clínicos por el laboratorio. 8va Edición. Tomo I.