Indice. introducción 3. casos de células linfoides anormales 5. casos de células inmaduras de tipo mieloide 25

2. INDICE
Introducción 3
Casos de células linfoides anormales 5
Casos de células inmaduras de tipo mieloide 25
Casos de células de apariencia específica 45
´

3. INTRODUCCION
Como parte de los proyectos de colaboración internacional, frecuentemente visito laboratorios clínicos en
ciudades del sudeste de Asia. En cada visita me he quedado impresionado por el conocimiento que tienen
sobre las más recientes pruebas clínicas, su gran deseo por aprender y la atmósfera energética que existe en
el lugar de trabajo. Algunos de estos laboratorios han introducido pruebas con métodos de punta, incluyendo
la tecnología de PCR, mientras que otros están tratando de alcanzar la sistematización. No obstante, el
desarrollo es lento debido a las inadecuadas condiciones sociales y financieras, aunque esto mejorará tanto
como la economía crezca en el futuro.
En los laboratorios de hematología de instituciones médicas de estas ciudades del sudeste de Asia, las
mediciones automatizadas de sangre se están incrementando e incluyen los más recientes parámetros en
hematíes y plaquetas, como por ejemplo, el cambio del diferencial de tres partes al de cinco partes en la cuenta
de leucocitos.
Además, está aumentando el reconocimiento a la importancia que debe tener la calidad de los análisis. Pese
a ello, con la actual difusión de modernos analizadores multiparamétricos totalmente automatizados, algunos
sectores tienen temor a que las técnicas de microscopio se pierdan. Este es un tema que debe recibir atención
en los entrenamientos técnicos y médicos, mientras tanto, no se debe concluir que la automatización del
diferencial es algo malo.
Los analizadores automatizados del diferencial de leucocitos pueden proveer cuentas exactas y precisas de las
células presentes con alto nivel de veracidad. Esto permite al personal del laboratorio tener tiempo suficiente
para la examinación microscópica de las pocas muestras que no pueden ser manejadas por los equipos. Esto
se debe aplicar no sólo en el sudeste de Asia, sino también en todo el mundo.
Sin embargo, para usar los analizadores automatizados del diferencial de leucocitos eficiente y efectivamente,
los laboratorios deben establecer estrategias para reconocer anormalidades en los histogramas y disper-
sogramas. También se deben establecer estrategias para el manejo de avisos y mensajes de interpretación
proveídos por el instrumento.
Métodos eléctricos, ópticos _y ahora sistemas híbridos_ son ampliamente aceptados para la diferenciación de
leucocitos debido a la superioridad que tienen en cuanto a precisión, exactitud y rapidez. No obstante, con el
impresionante aumento en la velocidad del proceso de cómputo, en esta etapa de información en tecnología
puede ser que esta actitud requiera de una reevaluación en un futuro cercano. Muchos hematólogos tienen
más confianza en las características morfológicas encontradas en una tinción o coloración Giemsa par-
ticularmente para células raras . Por esta razón, es previsible que para un futuro cercano los técnicos y doctores
deban mantener sus habilidades en la identificación de células por microscopio mientras aprecian el valor de
los analizadores automatizados en la rutina práctica.
Espero que la presente literatura les sea útil en el trabajo diario.
Diciembre, 2000
Noriyuki Tatsumi
Profesor,
Departamento de Clínica y Laboratorio Médico,
Escuela de Medicina de la Universidad de Osaka, Osaka (Japón)
3
´

5. 5
CASOS DE CELULAS LINFOIDES ANORMALES
Leucemia de adultos célula tipoT (LAT) (1) 6
Leucemia de adultos célula tipoT (LAT) (2) 8
Leucemia de células peludas (LCP) (tipo japonés) 10
Caso de leucomogénesis a partir de un linfoma 12
Linfoma maligno (LM) 14
Linfoma linfocítico granular grande (LLGG) 16
Leucemia prolinfocítica-T (LPL-T) 18
Reincidencia de leucemia linfocítica aguda tipoT (LLA-T) 20
Leucemia linfocítica aguda tipo B (LLA-B) 22
´

6. Diferencial manual
Banda 5.0 [%]
Segmentados 65.5 [%]
Linfocitos 17.0 [%]
Monocitos 5.0 [%]
Eosinófilos 3.0 [%]
Basófilos 0.5 [%]
Mielocitos 1.0 [%]
Células atípicas 3.0 [%]
6
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Casos de células linfoides anormales
WBC & 6.56 [109
/L]
RBC 3.74 [1012
/L]
HGB 141 [g/L]
HCT 38.8 [%]
MCV 103.7 [fL]
MCH 37.7 [pg]
MCHC 363 [g/L]
PLT 63 * [109
/L]
RDW-SD 56.2 + [fL]
RDW-CV 14.8 [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT 3.31 * [109
/L] 50.4 * [%]
LYMPH & 2.53 * [109
/L] 38.6 * [%]
MONO 0.55 * [109
/L] 8.4 * [%]
EO 0.07 * [109
/L] 1.1 * [%]
BASO 0.10 [109
/L] 1.5 + [%]
NRBC 0.06 [109
/L] 0.9 [/100WBC]
RET 1.49 [%] 55.7 [109
/L]
IRF 10.3 [%]
LFR 89.7 [%]
MFR 9.3 [%]
HFR 1.0 [%]
Leucemia de adultos célula tipo T (LAT) (1)
Observaciones
El límite confuso entre las áreas de linfocitos y monocitos en el dispersograma DIFF (indicado por )
sugiere la presencia de células linfoides anormales en este lugar. Estos puntos corresponden a los
linfocitos atípicos de LAT (de los cuales se encontraron 3% en la sangre periférica). La aparición del
aviso “Abn Lympho/L_Blasts?” demuestra la excelente sensibilidad del canal DIFF para detectar células
linfocíticas anormales.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
WBC IP Messages
Abn Lympho/L_Blasts
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
PLT Clumps (S)?

7. 7
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Otros
CD2 86.1 CD20 7.9 CD25 51.4
CD3 75.4 HLA-DR 31.4
CD4 54.8
CD7 72.9
CD8 24.6
Observaciones
Resultados positivos para marcadores CD7
y CD25. El valor de CD4 no aumentó signi-
ficativamente, lo que sugiere que las célu-
las LAT no se incrementaron.
Observaciones
Se encontraron células segmentadas, enclavadas y
onduladas (también conocidas como “células en flor”)
entre linfocitos maduros.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000)
Tinción May-Giemsa Tinción May-Giemsa Tinción May-Giemsa
(x 1000) (x 1000)

8. 8
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Casos de células linfoides anormales
Leucemia de adultos célula tipo T (LAT) (2)
WBC 24.58 + [109
/L]
RBC 4.77 [1012
/L]
HGB 165 [g/L]
HCT 48.0 [%]
MCV 100.6 [fL]
MCH 34.6 [pg]
MCHC 344 [g/L]
PLT 145 [109
/L]
RDW-SD 50.1 [fL]
RDW-CV 13.6 [%]
PDW 16.4 [fL]
MPV 12.8 [fL]
P-LCR 49.1 + [%]
PCT 0.18 [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.22 [109
/L] 0.9 [%]
BASO 0.09 [109
/L] 0.4 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 1.17 [%] 55.8 [109
/L]
IRF 4.5 [%]
LFR 95.5 [%]
MFR 3.8 [%]
HFR 0.7 [%]
Observaciones
El límite confuso entre las áreas de monocitos y linfocitos en el dispersograma DIFF (indicado por )
sugiere la presencia de células linfoides anormales. Fueron consideradas como células LAT (encontra-
das en un 60% en la sangre periférica).
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 4.0 [%]
Segmentados 19.0 [%]
Linfocitos 13.0 [%]
Monocitos 4.0 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 0.5 [%]
Células atípicas 59.5 [%]
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Atypical Lympho?
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

9. 9
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Otros
CD2 91.6 CD10 7.7 CD25 82.3
CD3 91.5 CD19 6.2
CD4 84.1 CD20 6.7
CD5 94.5 CD23 4.6
CD7 19.5
CD8 7.6
Observaciones
El alto índice de positividad para CD4 y CD25
sugiere células T tumorales, mientras que el
bajo índice de positividad para CD7 sugiere
leucemia T crónica o aguda en adulto. Este
caso fue diagnosticado como LAT aguda.
Observaciones
Se encontró un signi-
ficativo número de
linfocitos con forma
de flor segmentada.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000)
Tinción May-Giemsa Tinción May-Giemsa
(x 1000)

10. 10
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Casos de células linfoides anormales
Leucemia de células peludas (LCP) (tipo japonés)
WBC 25.43 + [109
/L]
RBC 4.24 [1012
/L]
HGB 147 [g/L]
HCT 42.5 [%]
MCV 100.2 [fL]
MCH 34.7 [pg]
MCHC 346 [g/L]
PLT 211 [109
/L]
RDW-SD 57.1 + [fL]
RDW-CV 15.5 [%]
PDW 10.4 [fL]
MPV 10.1 [fL]
P-LCR 23.0 [%]
PCT 0.21 [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.30 [109
/L] 1.2 [%]
BASO 0.07 [109
/L] 0.3 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 0.78 [%] 33.1 [109
/L]
IRF 9.4 [%]
LFR 90.6 [%]
MFR 8.3 [%]
HFR 1.1 [%]
Observaciones
Este es un caso de leucemia de células peludas (LCP). En el dispersograma DIFF se formó un grupo
de puntos en la región del área de linfocitos hacia el área de monocitos (indicado por ), lo que
sugiere la presencia de células peludas.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 0.5 [%]
Segmentados 8.5 [%]
Linfocitos 23.5 [%]
Monocitos 0.0 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 2.0 [%]
Células peludas 65.5 [%]
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Atypical Lympho?
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

11. 11
Datos (sangre periférica)
Células T Células B Moléculas de
adhesión celular
CD2 32.6 CD19 69.3 CD11a 69.0
CD3 40.6 CD20 63.9 CD11c 97.3
CD4 18.6 CD24 3.7
CD5 29.4 CD38 14.9 Otros
CD8 17.0 FMC7 80.4 CD25 20.0
SM-IgD 1.5
SM-IgM 37.7
SM-IgA 7.7
SM-IgG 78.2
SM-IgT 75.4
SM-IgK 4.5
SM-IgL 2.4
Observaciones
Resultados positivos para marcadores
CD19 y CD20, lo que sugiere un tumor
de tipo célula B. CD11c-positivo, CD24-
negativo y FMC7-positivo indican leu-
cemia de células peludas. El valor bajo
para CD25 sugiere que la leucemia es
de tipo japonés.
Observaciones
Se observan células en forma de huevo frito. En el frotis están presentes células peludas con
numerosas proyecciones. En la tinción de fosfatasa ácida se encontraron células granulares
grandes que contienen una o dos células débilmente positivas, las cuales fueron resistentes
al tartrato. Se sabe que la leucemia de células peludas de tipo japonés muestra positividad
débil en la tinción de fosfatasa ácida.
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000)
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Prueba resistente al tartrato
*La mayoría de laboratorios japoneses usan un ventilador para secar sus tinciones o coloraciones de sangre periférica.
Tinción May-Giemsa
(*secado con un ventilador)
Tinción May-Giemsa
(*secado con un ventilador)
Tinción May-Giemsa
(aire seco)
Tinción de fosfatasa ácida
(x 1000) (x 1000)
(x 1000)
(x 1000)

12. Diferencial manual
Banda 3.5 [%]
Segmentados 2.5 [%]
Linfocitos 8.5 [%]
Monocitos 0.5 [%]
Eosinófilos 1.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Mielocitos 1.0 [%]
Células anormales 82.5 [%]
(Blastos +)
Hematíes nucleados 2.5/100 leucocitos
12
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Casos de células linfoides anormales
Caso de leucomogénesis a partir de un linfoma
WBC & 14.25 [109
/L]
RBC 4.00 [1012
/L]
HGB 113 [g/L]
HCT 34.0 [%]
MCV 85.0 - [fL]
MCH 28.3 [pg]
MCHC 332 [g/L]
PLT & 20 - [109
/L]
RDW-SD 46.5 [fL]
RDW-CV 15.0 [%]
PDW 8.7 - [fL]
MPV 10.7 [fL]
P-LCR 29.6 [%]
PCT 0.02 - [%]
NEUT 2.19 * [109
/L]15.3* [%]
LYMPH & 10.64 * [109
/L] 74.7* [%]
MONO 0.98 * [109
/L] 6.9* [%]
EO 0.19 * [109
/L] 1.3* [%]
BASO 0.25 * [109
/L] 1.8* [%]
NRBC 0.57 [109
/L] 4.0 [/100WBC]
RET 0.36 [%] 14.4 [109
/L]
IRF 20.2 [%]
LFR 79.8 [%]
MFR 15.0 [%]
HFR 5.2 [%]
Observaciones
El límite confuso entre las áreas de linfocitos y monocitos en el dispersograma DIFF (indicado por )
sugiere la presencia de células linfoides anormales, ya que representan la mayoría en el frotis.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
WBC IP Messages
Lymphocytosis
Basophilia
NRBC Present
Blasts?
Immature Gran?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages
Thrombocytopenia

13. Células T Células B Granulocitos/ Moléculasde
Monocitos adhesióncelular
CD2 94.0 CD10 69.0 CD13 4.6 CD11a 95.7
CD3 41.8 CD19 2.2 CD14 1.8 CD11b 5.5
CD4 78.3 CD20 2.2 CD15 1.9 CD11c 4.2
CD5 92.9 CD23 4.9 CD16 3.9 CD18 96.8
CD7 95.6 CD38 89.6 CD33 5.5 CD41 1.7
CD8 79.3 HLA-DR 6.7 CD34 1.8
Plaquetas Células NK Otros
CD36 1.8 CD56 68.8 CD25 12.0
CD42 1.8
13
Observaciones
Los datos sugieren que
existe una proliferación
neoplásica de células
pre-T, las cuales son CD3
negativas; y CD4, CD8,
CD10 y CD56 fueron
positivas.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción May-Giemsa
Observaciones
Predominan pequeñas células con particiones celulares, las cuales
se consideran como células de linfoma (82.5% del total).También se
observa un pequeño número de células grandes y blastos.
(x 1000) (x 1000) (x 1000)
Tinción May-Giemsa Tinción May-Giemsa
Datos (sangre periférica)

14. 14
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Casos de células linfoides anormales
Linfoma maligno (LM)
WBC 14.12 [109
/L]
RBC 4.24 [1012
/L]
HGB 116 [g/L]
HCT 35.9 [%]
MCV 84.7 - [fL]
MCH 27.4 [pg]
MCHC 323 [g/L]
PLT 217 [109
/L]
RDW-SD 40.3 [fL]
RDW-CV 13.4 [%]
PDW 13.8 [fL]
MPV 12.1 [fL]
P-LCR 40.6 [%]
PCT 0.26 [%]
NEUT 10.80 * [109
/L] 76.5 * [%]
LYMPH 1.77 * [109
/L] 12.5 * [%]
MONO 1.34 * [109
/L] 9.5 * [%]
EO 0.15 [109
/L] 1.1 [%]
BASO 0.06 [109
/L] 0.4 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 2.74 [%] 116.2 [109
/L]
IRF 25.0 [%]
LFR 75.0 [%]
MFR 19.9 [%]
HFR 5.1 [%]
Observaciones
El límite confuso entre las áreas de linfocitos y monocitos en el dispersograma DIFF (indicado por )
sugiere la presencia de células linfoides anormales, las cuales fueron clasificadas como células de lin-
foma maligno (3.5% del total del frotis). Aparece la alarma “Abn Lympho/L_Blasts?”
.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 8.5 [%]
Segmentados 74.0 [%]
Linfocitos 6.5 [%]
Monocitos 7.0 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Células linfoma
maligno 3.5 [%]
WBC IP Messages
Monocytosis
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

15. 15
Información obtenida del análisis del frotis
Tinción May-Giemsa
Observaciones
Se encontraron células
grandes de linfoma pro-
pensas a la segmen-
tación y blastos (3.5%
del total) en el frotis.
(x 1000)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa

16. 16
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Casos de células linfoides anormales
Linfoma linfocítico granular grande (LLGG)
WBC 30.65 +[109
/L]
RBC 3.56 [1012
/L]
HGB 100 [g/L]
HCT 30.6 [%]
MCV 86.0 [fL]
MCH 28.1 [pg]
MCHC 327 [g/L]
PLT 125 [109
/L]
RDW-SD 46.5 [fL]
RDW-CV 14.8 [%]
PDW 13.1 [fL]
MPV 10.7 [fL]
P-LCR 31.8 [%]
PCT 0.13 - [%]
NEUT 1.45 *[109
/L] 4.7 * [%]
LYMPH 28.75 *[109
/L]93.8 * [%]
MONO 0.37 *[109
/L] 1.2 * [%]
EO 0.03 [109
/L] 0.1 [%]
BASO 0.05 [109
/L] 0.2 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 1.11 [%] 39.5 [109
/L]
IRF 6.8 [%]
LFR 93.2 [%]
MFR 5.9 [%]
HFR 0.9 [%]
Observaciones
Linfocitos granulares grandes (90% en el frotis) aparecen en el área de linfocitos del dispersograma
DIFF
, los cuales mostraban mayor dispersión lateral que los linfocitos normales debido a su gran con-
tenido granular (indicado por ).
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 0.0 [%]
Segmentados 11.0 [%]
Linfocitos 1.5 [%]
Monocitos 1.5 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Linfocitos granulares
grandes 86.0 [%]
WBC IP Messages
Lymphocytosis
Leukocytosis
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

17. 17
Observaciones
La mayoría de linfocitos son
grandes y contienen gránulos.
Tinción May-Giemsa
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000)
Células T Células B Granulocitos/ Células NK
Monocitos
CD2 99.7 CD10 1.1 CD16 98.5 CD56 98.9
CD3 99.6 CD19 0.9
CD4 99.0 CD20 0.8
CD5 99.5 HLA-DR 9.2
CD7 82.9 Otros
CD8 87.4 apagado CD25 18.5
Observaciones
Los datos sugieren una proli-
feración neoplásica de célu-
las positivas para CD3, CD4,
CD8 apagado, CD16 y CD56.
El linfoma linfocítico granular
grande es clasificado en célu-
las tipo T o células nulas. Es
raro aun para células tipoT el
expresar CD4.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Datos (sangre periférica)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

18. 18
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC 14.20 [109
/L]
RBC 5.53 + [1012
/L]
HGB 178 + [g/L]
HCT 53.8 + [%]
MCV 97.3 [fL]
MCH 32.2 [pg]
MCHC 331 [g/L]
PLT 185 [109
/L]
RDW-SD 47.6 [fL]
RDW-CV 13.3 [%]
PDW 12.7 [fL]
MPV 11.0 [fL]
P-LCR 33.2 [%]
PCT 0.20 [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH 9.84 * [109
/L] 69.3* [%]
MONO 0.51 * [109
/L] 3.6* [%]
EO 0.09 [109
/L] 0.6 [%]
BASO ---- [109
/L] ---- [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 1.16 [%] 64.1 [109
/L]
IRF 7.1 [%]
LFR 92.9 [%]
MFR 6.0 [%]
HFR 1.1 [%]
Casos de células linfoides anormales
Leucemia prolinfocítica-T (LPL-T)
Observaciones
El límite confuso entre las áreas de linfocitos y monocitos en el dispersograma DIFF (indicado por )
sugiere la aparición de células linfoides anormales segmentadas, las cuales fueron encontradas en el
frotis.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 3.0 [%]
Segmentados 30.5 [%]
Linfocitos 41.5 [%]
Monocitos 1.0 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 2.0 [%]
Células anormales 21.5 [%]
(células segmentadas +)
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Lymphocytosis
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

19. 19
Observaciones
Se encontró un importante número de células anormales linfocíticas con cúmulos burdos
en la cromatina y nucléolos claros y poco claros.
Los hallazgos por los cuales este paciente fue diagnosticado con leucemia prolinfocítica
fueron leucocitosis, nódulos linfáticos y bazo inflamados, así como por los resultados de
la citometría de flujo y el análisis del frotis de la sangre periférica.
Tinción May-Giemsa
Información obtenida del análisis del frotis
(x 1000)
Células T Células B Granulocitos/ Células NK
Monocitos
CD2 95.4 CD10 < 1.0 CD16 7.8 CD56 8.1
CD3 95.2 CD19 1.8
CD4 95.2 CD20 1.9
CD5 90.9 HLA-DR 5.9
CD7 97.5
CD8 1.4
Observaciones
El alto índice de positividad
(por encima del 90%) para
CD2, CD3, CD4, CD5 y CD7
sugiere un incremento signifi-
cativo en célulasT.
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Datos (sangre periférica)

20. 20
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 3.16 [109
/L]
RBC 2.82 [1012
/L]
HGB 86 [g/L]
HCT 25.3 - [%]
MCV 89.7 [fL]
MCH 30.5 [pg]
MCHC 340 [g/L]
PLT & 21 - [109
/L]
RDW-SD 51.3 [fL]
RDW-CV 15.9 [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT 1.44* [109
/L] 45.6 * [%]
LYMPH & 0.77* [109
/L] 24.4 * [%]
MONO 0.94* [109
/L] 29.7 * [%]
EO 0.00* [109
/L] 0.0 * [%]
BASO 0.01* [109
/L] 0.3 * [%]
NRBC 0.16 [109
/L] 5.0 [/100WBC]
RET 0.50 [%] 14.1 [109
/L]
IRF 16.2 [%]
LFR 83.8 [%]
MFR 13.7 [%]
HFR 2.5 [%]
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Observaciones
El espacio ocupado por los monocitos es más grande de lo normal en el dispersograma DIFF y se
extiende al área de fluorescencia lateral alta. Se puede concluir que los blastos grandes y segmen-
tados se encuentran localizados en esta área (indicado por ). Los blastos constituyeron el 21% en
el diferencial manual.
Casos de células linfoides anormales
Reincidencia de leucemia linfocítica aguda tipo T (LLA-T)
Diferencial manual
Banda 9.0 [%]
Segmentados 30.5 [%]
Linfocitos 9.0 [%]
Monocitos 26.0 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Mielocitos 2.5 [%]
Metamielocitos 1.5 [%]
Linfocitos atípicos 0.5 [%]
Blastos 21.0 [%]
(Células segmentadas grandes)
monocitos grandes +
Hematíes nucleados 4/100 leucocitos
WBC IP Messages
Lymphopenia
NRBC present
Blasts?
Immature Gran?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thrombocytopenia

21. Células T Células B Granulocitos/ Moléculasdeadhesióncelular
Monocitos
CD2 99.7 CD10 0.6 CD13 3.5 CD11b 61.7
CD3 97.0 CD19 0.2 CD15 2.2 CD41 0.5
CD4 1.7 CD20 0.5 CD33 0.7
CD7 79.9 HLA-DR 1.8 CD34 0.6
CD8 6.9
Células NK Otros
CD56 43.2 CD25 0.6
21
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Se concluyó que este
caso era una leucemia
aguda tipo T. Fue posi-
tiva para CD3 y nega-
tiva para CD4 y CD8.
Datos (sangre periférica)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Observaciones
Esta es una leucemia aguda tipoT recurrente. Los blastos (21% en
el frotis) tienen una elevada relación núcleo/citoplasma (N/C), un
solo núcleo por célula y cromatina burda.

22. 22
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 152.26@ [109
/L]
RBC 2.02 - [1012
/L]
HGB 58 - [g/L]
HCT 17.8 - [%]
MCV 88.1 [fL]
MCH 28.7 [pg]
MCHC 326 [g/L]
PLT & 45 * [109
/L]
RDW-SD 51.2 [fL]
RDW-CV 17.9 + [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.03 * [109
/L] 0.0*[%]
BASO 0.29 * [109
/L] 0.2*[%]
NRBC 0.13 * [109
/L] 0.1*[/100WBC]
RET 0.86 [%] 17.4 [109
/L]
IRF 21.4 [%]
LFR 78.6 [%]
MFR 14.8 [%]
HFR 6.6 [%]
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Observaciones
Los blastos (90% en el frotis) aparecen en el área de linfocitos y monocitos del dispersograma DIFF
(indicado por ), pero muestran menos fluorescencia lateral que en el caso de LLA-T ilustrado en
las páginas 20 y 21.
Casos de células linfoides anormales
Leucemia linfocítica aguda tipo B (LLA-B)
Diferencial manual
Banda 0.0 [%]
Segmentados 0.5 [%]
Linfocitos 6.0 [%]
Monocitos 0.0 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Blastos 93.0 [%]
(pocas células hendidas y
células segmentadas)
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Basophilia
Leukocytosis
Blasts?
Immature Gran?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Trombocytopenia
PLT Clumps?

23. 23
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Células T Células B Granulocitos/ Moléculas de
Monocitos adhesión celular
CD2 5.6 CD10 94.5 CD13 56.3 CD11a 81.5
CD3 3.5 CD19 92.7 CD14 0.6 CD11b 72.0
CD4 3.6 CD20 0.2 CD15 0.8 CD18 90.9
CD5 4.2 CD23 1.4 CD16 2.7 CD41 0.5
CD7 5.3 CD38 53.4 CD33 44.8
CD8 3.6 HLA-DR 93.9 CD34 92.7
Plaquetas Células NK Otros
CD36 66.0 CD56 2.3 CD25 80.4
CD42 2.7
Observaciones
CD10 y CD19 positivos,
así como CD20 negativo,
sugieren una prolifera-
ción neoplásica de célu-
las pre-B. A estas células
se les ha considerado bi-
fenotípicas, ya que fue-
ron positivas para CD13
y CD33.
Observaciones
Predominan blastos pequeños con una elevada relación
núcleo/citoplasma (N/C). Se observó la presencia de algunas
células segmentadas o con cisuras.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)
Datos (sangre periférica)

24. 24
Por: Ken-ichi Anami, MT, Gerente del laboratorio clínico del Hospital Nacional Miyakonojo, Japón.

25. 25
CASOS DE CELULAS INMADURAS DE TIPO MIELOIDE
Síndrome mielodisplásico (SMD)-AR 26
LMC crisis blástica-1 28
LMC crisis blástica-2 30
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M2 32
Leucemia mieloide aguda (LMA) variante forma-M3 34
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M4(1) 36
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M4(2) 40
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M5b 42
´

26. Observaciones
Este caso es una variante del síndrome mielodisplásico con anemia refractoria. La agrupación de
neutrófilos en el dispersograma DIFF es anormal y se extiende desde el área de los fantasmas (indicado
por ), lo que sugiere una dispersión lateral reducida y por lo tanto un menor contenido de gránulos.
Esto fue confirmado en el examen de sangre periférica. Las plaquetas gigantes encontradas en el frotis
fueron identificadas con una fluorescencia alta en el dispersograma PLT-O (indicado por ) y aparecen
por encima de los 20fL en el histograma PLT (indicado por ). Debido a ello, la información obtenida
en el dispersograma PLT-O fue usada para el reporte.
26
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 4.29 [109
/L]
RBC 3.62 [1012
/L]
HGB 122 [g/L]
HCT 38.0 [%]
MCV 105.0 [fL]
MCH 33.7 [pg]
MCHC 321 [g/L]
PLT & 27 - [109
/L] (PLT-I : 13)
RDW-SD 66.2 + [fL]
RDW-CV 17.3 + [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT 2.92 * [109
/L] 68.0 * [%]
LYMPH & 0.66 * [109
/L] 15.4 * [%]
MONO 0.17 * [109
/L] 4.0 * [%]
EO 0.44 * [109
/L] 10.3 * [%]
BASO 0.10 * [109
/L] 2.3 * [%]
NRBC 0.14 [109
/L] 3.2 [/100WBC]
RET 2.75 [%] 99.6 [109
/L]
IRF 20.8 [%]
LFR 79.2 [%]
MFR 14.8 [%]
HFR 6.0 [%]
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
Síndrome mielodisplásico (SMD)-AR
WBC IP Messages
Lymphopenia
NRBC Present
RBC/RET IP Messages
Anisocytosis
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Trombocytopenia
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
PLT PLT-O
RF
FSC
SFL
Diferencial manual
Banda 2.5 [%]
Segmentados 66.5 [%]
Linfocitos 15.0 [%]
Monocitos 3.5 [%]
Eosinófilos 6.5 [%]
Basófilos 5.0 [%]
Blastos 1.0 [%]
Hematíes
nucleados 2.5/100leucocitos

27. 27
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Están presentes neutrófilos hiperseg-
mentados, plaquetas gigantes y eri-
troblastos con nucléolos bilobula-
dos, todos característicos del síndro-
me mielodisplásico. Se encontraron
blastos en una proporción del 1%.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

28. 28
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 26.87 *[109
/L]
RBC 2.72 [1012
/L]
HGB 84 [g/L]
HCT 25.2 - [%]
MCV 92.6 [fL]
MCH 30.9 [pg]
MCHC 333 [g/L]
PLT & 31 *[109
/L]
RDW-SD 51.2 [fL]
RDW-CV 17.8 +[%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.18 *[109
/L] 0.7 * [%]
BASO 0.13 *[109
/L] 0.5 * [%]
NRBC 0.29 *[109
/L] 1.1 * [/100WBC]
RET 3.67 [%] 99.8 [109
/L]
IRF 22.6 [%]
LFR 77.4 [%]
MFR 17.8 [%]
HFR 4.8 [%]
Observaciones
En el dispersograma DIFF se puede observar en el área de monocitos una agrupación grande de
puntos, la cual se extiende en la dirección de mayor fluorescencia lateral (indicado por ). Esto
concuerda con la presencia de blastos encontrados en la sangre periférica.
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
LMC crisis blástica-1
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 14.0 [%]
Segmentados 22.5 [%]
Linfocitos 2.5 [%]
Monocitos 5.0 [%]
Eosinófilos 1.0 [%]
Basófilos 1.0 [%]
Blastos 38.5 [%]
Mielocitos 9.5 [%]
Metamielocitos 6.0 [%]
Hematíes nucleados 1.0 /100 leucocitos
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Blasts?
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thombocytopenia
PLT Clumps?
*Parámetros de investigación
Otros 9.71 [109
/L] 36.1 [%]

29. Células T Células B Granulocitos/ Moléculas de
Monocitos adhesión celular
CD2 2.0 CD10 6.1 CD13 99.8 CD11a 97.7
CD3 5.2 CD19 1.2 CD14 76.2 CD11b 92.2
CD4 88.0 CD20 1.2 CD15 81.8 CD18 98.0
CD5 1.9 CD38 96.0 CD16 67.8 CD41 6.1
CD7 3.4 HLA-DR 15.3 CD33 99.3
CD8 4.0 CD34 0.7
Plaquetas Células NK Otros
CD36 94.2 CD56 93.2 CD25 16.2
29
Prueba de inhibición de NaF
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
A la izquierda se muestran
los marcadores de superficie
en el examen inicial. CD4,
CD11b, CD14 y CD36, mar-
cadores conocidos de la se-
rie monocítica, son todos
positivos.
Observaciones
Este es un paciente con LMC en crisis
blástica. Se identificó en el frotis un
gran número de blastos con núcleos
hendidos y citoplasma altamente
basofílico. También fueron identifica-
das células inmaduras de la serie mo-
nocítica.
Se encontró una reacción débilmente
positiva a la esterasa α-naftol butirato
sensitiva al fluoruro de sodio (NaF).
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción esterasa
(x 1000)
Datos examen inicial (sangre periférica)
(x 400)

30. 30
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 10.03*[109
/L]
RBC 2.26 -[1012
/L]
HGB 69 -[g/L]
HCT 20.2 -[%]
MCV 89.4 [fL]
MCH 30.5 [pg]
MCHC 342 [g/L]
PLT & 12*[109
/L]
RDW-SD 57.6+[fL]
RDW-CV 18.1+[%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO 1.02*[109
/L] 10.2 * [%]
EO 0.01*[109
/L] 0.1 * [%]
BASO 0.26*[109
/L] 2.6 * [%]
NRBC 0.17*[109
/L] 1.7 * [/100WBC]
RET 0.35 [%] 7.9 [109
/L]
IRF 22.8 [%]
LFR 77.2 [%]
MFR 17.4 [%]
HFR 5.4 [%]
Observaciones
Este es el mismo paciente mencionado en las páginas 28 y 29 después de tres semanas de tratamiento.
Aun cuando el mismo grupo de puntos en el área de fluorescencia lateral fuerte todavía está presente
en el dispersograma DIFF (indicado por ), otro grupo pequeño aparece en el área de monocitos
(indicado por ). Esto sugiere una reducción en las células con alto contenido de ácido nucleico en
comparación con los exámenes previos.
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
LMC crisis blástica (2)
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 2.0 [%]
Segmentados 4.5 [%]
Linfocitos 15.5 [%]
Monocitos 5.0 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Blastos 68.0 [%]
Promielocitos 0.5 [%]
Mielocitos 2.0 [%]
Metamielocitos 2.0 [%]
Hematíes nucleados 2.0/100 leucocitos
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Monocytosis
Basophilia
Blasts?
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thrombocytopenia
PLT Clumps?
*Parámetros de investigación
Otros 3.67 [109
/L] 36.6 [%]

31. 31
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Apariencia del frotis de sangre periférica después de tres semanas
de tratamiento. Los blastos eran grandes con vacuolas numerosas y
de citoplasma profundamente basofílicos. Se encontraron células
con apotosis por todo el frotis.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

32. 32
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC 45.57 * [109
/L]
RBC 2.76 [1012
/L]
HGB 90 [g/L]
HCT 26.1 [%]
MCV 94.6 [fL]
MCH 32.6 [pg]
MCHC 345 [g/L]
PLT & 11 * [109
/L]
RDW-SD 56.3 + [fL]
RDW-CV 16.4 + [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.00 * [109
/L] 0.0 * [%]
BASO 0.02 * [109
/L] 0.0 * [%]
NRBC 0.00 * [109
/L] 0.0 * [/100WBC]
RET 0.25 [%] 6.9 [109
/L]
IRF 10.2 [%]
LFR 89.8 [%]
MFR 8.9 [%]
HFR 1.3 [%]
Observaciones
Este caso es una leucemia mieloide aguda ( (LMA)-M2 ) en recaída. Se pensó que los blastos (97.5% en
el frotis) estaban localizados en el área de linfocitos y monocitos en el dispersograma DIFF (indicado
por ). Los puntos rojos que aparecen en el dispersograma IMI (indicado por ) sugieren la presencia
de células inmaduras de la serie neutrofílica.
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M2
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 0.0 [%]
Segmentados 0.0 [%]
Linfocitos 2.5 [%]
Monocitos 0.0 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Blastos 97.5 [%]
Cuerpos de Auer+
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Blasts?
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thrombocytopenia
PLT Clumps?

33. 33
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Células T Células B Granulocitos/ Moléculasde
Monocitos adhesióncelular
CD2 4.2 CD10 1.2 CD13 64.7 CD11a 17.8
CD3 0.3 CD19 39.9 CD14 0.5 CD11b 7.4
CD4 4.4 CD20 0.7 CD15 8.2 CD18 27.3
CD5 4.3 CD23 1.9 CD16 2.0 CD41 1.6
CD7 6.0 CD38 79.0 CD34 75.0
CD8 2.1 HLA-DR 75.8
Plaquetas Células NK
CD36 10.9 CD56 75.9
CD42 0.4
Observaciones
El marcador CD13 fue posi-
tivo, mientras que CD14 y
CD36 fueron negativos, lo
que sugiere la presencia de
blastos de tipo mieloide.
Observaciones
Se observan blastos con nu-
cléolos bastante evidentes y ci-
toplasmas ligeramente turbios,
algunos de los cuales contie-
nen cuerpos de Auer. La tinción
de peroxidasa es fuertemente
positiva.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)
Datos (médula ósea)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa

34. Información medida por el XE-2100
34
Información del XE-2100
WBC & 66.08* [109
/L]
RBC 2.18* [1012
/L]
HGB 55 - [g/L]
HCT 17.5* [%]
MCV 80.3* [fL]
MCH 25.2* [pg]
MCHC 314* [g/L]
PLT & 30* [109
/L]
RDW-SD ---- [fL]
RDW-CV ---- [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.03* [109
/L] 0.0 * [%]
BASO 0.08* [109
/L] 0.1 * [%]
NRBC 0.09* [109
/L] 0.1 * [/100WBC]
RET 1.71* [%] 37.3 * [109
/L]
IRF 51.4* [%]
LFR 48.6* [%]
MFR 31.4* [%]
HFR 20.2* [%]
Observaciones
Un grupo de puntos localizado en el área de linfocitos y monocitos que se extiende en dirección del
sitio de mayor fluorescencia (indicado por ), sugiere que los promielocitos (91.5% en el frotis de
sangre periférica) aparecen aquí. También se observan pequeños puntos en áreas usualmente
ocupadas por neutrófilos y eosinófilos, lo que concuerda con las observaciones del recuento micros-
cópico. La gran cantidad de puntos rojos que aparecen en el dispersograma IMI sugieren células
inmaduras de la serie mieloide (indicado por ).
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
Leucemia mieloide aguda (LMA) variante forma-M3
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 0.0 [%]
Segmentados 0.5 [%]
Linfocitos 1.0 [%]
Monocitos 0.0 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Blastos 3.0 [%]
Promielocitos 91.5 [%]
Mielocitos 3.5 [%]
Metamielocitos 0.5 [%]
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Blasts?
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages
RBC Abn Distribution
Dimorphic Population
RET Abn Scattergram
Anemia
Fragments?
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thrombocytopenia
PLT Clumps?

35. 35
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Células T Células B Granulocitos/ Moléculas de
Monocitos adhesión celular
CD2 24.5 CD10 0.2 CD13 98.3 CD41 0.3
CD3 0.5 CD19 0.1 CD14 0.9
CD4 0.7 CD20 0.0 CD15 0.3
CD5 0.4 CD38 71.0 CD16 0.4
CD7 3.1 HLA-DR 1.1 CD33 98.9
CD8 0.1 CD34 7.9
Plaquetas Células NK
CD36 13.9 CD56 0.5
Observaciones
Los marcadores mieloides
CD13 y CD33 fueron positi-
vos, mientras que los mar-
cadores CD14 y CD36, a los
cuales se conoce como
reacción de células mono-
cíticas, fueron negativos.
Esto sugiere leucemia mie-
loide.
Observaciones
Se observan muchas células bilobuladas, otras exhiben clivaje o núcleos hendidos. El
citoplasma presentó variaciones de color, que fueron de azul profundo a gris con algunas
vacuolas y pequeña cantidad de gránulos azurófilos y fardos de cuerpos de Auer (células
de Faggot). Se observó una reacción fuertemente positiva a la tinción de peroxidasa en
la mayoría de las células.Todos estos datos indican variante forma-M3. En la mayoría de
casos de esta variante el recuento periférico de leucocitos es bajo, pero en el presente
caso es elevado.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)
Datos examen inicial (sangre periférica)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

36. 36
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC 256.74 @ [109
/L]
RBC 3.47 [1012
/L]
HGB 106 [g/L]
HCT 31.2 [%]
MCV 89.9 [fL]
MCH 30.5 [pg]
MCHC 340 [g/L]
PLT & 48 * [109
/L]
RDW-SD 50.2 [fL]
RDW-CV 15.4 [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.69 * [109
/L] 0.3 * [%]
BASO ---- [109
/L] ---- [%]
NRBC 0.00 * [109
/L] 0.0 * [/100WBC]
RET 0.44 * [%] 15.3 * [109
/L]
IRF 47.8 * [%]
LFR 52.2 * [%]
MFR 21.1 * [%]
HFR 26.7 * [%]
Observaciones
Presentación de un caso de LMA-M4. Aparecen muchos puntos rojos en el dispersograma IMI, lo que
sugiere la presencia de granulocitos precursores. En el dispersograma DIFF
, la fusión de puntos en el
área de linfocitos y monocitos y su extensión dentro del área de alta fluorescencia (indicado por ),
sugiere la presencia de blastos (52.5% de la preparación). Los datos de los parámetros de investiga-
ción del XE-2100 indican 15% de blastos, nivel ligeramente diferente del diferencial manual (promieloci-
tos: 4.0% + mielocitos: 15.5% + metamielocitos: 3.5% = 23%). Sin embargo, el recuento original de
leucocitos rebasó el límite de linearidad, se repitió el análisis en una dilución de 1 a 10 (indicado por la
flecha ) dando como resultado un recuento de granulocitos inmaduros (IG) del 20%, el cual fue más
cercano al conseguido por el método visual. La proporción de IMI obtenida de los datos de la pantalla
de servicio fue de 73.6% (indicado por ), lo que se acerca al 75.5% obtenido por el método visual.
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M4 (1)
DIFF IMI
DIFF IMI
SFL
RF
SFL
RF
SSC DC
SSC DC
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
x 10
Diferencial manual
Banda 0.5 [%]
Segmentados 0.0 [%]
Linfocitos 3.5 [%]
Monocitos 20.0 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Promielocitos 4.0 [%]
Mielocitos 15.5 [%]
Metamielocitos 3.5 [%]
Blastos 52.5 [%]
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Blasts?
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages
RET Abn Scattergram
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thrombocytopenia
PLT Clumps?
*Parámetros de investigación
IG 38.46 [109
/L] 15.0 [%]
*Parámetros de investigación
IG 5.07 [109
/L] 20.2 [%]

37. 37
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis (1)
Células T Células B Granulocitos/ Moléculas de
Monocitos adhesión celular
CD2 2.8 CD19 9.0 CD13 73.0 CD11b 49.8
CD7 4.6 HLA-DR 76.2 CD14 41.6 CD 41 14.7
CD15 59.9
CD33 99.2
CD34 3.4
Células NK
CD56 25.7
Observaciones
Los marcadores CD11b,
CD13, CD14, CD15, CD33 y
HLA-DR fueron positivos,
mientras que CD14 estuvo
cercano al 40%. Esto su-
giere hiperplasia de las dos
líneas celulares: mielocíti-
ca y monocítica.
Observaciones
Se aprecia un incremento de células mieloides inmaduras (en el rango de promie-
locitos y metamielocitos) y también de monocitos (incluyendo promonocitos).
La tinción de peroxidasa va desde positiva o débilmente positiva a negativa.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)
Datos (sangre periférica)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

38. 38
Información obtenida del análisis del frotis (2)
Observaciones
En la tinción de esterasa se encontraron células positivas para α-naftil
butirato y células positivas para naftol-AS-D-cloroacetato.
Tinción esterasa
(x 1000)
Prueba de inhibición de Naf
(x 400)

39. 39
α
α
α
α
α
α
α
α
α
α
α
8 21
µ
Por: Ken-ichi Anami, MT, gerente del laboratorio clínico del Hospital Nacional Miyakonojo, Japón.

40. 40
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 4.08 * [109
/L]
RBC 2.55 [1012
/L]
HGB 78 - [g/L]
HCT 23.8 - [%]
MCV 93.3 [fL]
MCH 30.6 [pg]
MCHC 328 [g/L]
PLT & 25 * [109
/L]
RDW-SD 48.0 [fL]
RDW-CV 15.7 [%]
PDW ---- [fL]
MPV ---- [fL]
P-LCR ---- [%]
PCT ---- [%]
NEUT 1.00 * [109
/L] 24.6 * [%]
LYMPH & 1.22 * [109
/L] 29.9 * [%]
MONO 1.82 * [109
/L] 44.6 * [%]
EO 0.01 * [109
/L] 0.2 * [%]
BASO 0.03 * [109
/L] 0.7 * [%]
NRBC 0.05 * [109
/L] 1.2 * [/100WBC]
RET 1.31 [%] 33.4 [109
/L]
IRF 12.5 [%]
LFR 87.5 [%]
MFR 10.9 [%]
HFR 1.6 [%]
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M4 (2)
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
Observaciones
Los monocitos se extienden verticalmente en el área del dispersograma DIFF (indicado por ), lo
que sugiere la presencia de blastos (10% de la preparación de sangre periférica). La lectura de “Otros”
(“Other”), los cuales proveen información acerca de células con alto contenido de ácido nucleico, fue
1.5% (indicado por ). Esta área corresponde a los linfocitos atípicos. El recuento obtenido por el
método visual concuerda con el de linfocitos atípicos del 1%. La nube de neutrófilos está anormal-
mente localizada, contigua al área de células fantasmas (indicado por ). Esto sugiere que los neu-
trófilos son hipogranulares y bajos en contenido de ácido nucleico.
Diferencial manual
Banda 14.0 [%]
Segmentados 17.5 [%]
Linfocitos 24.0 [%]
Monocitos 33.0 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Linfocitos atípicos 1.0 [%]
Blastos 10.0 [%]
Mielocitos 0.5 [%]
Hematíes
nucleados 1/100 leucocitos
WBC IP Messages
Monocytosis
Blasts?
Immature Gran?
RBC/RET IP Messages
Anemia
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution
Thrombocytopenia
PLT Clumps?
*Parámetros de investigación
Otros 0.06 [109
/L] 1.5 [%]

41. 41
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Células T Células B Granulocitos/ Moléculas de
Monocitos adhesión celular
CD2 1.0 CD10 29.0 CD13 43.0 CD41 8.0
CD3 1.0 CD19 0.0 CD14 43.0
CD4 0.0 CD20 2.0 CD33 96.0
CD5 2.0 HLA-DR 63.0 CD34 5.0
CD7 1.0
CD8 0.0 Células NK
CD56 1.0
Observaciones
Los resultados iniciales de
los marcadores. CD13, CD14,
CD33 y HLA-DR fueron posi-
tivos, lo que indica la pre-
sencia de blastos de línea
mieloide y monocítica.
Observaciones
Este caso fue diagnosticado como LMA-M4 a partir del análisis de la médula ósea.
En sangre periférica se observó incremento de células inmaduras de las líneas mie-
loide y monocítica.
La mayoría de los monocitos mostraron una reacción negativa a la peroxidasa. Las
células mieloides mostraron reacción positiva con las tinciones de esterasa, α-naftol
butirato o naftol-AS-D-cloroacetato.
(x 1000)
Datos examen inicial (médula ósea)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(sangre periférica)
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(sangre periférica)
Tinción esterasa (médula ósea)

42. DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
42
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC 66.90 * [109
/L]
RBC 3.09 [1012
/L]
HGB 113 [g/L]
HCT 33.6 [%]
MCV 108.7 [fL]
MCH 36.6 [pg]
MCHC 336 [g/L]
PLT 60 * [109
/L]
RDW-SD 50.7 [fL]
RDW-CV 12.9 [%]
PDW 11.0 * [fL]
MPV 11.3 * [fL]
P-LCR 31.4 * [%]
PCT 0.07 * [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO ---- [109
/L] ---- [%]
EO 0.11 * [109
/L] 0.2 * [%]
BASO 0.20 * [109
/L] 0.3 * [%]
NRBC 0.00 * [109
/L] 0.0 * [/100WBC]
RET 1.15 [%] 35.5 [109
/L]
IRF 14.6 [%]
LFR 85.4 [%]
MFR 12.3 [%]
HFR 2.3 [%]
Observaciones
Este caso fue diagnosticado como LMA-M5b. Aparecen muchos puntos rojos en el dispersograma IMI,
lo que sugiere la presencia de células mieloides inmaduras. La fusión de linfocitos y monocitos en el
área del dispersograma DIFF (indicado por ) sugiere la localización de los blastos encontrados en el
frotis de sangre periférica (59%).
Casos de células inmaduras de tipo mieloide
Leucemia mieloide aguda (LMA)-M5b
Diferencial manual
Banda 1.5 [%]
Segmentados 1.5 [%]
Linfocitos 12.5 [%]
Monocitos 24.5 [%]
Eosinófilos 0.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Promielocitos 0.5 [%]
Blastos 59.0 [%]
Hematíes nucleados 0.5/100 leucocitos
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
Leukocytosis
Blasts?
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages
PLT Clumps?

43. 43
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis (1)
Células T Células B Granulocitos/ Moléculas de
Monocitos adhesión celular
CD2 28.9 CD10 10.6 CD13 63.5 CD11b 82.4
CD3 0.6 CD19 1.2 CD14 31.3
CD4 84.5 CD20 0.2 CD15 82.9
CD5 0.6 HLA-DR 87.9 CD33 99.6
CD7 1.5 CD34 64.7
CD8 0.4 Células NK Otros
CD56 1.5 CD25 1.5
CD95 58.8
Observaciones
El marcador CD14 fue po-
sitivo, lo que indica la pre-
sencia de células monocí-
ticas. El alto índice de posi-
tividad para CD4 sugiere
hiperplasia de blastos, en
su mayoría monocitos.
Observaciones
Se observó en el frotis un gran número de blastos hendidos con una relación
núcleo/citoplasma (N/C) elevada y con citoplasma basófilo. Los monocitos, inclu-
yendo los promonocitos, están elevados. La tinción de peroxidasa varió de débil-
mente positiva a negativa, mientras que se hallaron células positivas para α-naftol
butirato esterasa inhibidas por el NaF (ver página siguiente).
Datos (sangre periférica)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción peroxidasa

44. 44
Información obtenida del análisis del frotis (2)
(x 1000)
Tinción esterasa
(x 1000)
Prueba de inhibición de Naf
(x 1000)
Tinción PAS

45. 45
Caso de cuerpos de Howell-Jolly 46
Caso de linfocitos segmentados 48
Caso de células linfoides anormales 50
Caso de granulocitos inmaduros 52
Caso de esquizocitos 54
Neutrófilos sin granulación 56
CASOS DE CELULAS DE APARIENCIA ESPECIFICA
´
´

46. DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
46
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC & 4.26 * [109
/L]
RBC 2.57 [1012
/L]
HGB 67 - [g/L]
HCT 22.9 - [%]
MCV 89.1 [fL]
MCH 26.1 [pg]
MCHC 293 - [g/L]
PLT 435 * [109
/L]
RDW-SD 68.9 + [fL]
RDW-CV 22.3 + [%]
PDW 12.9 * [fL]
MPV 11.5 * [fL]
P-LCR 36.9 * [%]
PCT 0.50 * [%]
NEUT 2.25 * [109
/L] 52.8 * [%]
LYMPH & 0.92 * [109
/L] 21.6 * [%]
MONO 0.89 * [109
/L] 20.9 * [%]
EO 0.13 * [109
/L] 3.1 * [%]
BASO 0.07 * [109
/L] 1.6 * [%]
NRBC 1.15 * [109
/L] 27.0 * [/100WBC]
RET 1.52 [%] 39.1 [109
/L]
IRF 22.1 [%]
LFR 77.9 [%]
MFR 16.6 [%]
HFR 5.5 [%]
Observaciones
En el dispersograma NRBC aparecen muchos puntos azules entre el área normal de células fantasmas
y el área de normoblastos (indicado por ), lo que sugiere la presencia de cuerpos de Howell-Jolly.
Estos puntos fueron incluidos en la fracción de células fantasmas sin tener influencia en los datos de
hematíes nucleados. Los puntos rosados (indicado por ) representan hematíes nucleados, cuyo
recuento concuerda muy cercanamente con el diferencial manual. En el dispersograma WBC/BASO,
esos normoblastos aparecen en el eje de alta dispersión (indicado por ). Esto demuestra que el XE-
2100 provee información verdadera después de descontar los hematíes nucleados que aparecen en el
área de leucocitos (indicado por “WBC &”).
Casos de células de apariencia específica
Caso de cuerpos de Howell-Jolly
Diferencial manual
Banda 2.0 [%]
Segmentados 27.5 [%]
Linfocitos 42.0 [%]
Monocitos 23.0 [%]
Eosinófilos 4.0 [%]
Basófilos 1.0 [%]
Mielocitos 0.5 [%]
Hematíes nucleados 26/100 leucocitos
WBC IP Messages
NRBC Present
RBC/RET IP Messages
Anisocytosis
Anemia
Fragments?
PLT IP Messages
PLT Clumps?

47. 47
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Los cuerpos de Howell-Jolly son normalmente de 2 µm o menores y se
pueden diferenciar fácilmente de los hematíes nucleados. Sin embargo, este
caso presenta gran cantidad de normoblastos con núcleos pequeños y eri-
trocitos con cuerpos de Howell-Jolly de gran tamaño.
Tinción May-Giemsa
(hematíes nucleados)
Tinción May-Giemsa
(hematíes nucleados)
Tinción May-Giemsa
(hematíes nucleados)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(cuerpo Howell-Jolly)
(x 1000) (x 1000)
Tinción May-Giemsa
(cuerpo Howell-Jolly)
Tinción May-Giemsa
(cuerpo Howell-Jolly)
(x 1000) (x 1000) (x 1000)

48. 48
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
WBC 1.87 - [109
/L]
RBC 2.16 - [1012
/L]
HGB 91 * [g/L]
HCT 24.6 - [%]
MCV 113.9+ [fL]
MCH 42.1 * [pg]
MCHC 370 * [g/L]
PLT & 20 - [109
/L]
RDW-SD 54.3+ [fL]
RDW-CV 13.2 [%]
PDW 13.8 [fL]
MPV 12.6 [fL]
P-LCR 43.2+ [%]
PCT 0.02 - [%]
NEUT 0.07 * [109
/L] 3.8 *[%]
LYMPH 1.62 * [109
/L] 86.6 *[%]
MONO 0.17 * [109
/L] 9.1 *[%]
EO 0.00 [109
/L] 0.0 [%]
BASO 0.01 [109
/L] 0.5 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 0.29 [%] 6.3 [109
/L]
IRF 0.0 [%]
LFR 100.0 [%]
MFR 0.0 [%]
HFR 0.0 [%]
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Observaciones
Este es un caso de LMA-M2 bajo tratamiento. Únicamente se hallaron linfocitos en el frotis de sangre
periférica y la mayoría estaban segmentados. Se cree que estas células se detectaron en el área de lin-
focitos/monocitos del dispersograma DIFF (indicado por ). Debido al muy bajo recuento de leuco-
citos, aparece la alarma de “Abn Lympho/L_Blasts?”
, lo que sugiere un problema con los linfocitos.
Casos de células de apariencia específica
Caso de linfocitos segmentados
Diferencial manual
Banda 0.0 [%]
Segmentados 0.0 [%]
Linfocitos 43.0 [%]
Monocitos 0.0 [%]
Eosinófilos 0.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Células anormales 57.0 [%]
(células segmentadas +)
WBC IP Messages
Neutropenia
Leukocytopenia
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages
Macrocytosis
Anemia
Turbidity/HGB Interf?
PLT IP Messages
Thrombocytopenia

49. 49
Información obtenida por el método de citometría de flujo
Información obtenida del análisis del frotis
Células T Células B Granulocitos/ Otros
Monocitos
CD2 100.0 CD10 0.7 CD13 3.4 CD25 66.8
CD3 99.7 CD19 0.7 CD33 4.1
CD4 95.4 CD23 1.5 CD34 1.9
CD5 99.6 HLA-DR 86.1
CD7 80.9
CD8 6.2
Observaciones
Los marcadores CD2, CD3 y
CD4 fueron positivos, lo que in-
dica un incremento en la rela-
ción cooperador/supresor de
las células T. Como el CD25 y el
HLA-DR también fueron positi-
vos, se consideró que estas cé-
lulas estaban activadas.
Datos (sangre periférica)
Observaciones
Este caso es una M2 en tra-
tamiento. Se encontró un
bajo recuento de leucoci-
tos. La mayoría de las cé-
lulas eran linfocitos. Cerca
del 50% de ellos fueron pe-
queños linfocitos anorma-
les segmentados.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

50. 50
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Observaciones
El límite confuso entre las áreas de linfocitos y monocitos en el dispersograma DIFF (indicado por )
sugiere la presencia de células linfoides anormales. En el frotis se observaron células linfoides seg-
mentadas anormales.
Casos de células de apariencia específica
Caso de células linfoides anormales
WBC 10.93 [109
/L]
RBC 3.26 [1012
/L]
HGB 103 [g/L]
HCT 31.6 [%]
MCV 96.9 [fL]
MCH 31.6 [pg]
MCHC 326 [g/L]
PLT 161 [109
/L]
RDW-SD 47.3 [fL]
RDW-CV 13.7 [%]
PDW 10.4 [fL]
MPV 9.8 [fL]
P-LCR 22.9 [%]
PCT 0.16 - [%]
NEUT 5.03* [109
/L] 45.9 * [%]
LYMPH 5.31* [109
/L] 48.6 * [%]
MONO 0.50* [109
/L] 4.6 * [%]
EO 0.05 [109
/L] 0.5 [%]
BASO 0.04 [109
/L] 0.4 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 1.60 [%] 52.2 [109
/L]
IRF 13.0 [%]
LFR 87.0 [%]
MFR 11.4 [%]
HFR 1.6 [%]
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 4.5 [%]
Segmentados 51.0 [%]
Linfocitos 31.0 [%]
Monocitos 5.5 [%]
Eosinófilos 1.0 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Células anormales 7.0 [%]
(células segmentadas +)
WBC IP Messages
Lymphocytosis
Abn Lympho/L_Blasts?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

51. 51
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Se encontraron pequeñas células linfoides seg-
mentadas anormales con alta relación núcleo/
citoplasma (N/C) en sangre periférica (7%).
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

52. WBC 8.69 [109
/L]
RBC 4.05 [1012
/L]
HGB 128 [g/L]
HCT 38.4 [%]
MCV 94.8 [fL]
MCH 31.6 [pg]
MCHC 333 [g/L]
PLT 105 [109
/L]
RDW-SD 47.9 [fL]
RDW-CV 14.0 [%]
PDW 11.2 [fL]
MPV 10.1 [fL]
P-LCR 26.5 [%]
PCT 0.11 - [%]
NEUT &5.25 *[109
/L] 60.4 * [%]
LYMPH 0.91 - [109
/L] 10.5 - [%]
MONO 0.63 [109
/L] 7.2 [%]
EO 0.13 *[109
/L] 1.5 * [%]
BASO 0.11 *[109
/L] 1.3 * [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 2.14 [%] 86.7 [109
/L]
IRF 24.0 [%]
LFR 76.0 [%]
MFR 20.5 [%]
HFR 3.5 [%]
52
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Observaciones
En el dispersograma DIFF
, un grupo de puntos se extiende desde el área de neutrófilos hacia el área de
fluorescencia alta (indicado por ), lo que sugiere la presencia de granulocitos inmaduros. El XE-2100
ofrece un parámetro de investigación, el IG o granulocitos inmaduros, que reportó un valor de 19.1%,
el cual corresponde cercanamente al 17% de mielocitos obtenidos por el diferencial manual. La
presencia de granulocitos inmaduros también fue sugerida por la gran cantidad de puntos rojos en el
dispersograma IMI (indicado por ). Además, la determinación del porcentaje de células mieloides
inmaduras desde el menú de datos de servicio fue del 28.0%, lo que corresponde a la suma de los
mielocitos (17%) + metamielocitos (8.5%) = 25.5%, obtenido en el frotis.
Casos de células de apariencia específica
Caso de granulocitos inmaduros
* Estos datos han sido obtenidos de una pantalla de investigación.
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 17.0 [%]
Segmentados 38.5 [%]
Linfocitos 6.0 [%]
Monocitos 10.0 [%]
Eosinófilos 2.0 [%]
Basófilos 0.5 [%]
Mielocitos 17.0 [%]
Metamielocitos 8.5 [%]
Linfocitos atípicos 0.5 [%]
WBC IP Messages
Immature Gran?
Left Shift?
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages
*Parámetros de investigación
IG 1.66 [109
/L] 19.1 [%]

53. 53
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Se aprecia un gran nú-
mero de células mieloi-
des en sangre periférica
(incluyendo mielocitos
inmaduros y metamie-
locitos).
Tinción May-Giemsa
(x 1000)

54. 54
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Observaciones
El frotis de sangre periférica muestra muchos esquizocitos. Sin embargo, aun cuando en el disper-
sograma RET los esquizocitos se extienden desde el área de hematíes hacia las plaquetas (indicado
por ), en el dispersograma PLT-O se observa una clara distinción entre las dos poblaciones (indicado
por ). Ello indica que no hubo influencia de los esquizocitos en el recuento óptico de plaquetas. La
alarma “PLT Abn Distribution” se generó debido a que los esquizocitos están presentes en el umbral
de 30 fL en el histograma PLT (indicado por ), por lo que los datos del dispersograma PLT-O fueron
usados para el recuento. Este resultado concuerda con los resultados obtenidos en el diferencial
manual (344 vs. 342 x 109
/L).
Casos de células de apariencia específica
Caso de esquizocitos
Diferencial manual
(Método Fonio)
PLT 344 [109
/L]
WBC 5.82 [109
/L]
RBC 4.44 [1012
/L]
HGB 86 [g/L]
HCT 31.3 [%]
MCV 70.5 - [fL]
MCH 19.4 - [pg]
MCHC 275 - [g/L]
PLT & 342 [109
/L]
RDW-SD 49.7 [fL]
RDW-CV 19.3 + [%]
PDW 11.9 * [fL]
MPV 9.7 * [fL]
P-LCR 23.5 * [%]
PCT 0.37 * [%]
NEUT 3.88 [109
/L] 66.7 [%]
LYMPH 1.51 [109
/L] 25.9 [%]
MONO 0.33 [109
/L] 5.7 [%]
EO 0.08 [109
/L] 1.4 [%]
BASO 0.02 [109
/L] 0.3 [%]
NRBC 0.00 [109
/L] 0.0 [/100WBC]
RET 0.93 [%] 41.3 [109
/L]
IRF 14.9 [%]
LFR 85.1 [%]
MFR 13.5 [%]
HFR 1.4 [%]
(PLT-I : 379)
RET PLT-O
RBC PLT
FSC
FSC
SFL SFL
WBC IP Messages RBC/RET IP Messages
Hypochromia
Anemia
Iron Deficiency?
Fragments?
PLT IP Messages
PLT Abn Distribution

55. 55
Información obtenida del análisis del frotis
Observaciones
Se observó un gran número
de esquizocitos, tal como lo
indican las flechas.
Tinción May-Giemsa
(x 400)

56. 56
Información medida por el XE-2100
Información del XE-2100
Observaciones
Este paciente tiene SMD (AREB). En el dispersograma DIFF aparece sólo un pequeño número de pun-
tos en el área normal de neutrófilos (indicado por ). Sin embargo, aparece un grupo grande entre
el área de linfocitos y células fantasmas (indicado por ). Se considera que este grupo de puntos co-
rresponde a los neutrófilos con ausencia o reducción en la granulación. El eje de las X del disper-
sograma DIFF corresponde a la intensidad de dispersión que indica el contenido celular.
Casos de células de apariencia específica
Neutrófilos sin granulación
WBC & 8.17 [109
/L]
RBC 2.85 [1012
/L]
HGB 102 [g/L]
HCT 29.7 [%]
MCV 104.2 [fL]
MCH 35.8 [pg]
MCHC 343 [g/L]
PLT 200 [109
/L]
RDW-SD 49.1 [fL]
RDW-CV 12.9 [%]
PDW 10.2 [fL]
MPV 10.3 [fL]
P-LCR 24.8 [%]
PCT 0.21 [%]
NEUT ---- [109
/L] ---- [%]
LYMPH ---- [109
/L] ---- [%]
MONO 0.09 [109
/L] 1.1 [%]
EO 0.00 [109
/L] 0.0 [%]
BASO 0.01 [109
/L] 0.1 [%]
NRBC 0.04 [109
/L] 0.5 [/100WBC]
RET 1.39 [%] 39.6 [109
/L]
IRF 13.4 [%]
LFR 86.6 [%]
MFR 12.1 [%]
HFR 1.3 [%]
DIFF WBC/BASO
IMI NRBC
SFL
FSC
RF
FSC
DC SFL
SSC SSC
Diferencial manual
Banda 1.0 [%]
Segmentados 57.5 [%]
Linfocitos 19.0 [%]
Monocitos 1.5 [%]
Eosinófilos 1.5 [%]
Basófilos 0.0 [%]
Promielocitos 0.5 [%]
Mielocitos 0.5 [%]
Células sin clasificación 18.5 [%]
(sospecha de basófilos)
WBC IP Messages
WBC Abn Scattergram
RBC/RET IP Messages PLT IP Messages

57. 57
Información obtenida del análisis del frotis (1)
Observaciones
En el frotis se encontro un gran número de neutrófilos con reducción o ausencia de gránulos
secundarios. La tinción de peroxidasa estuvo ausente en más del 90% de los neutrófilos
maduros. Los gránulos de los eosinófilos fueron muy finos y en los basófilos no se pudieron
distinguir. Además, en el 18.5% de las células fue difícil la diferenciación porque tienen
núcleos semejantes a los basófilos, pero con ausencia de gránulos.
Tinción May-Giemsa
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(¿Basófilo?)
(x 1000)
Tinción May-Giemsa
(Eosinófilo)
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)
¿Basófilo?
Tinción peroxidasa
(Eosinófilo)
(x 1000)
Tinción peroxidasa
(x 1000)

58. 58
Observaciones
Los neutrófilos se clasificaron como clase III ó IV en la coloración de fosfatasa
alcalina. Algunas células mostraron reacción PAS difusa. En tinción de esterasa,
naftol-AS-D-cloroacetato fue negativa o débilmente positiva en la mayoría de los
neutrófilos; sólo muy pocos mostraron reacción fuertemente positiva.
Tinción fosfatasa alcalina
(x 1000)
Tinción esterasa
(x 1000)
Tinción esterasa
(x 1000)
Tinción PAS
(x 1000)
Tinción PAS
(x 1000)
Información obtenida del análisis del frotis (2)

59. La intención de los mensajes generados por este instrumento se limita
a la identificación de muestras que contengan células anormales,
sujetas a revisión por personal de laboratorio calificado.
SYSMEX CORPORATION
División Científica
4-4-4Takatsukadai, Nishi-ku
KOBE 651-2271, Japón
Teléf.: 078-991-1911
Fax: 078-992-5842
e-mail: scientific@sysmex.co.jp
Publicado por: Sysmex Latinoamérica. Oficina representativa en Miami.
Página web: http://www.sysmex.com
© Derechos de autor Sysmex Corporation.
Esta es una traducción del texto original en inglés.
Este libro no puede ser reproducido ni parcial ni totalmente sin permiso previo de la compañía.