- Directo o en fresco. 1. Obtén una muestra fresca de heces en un recipiente limpio y seco. 2. ⁠Utiliza un hisopo o una espátula limpia para tomar una pequeña porción de la muestra. 3. ⁠Coloca la muestra en un portaobjetos limpio y añade una gota de solución salina o agua destilada. 4. ⁠Cubre la muestra con un portaobjetos o una cubierta protectora. 5. ⁠Observa la muestra bajo el microscopio, utilizando diferentes aumentos para detectar parásitos móviles como Giardia o Trichomonas.

1. FORMAS DE
PREPARACIÓN DE
LAS MUESTRAS DE
HECES

2. 1. Obtén una muestra fresca de heces en un recipiente limpio y seco.
2. Utiliza un hisopo o una espátula limpia para tomar una pequeña porción de la
muestra.
3. Coloca la muestra en un portaobjetos limpio y añade una gota de solución
salina o agua destilada.
4. Cubre la muestra con un portaobjetos o una cubierta protectora.
5. Observa la muestra bajo el microscopio, utilizando diferentes aumentos para
detectar parásitos móviles como Giardia o Trichomonas.

3. 1. Preparar el material para tenerlo cerca
2. Homogeneizar la muestra fecal dentro de la bolsa contenedora
3. Poner en un vaso de 3 a 5 gramos de heces
4. Agregar solución saturada de sal
5. Mezclarla con una cuchara hasta formar una pasta homogénea
6. Diluir con más solución, aproximadamente 100 mL
7. Filtrar a través de un tamiz o coladera de plástico de malla
fina a un segundo vaso
8. Dejar reposar 15 minutos
9. Flamear un asa microbiológica en un mechero
10. Tomar tres gotas separadas de la superficie de la solución con un
asa de muestreo
11. Depositar las gotas en un portaobjetos

4. 12.Observar con el objetivo 10X. Si se requiere examinar con el objetivo 40X es
necesario poner un cubreobjetos sobre la gota.
13. Cuando la muestra es escasa, por ejemplo, en ratones y aves de ornato, se
puede utilizar la siguiente variante de la técnica: Después de filtrar al segundo vaso
se homogeneiza la suspensión y se vierte en un tubo de ensayo de 15 mL hasta el
borde del tubo formando un menisco, se coloca un cubreobjetos sobre el menisco y
se deja reposar de 10 a 15 minutos, después se retira el cubreobjetos y se coloca
sobre un portaobjetos para su observación en el microscopio.

5. 1. Identificación de cada una de las muestras que se vaya a examinar.
2. En un tubo de boca ancha mezclar 7 ml de formalina al 10% o bien SAF (sodium
acetato formalina) con 1 gr de heces aproximadamente (el tamaño de una avellana),
ayudándose de varillas de madera, hasta conseguir una suspensión turbia. Tirar las
varillas en el recipiente o contenedor acondicionado para desechar el material
infeccioso.
3. Dejar reposar 15 minutos la muestra.
4. Colar la muestra utilizando un colador de café (diámetro de poro 425 μ) y verter el
filtrado en un tubo limpio. Lavar cuidadosamente el colador para evitar contaminación
cruzada entre las muestras.
5. Añadir 3 ml de acetato de etilo (o en su defecto éter) y mezclar bien durante 15
segundos.
6. Transferir a un tubo cónico de centrífuga y centrifugar durante 3 minutos a 3000
rpm. Si el equipo no alcanza esta velocidad, se harán 2 centrifugaciones consecutivas
a 1500 rpm de 2 minutos cada una. Recuerde que la centrífuga debe estar equilibrada
(tubos enfrentados con la misma cantidad).

6. Una vez concluida la centrifugación deben observarse 4 capas en el tubo (acetato de
etilo – tapón de residuos – formalina – sedimento) tal y como muestra la imagen.
9. Despegar cuidadosamente el tapón de residuos para evitar que caiga en el
sedimento y verter el contenido líquido del tubo (acetato de etilo y formalina) en
un contenedor para residuos evitando que caiga el sedimento. En el sedimento
se encontrarán las formas parasitarias a estudiar.
10. Mezclar bien el sedimento con ayuda de una pipeta y transferir una gota a
un
portaobjetos limpio.
11. Colocar sobre la preparación un cubreobjetos.
12. Examinar al microscopio con objetivos 10x y 40x.