Este documento describe el procedimiento para realizar un examen coprológico utilizando la técnica de Faust. Explica los materiales necesarios, las soluciones requeridas y los pasos a seguir para preparar y analizar una muestra fecal bajo el microscopio en busca de parásitos. Aunque los estudiantes no encontraron parásitos en su muestra, describen las ventajas y desafíos de esta técnica para el diagnóstico.

1. TITULAR DE LA MATERIA:
D.C. María Alejandra Favila Pérez
SEMESTRE ENERO-JUNIO DE 2018
FECHA DE ENTREGA: 4/Marzo/2018
Introducción
Actualmente, una persona se puede infectar con una gran variedad de parásitos
alrededor del mundo, cada uno con diferente patogenia y fisiología, causando
cuadros clínicos simples hasta algunos mortales si no son tratados con rapidez,
Docentes:
D.C. Ángel Licón Trillo
D.C. María Alejandra Favila Pérez
D.C. Alva Rocío Castillo González
QBP Martha Gpe Flores Silva
Q.B.P Sandra Gpe Chavarría Hidalgo
M.C. Guillermo Cuellar Nevarez
M.C. Karla Elva Loza Solano

2. pero para poder dar un tratamiento efectivo es necesario tener un diagnostico
concreto, y para ello, existen varios tipos de exámenes y pruebas que pueden
ayudar a establecer el diagnostico de forma rápida y segura, uno de ellos, que es el
que se comentara a continuación es el examen coprológico, cuyo objetivo es
detectar si existe alguna alteración en los parámetros normales que debe mantener
la materia fecal, ya que esto puede ser indicador de alguna patología que debe ser
revisada, se trata de un análisis físico, químico y microscópico de la materia fecal
en el cual se analiza el color, olor, consistencia, presencia de azucares reductores,
pH, presencia de sangre, pigmentos biliares, grasas, tripsina y citología del moco
fecal, si bien es cierto que existen varias técnicas de análisis dela muestra fecal, la
que se comentara a continuación y que se utilizara durante la práctica, es una de
las más conocidas, la técnica de Faust, desde 1938 cuando fue descrito este
método, fue bien recibido, en la actualidad es uno de los más utilizados en todo el
mundo, es similar al que describió Lane en 1924, aunque él utilizó solución saturada
de cloruro de sodio, como este método es poco eficaz para quistes; se utiliza más
el de Faust que es muy eficaz para estas formas parasitarias, esta es una técnica
que muestra una buena concentración de quistes de protozoarios, así como huevos
y larvas de helmintos, esta técnica tiene una gran ventaja, las formas parasitarias
se encuentran con facilidad, debido a que se eliminan la gran mayoría de residuos
y material orgánico que es tan común en las heces de los carnívoros, su limitante
es que es poco eficaz para huevos pesados como los de Taenia spp., la técnica se
basa en que los quistes y los huevos de los parásitos flotan en la superficie por ser
de menor densidad que el sulfato de zinc a 33,3%, cuya densidad es de
aproximadamente 1180. Es útil para buscar quistes y huevos de parásitos.
Material y equipo:
- Microscopio óptico.
- Portaobjetos limpio y seco.
- Cubreobjetos No 1 o No 2.

3. - Aplicador de madera.
- Marcador de vidrio.
- Suero fisiológico o solución salina fisiológica (0.85% de cloruro de sodio)
- Lugol parasitológico.
Soluciones:
Solución madre (o stock) de Lugol.
Iodo en cristales 2.5 g
Ioduro de potasio 5.0 g
Agua destilada 50 ml
Solución salina fisiológica (0.85% de cloruro de sodio)
Cloruro de sodio 8.5 g
Agua destilada 1000 ml
Solución de Lugol parasitológico.
Mezclar en matraz hasta disolver completamente los cristales. Guardar en frasco
oscuro rotulado como solución madre (o stock) de Lugol. Para utilizar, diluir 0.5 ml
de esta solución en 5.0 ml de agua destilada y mantener en frasco gotero color
ámbar rotulado como solución de Lugol parasitológico.
Procedimiento.
Se recomienda tomar de la muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción
y examinar el sedimento. Si la muestra contiene moco o sangre, hacer otra
preparación del moco, que es donde se pueden encontrar mayor número de
patógenos atrapados.
1. Colocar en un extremo del portaobjeto una gota de suero fisiológico y, con ayuda
de un aplicador, agregar 1 a 2 mg de materia fecal, homogenizar y cubrirla con un
cubreobjetos.
2. Colocar en el otro extremo de la lámina portaobjeto, una gota de lugol y proceder
a la aplicación de la muestra fecal como en el paso número 1.

4. 3. Con el suero fisiológico, los trofozoítos y quistes de los protozoarios se observan
en forma natural, y con Lugol se resaltan las estructuras internas como núcleos,
vacuolas de glucógeno y pared celular principalmente.
4. En algunos casos, se recomienda el uso de colorantes vitales, debido a que no
alteran la actividad del trofozoíto. Los más utilizados son verde brillante 0.2% y rojo
neutro 0.01%.
5. Observar a través del microscopio primero a 10X y después a 40X.
6. Recorrer la lámina siguiendo un sentido direccional, ejemplo: de derecha a
izquierda, o de arriba a abajo.
TÉCNICA DE FAUST.
Se basa en que los quistes y/o huevos de los parásitos flotan en la superficie por
ser de menor densidad que el sulfato de zinc a 33,3%, cuya densidad es 1180. Es
útil para la búsqueda de quistes y/o huevos de parásitos y excepcionalmente se
observan larvas. Se recomienda controlar la densidad del sulfato de zinc y usar agua
filtrada para el lavado previo de la muestra.
Material y equipo.
- Microscopio óptico.
- Balanza de 2 platos para equilibrar
- Centrífuga
- Gradilla para tubos de ensaye.
- Tubos de ensaye 15 x 150 o 13 x 100 mm
- Marcadores
- Portaobjetos.
- Cubreobjetos.
- Embudo pequeño de plástico de 5 cm de diámetro.
- Gasa quirúrgica en cuadrado de 16 x 16 cuádruple.
- Aplicadores de madera
- Abatelengua
- Pipeta graduada de 5 ml
- Solución de Lugol parasitológica.

5. - Solución de sulfato de zinc 33,3%, densidad 1,180
Procedimiento.
1- Con un abatelengua o aplicador de madera, tomar de 1-2 g de la muestra y
hacer una suspensión en un tubo de ensaye con agua destilada
2- Homogenizar la muestra y si es necesario agregar 3 ml de agua destilada.
3- Filtrar la muestra en un tubo de ensaye 15 x 150, mediante un embudo con
gasa.
4- Agregar de 7 a 10 ml de agua destilada o hasta alcanzar 1 a 2 cm por debajo
del borde del tubo (opcional)
.
5- Retirar el embudo con la gasa y centrifugar el tubo de 1 500 a 2 000 r.p.m.
de 2 a 3 minutos.

6. 6- Decantar o descartar el sobrenadante.
7- Adicionar agua al sedimento, homogeneizar y repetir la centrifugación 1 ó 2
veces, hasta que el sobrenadante se observe limpio (opcional).
8- Eliminar el sobrenadante y agregar de 2 a 3 ml de solución de sulfato de zinc
y agitar con aplicador de madera hasta suspender totalmente el sedimento,
completar con la misma solución hasta 1 cm abajo del borde del tubo sin
dejar de agitar.
9- Centrifugar de 2 000 a 2 500 r.p.m por 1 a 2 minutos (los tubos deben estar
en posición vertical en la centrífuga no inclinada).
10- Con mucho cuidado sin agita el tubo, colocarlo en la gradilla y tomar de 3 a
4 asadas de la película superficial y colocarlas sobre un portaobjetos.
11- Agregar una gota de Lugol parasitológico y cubrir con un cubreobjetos y
observar al microscopio.
12- Observar a través del microscopio en 10x y 40x, en busca de quistes y
huevos principalmente.
Resultados
Llamamos restos no parasitarios a una gran cantidad de elementos, de origen
endógeno o exógeno, que pueden estar presentes en la materia fecal. En algunos
casos su presencia es normal y en otros puede estar asociado a determinadas
patologías.
Lamentablemente en nuestra muestra no pudimos percatarnos de la presencia de
algun parazito.

7. 40x
40x
Discusión
Una de las complicaciones que presenta la práctica, específicamente frente a los
estudiantes de medicina, es la obtención de una muestra que presente grandes
probabilidades de reportarse como positiva, ya que los pacientes muestran poca
cooperación debido al asqueo que presentan sobre la muestra, cosa que prefieren
evitar y hacer sólo cuando sea necesario y su médico se los pida. Es difícil encontrar
personas colaborativas.
Otras de las complicaciones que nos topamos a la hora de realizar el experimento
es en relación a la película superficial que se forma a raíz de la última centrifugación
por dos razones: la primera es que es muy fácil que se mezcle y se pierda con
cualquier movimiento, por lo que es importante mantener el tubo de ensaye lo más

8. quieto posible; y la segunda es que es difícil tomar una muestra de la película debido
a que es muy delgada.
Por último, como ya describimos anteriormente, nuestros resultados dieron
negativos, pero, aún si hubieran dado positivos, nos imaginamos que sería difícil
describir con exactitud la especie a identificar ya que es la primera vez que
realizamos este método, por lo que no sabemos exactamente cómo es lo que
estamos buscando, ya que creemos que la realidad es diferente a los libros, y sólo
se podrá obtener una muy buena observación con mucha práctica.
Conclusión
Pensamos que es una muy buena técnica, ya que es sencilla, práctica, con muy
pocas complicaciones y rápida en manos de expertos, pero que aun así es difícil
encontrar una especificidad elevada.
Bibliografia
http://www.webveterinaria.com/virbac/news25/compania.pdf