El documento presenta información sobre infecciones urinarias. Se divide en infecciones de las vías urinarias superiores e inferiores. Detalla signos como piuria, hematuria y bacteriuria, así como los microorganismos más comunes como Escherichia coli. También describe el análisis de orina e incluye técnicas de recolección de muestras de orina.

1. Integrantes:
• María Paz 25.009.772
• Maira Pérez 25.918.574
• Misbelis Perozo 24.303880
• Roxana Rodríguez 25.966.683
• Alicia Romero
• Luisana Rondón 25.644.455
• Yorgelis Salgueiro 26.437.456
• Yulizza Sandoval 25.650.318
Prof. Jesús A. Núñez P. MSC.
Santa Ana de coro, noviembre, 2016

2. Puede considerarse infección urinaria a la
presencia de microorganismos capaces de
producir infección en la orina y en los diferentes
órganos que forman el aparato urinario.
Se divide en
dos:
Infecciones urinarias
de las vías
superiores
Infecciones
urinarias de las vías
inferiores
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/SeminarioAntibioticos.htm

3. Es un signo urinario, caracterizado por la presencia
de pus en la orina y que refleja una infección en
algún órgano o punto del sistema nefro-urinario.
Es la presencia de sangre en la orina. El color de la
orina puede variar desde el color rojo sangre hasta
el color café dependiendo de si esta sangre es
fresca o ha sido transformada en hemoglobina
ácida por efecto del pH urinario.
Significa etimológicamente bacterias en la orina. Puede hablarse de
bacteriuria significativa cuando el número de bacterias es superior a
100.000 por ml de orina.
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/SeminarioAntibioticos.htm

4. La mayoría de los microorganismos colonizan preferentemente ciertos
tejidos y otros no, debido a la existencia de receptores que permiten su
fijación, es lo que se llama tropismo celular. Esta unión entre el
microorganismo y el receptor depende de la presencia de una adhesina
complementaria en el microorganismo.
En el aparato génitourinario los órganos generalmente estériles son los
riñones, próstata y vejiga. La flora comensal se encuentra en:
Genitales Externos Uretra Vagina
Suelen tener el mismo tipo de
flora saprofita que la piel:
Staphylococcus epidermidis,
Streptococcus viridans,
enterococos, corinebacterias,
micobacterias y levaduras.
En ambos sexos:
Staphylocococus coagulasa
negativo, Staphylococcus
aureus, enterococos,
corinebacterias, levaduras,
micoplasmas y Ureaplasína
urealyticuin.
Formada por microorganismos
anaerobios: Peptostreptococcus
spp, Bacteroides spp,
Biflodobacteriurn spp, (ilostridiurn
~PP y flora aerobia semejante a la
que se encuentra en genitales
externos.
http://www.unavarra.es/genmic/microclinica/tema05.pdf

5. Cuando las bacterias aparecen y se desarrollan en este espacio urinario pueden producir
alteraciones de los tejidos y dar lugar a una serie de síntomas, bien de tipo general, como la fiebre
elevada o la sensación de encontrarse mal, o de tipo local, como dolor o escozor, o anomalías al
orinar; es lo que se denomina “infección del tracto urinario (ITU)”.
La infección puede afectar a cualquier parte del tracto urinario. Cuando afecta
solamente a la parte baja (vejiga y uretra), suele dar síntomas de tipo local (dolor o escozor al
orinar) y sin apenas fiebre. Este tipo de ITU no produce daño en los riñones y se suele denominar
“cistitis”, “uretritis”, “ITU afebril” o “ITU baja”. Cuando la infección se extiende a la parte más alta
del tracto urinario, llegando a los riñones, suele dar fiebre y se denomina “ITU febril”, “pielonefritis
aguda (PNA)” o “ITU alta”. En ocasiones, aún estando el paciente totalmente bien y sin ningún
síntoma, se encuentran bacterias en la orina. Esta situación se denomina “bacteriuria
asintomática”. No es aconsejable el tratamiento de la bacteriuria asintomática, ya que su
presencia no supone ningún riesgo o daño para el paciente.
http://www.unavarra.es/genmic/microclinica/tema05.pdf

6. El interés clínico del Uroanálisis
reside, entre otras, por la
posibilidad de:
 Obtener información sobre el
estado funcional del riñón y
las lesiones que puedan
afectarlo.
 Detectar la existencia de
alteraciones de las vías
urinarias.
 Evidenciar la existencia de
problemas metabólicos de
índole general, detectables
por la eliminación aumentada,
disminuida o anormal de
metabolitos en la orina.
 La tipificación de la orina
según análisis físicos,
bioquímicos y microscópico.
http://es.slideshare.net/mt1804057/infeccion-urinaria-13192726

7. Aspecto Color pH Densidad
Es considerado como normal
un aspecto transparente, pero
es aceptado hasta un aspecto
ligeramente turbio ya que este
puede ser debido a
contaminaciones. El aspecto
de una orina turbia ya es
considerado como anormal,
esto puede ser debido a
presencia de leucocitos,
glóbulos rojos, bacterias,
cristales, etc.
En condiciones normales el
color de la orina va de
amarillo hasta ámbar. Se
pueden encontrar colores
anormales debido a la
presencia de elementos
anormales en la orina como
por ejemplo sangre,
medicamentos, alimentos y
otros pigmentos.
Es el reflejo de la acidez de la
orina. El pH normal va de 5.5
- 6.5.
Influyendo el régimen
dietético de cada paciente.
Este se determina utilizando
una cinta lectora de pH la que
se sumerge en una muestra
de orina por dos o tres
segundos y luego se compara
el color obtenido con una
carta patrón de colores.
Esta varía en razón directa a la
cantidad de sólidos,
principalmente cloruros, urea,
sulfatos, la densidad normal va
de 1.015 - 1.025.
Proteínas Hemoglobina Glucosa Nitritos
Se pueden encontrar varias
clases de proteínas pero la más
importante es la albúmina. Hay
proteinurias, es decir, presencia
de proteínas en la orina,
llamadas fisiológicas asociadas
a fiebres, exposición al frío,
stress emocional, ejercicio
intenso.
Es una proteína sanguínea que
no se debe encontrar en orinas
normales, su presencia puede ser
causada por procesos
hemolíticos, agentes tóxicos,
accidentes transfusionales,
quemaduras, etc.
Fisiológicamente puede
presentarse por ejercicio intenso.
En condiciones normales se
elimina por la orina cantidades
no detectables por los métodos
usuales, cuando el nivel de
glucosa sobrepasa el umbral
renal (180 mg/dl) de detecta su
presencia en una muestra de
orina.
se informan como positivo o
negativo. Si son positivos
pueden corresponder a
presencia de bacterias, ya sea
por una patología urinaria del
paciente o por contaminación
de la muestra por exceso de
calor, transporte o
almacenamiento inadecuado.
http://biblioteca.duoc.cl/bdigital/Documentos_Digitales/600/610/39579.pdf

8. El examen microscópico del sedimento urinario no solo evidencia una
enfermedad renal, sino también indica la clase de lesión presente. En este
estudio se observa la presencia de:
Leucocitos.
Hematíes o eritrocitos.
Células epiteliales.
Cristales.
http://biblioteca.duoc.cl/bdigital/Documentos_Digitales/600/61
0/39579.pdf

9. Cuando se estudia el sedimento
urinario con el microscopio, se
reconocen numerosas
estructuras con una forma muy
diversa. En primer lugar, se
pueden observar células de la
vía urinaria descendente y de
los riñones, así como sangre,
sales urinarias precipitadas con
forma cristalina o cilindros
formados en los canalículos
renales que aparecen como
bandas anchas y estrechas en
el campo visual.
http://www.botanica.cnba.uba.ar/Pakete/6to/membr-casos/Fisiol-
Nefron/Analisis-Orina.htm

10. - La muestra de orina se recogerá
siempre en un recipiente limpio y
se examinara dentro de los 45
minutos de emitida o bien si es el
caso y dependiendo del tipo de
análisis se puede guardar en
heladera por 24 horas.
- La orina se debe agitar antes de
extraer la muestra para estudiar el
sedimento.
- La orina podrá ser recolectada
por micción espontánea, micción
espontánea con técnica del chorro
medio, cateterismo vesical estéril o
punción percutánea suprapubica
de la vejiga http://www.botanica.cnba.uba.ar/Pakete/6to/mem
br-casos/Fisiol-Nefron/Analisis-Orina.htm

11. En un sedimento urinario
podemos observar:
• Células formes (hematíes y
leucocitos).
• Células epiteliales.
• Cilindros de diferentes tipos.
• Cristales variados.
• Levaduras u hongos.
• Bacterias.
• Espermatozoides.
• Parásitos.
• Glóbulos de grasa.
• Artefactos y materia
extrañas resultantes de la
contaminación accidental.
http://www.botanica.cnba.uba.ar/Pakete/6to/membr-
casos/Fisiol-Nefron/Analisis-Orina.htm

12. Muchos gérmenes distintos pueden invadir el tracto urinario, pero los
microorganismos más frecuentes son los bacilos gramnegativos como:
Escherichia Coli Proteus y Klebsiella Enterobacter
Provoca el 80 % de las
infecciones urinarias
agudas en general.
son las bacterias aisladas
con más frecuencia en
personas con litiasis.
Serratia y Pseudomonas.
Entre las bacterias Gram positivas encontramos:
• Staphylococcus Saprophyticus
• Streptococcus Agalactiae
• Enterococcus: Indica infección mixta o patología urinaria orgánica.
• Staphylococcus Aureus: Cuando está presente debe descartarse la
contaminación urinaria por vía hematógena si el paciente no es portador
de sonda urinaria.
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Skin and
Soft‐Tissue Infections. Clinical Infectious Diseases 2005; 41:1373–406.

13. • Glucosuria: es la presencia de glucosa en la orina y aparece
sobre todo en la diabetes mellitus
• Hematuria: es la presencia de sangre en la orina, y deben
descartarse, entre otras cosas: Infección urinaria, litiasis
urinaria, glomerulonefritis, neoplasia (cáncer de vejiga, uréter,
riñón, próstata)
• Bacteriuria: es la presencia de bacterias en la orina;
• Piuria: es la presencia de Piocitos (Leucocitos
Polimorfonucleares Necróticos) formadores de pus en la orina
• Proteinuria: es la presencia de proteínas en la orina, como
suele observarse en: Glomerulonefritis, infección urinaria,
intoxicaciones, diabetes y otras
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of
Skin and Soft‐Tissue Infections. Clinical Infectious Diseases
2005; 41:1373–406.

14. Mujeres Hombres
Es necesario lavar el vestíbulo vaginal
y la entrada de la uretra con agua
jabonosa, enjuagar con abundante
agua.
Secar y lavar con solución yodada,
quitar el exceso de solución con gasa.
Separar los labios e iniciar la micción.
Se debe hacer retracción del prepucio
y lavar el glande y meato urinario con
agua jabonosa, enjuagar con
abundante agua y secar, lavar con
solución yodada, quitar el remanente
de solución con gasa.
En todo momento, el prepucio deberá
estar retraído.
Es ideal recoger la muestra de la primera micción del día. De no ser posible la
recolección de la primera orina de la mañana, es ideal pasar por lo menos 3 horas
desde la última micción para recolectar la muestra de orina. No está indicada para
identificación de anaerobios. Es una muestra importante para la detección de
infecciones causadas por piógenos comunitarios e intrahospitalarios y levaduras.
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Skin and Soft‐Tissue
Infections. Clinical Infectious Diseases 2005; 41:1373–406.

15. Técnica de recolección
•Explicar el procedimiento al paciente incluyendo la técnica de asepsia.
•Rotular el frasco con el nombre completo del paciente, registro, fecha de nacimiento,
hora de recolección y cama.
•Desechar los primeros 5-10 ml en el inodoro, comenzar a recolectar la muestra de orina
subsecuente (orina del chorro medio).
•Recolectar 5-10 ml de orina.
•Eliminar el resto de la orina en el inodoro u orinal.
•Tapar perfectamente el frasco recolector para evitar que la orina se salga y contamine.
•Enviar inmediatamente al laboratorio.
• Frasco recolector estéril.
• Equipo de higiene: jabón, solución
yodada y gasa.
Se recomienda enviar al laboratorio
durante los primeros 15 minutos de la
recolección, no exceder de dos horas y
a temperatura ambiente. Transportar
con guantes.
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Skin and Soft‐Tissue
Infections. Clinical Infectious Diseases 2005; 41:1373–406.

16. Cuidados y Recomendaciones
Las muestras deberán ser recolectadas de la marca de agua de la sonda. En caso de que la sonda
empleada no tenga marca de agua, se realizará asepsia en la zona del conector-de la sonda. Se
pinzará la sonda aproximadamente a 10 cm del conector durante 5-10 minutos, se retirará la bolsa.
Realizar asepsia del conector.
La muestra nunca deberá ser tomada de la bolsa.
Si se sospecha de infección de vías urinarias lo que se aconseja es realizar cambio de sonda y
posteriormente mandar el urocultivo para poder interpretar mejor los resultados microbiológicos, ya
que las sondas se colonizan conforme pasan los días y pueden dar resultados falsos positivos.
Tecnicas de recoleccion Material y Equipo Transporte
•Explicar el procedimiento al paciente.
•Pinzar la sonda aproximadamente a 5 cm por debajo de la
marca de agua.
•Rotular la jeringa con el nombre completo del paciente.
•Realizar asepsia con solución yodada en la marca de agua.
•Esperar a que se acumule la orina suficiente para extraerla.
•Con una jeringa estéril, puncionar la marca de agua y
extraer la orina, de 1-15 ml.
•Poner el tapón de la jeringa con mucho cuidado, valerse de
una superficie plana para evitar accidentes.
•Enviar inmediatamente al laboratorio.
• Jeringa estéril.
• Frasco recolector
• Equipo de higiene:
solución yodada y
gasa.
• Pinza quirúrgica.
• Guantes.
Se recomienda enviar
la muestra durante los
primeros 15 minutos de
la recolección, no
exceder de dos horas y
a temperatura
ambiente.
Transportar con
guantes.
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Skin

17. Tecnicas de recoleccion Material y equipo Transporte
•Explicar el procedimiento al paciente.
•Rotular el frasco con el nombre completo del
paciente, registro, fecha de nacimiento, hora de
recolección y cama.
•Pinzar la sonda aproximadamente a 5 cm por
debajo de la Y
•Realizar asepsia con solución yodada en la zona
a de unión del catéter a la bolsa colectora y al
separarlas.
•Esperar a que se acumule la orina suficiente para
extraerla, retirar la pinza.
• Jeringa estéril.
• Frasco recolector
• Equipo de higiene:
solución yodada y gasa.
• Pinza quirúrgica.
• Guantes.
Se recomienda enviar
durante los primeros 15
minutos de la recolección, no
exceder de dos horas y a
temperatura ambiente.
Transportar con guantes.
Sondas Nelaton
Tecnicas de recoleccion Material y equipo Transporte
•La cateterización será realizado por el personal médico o de
enfermería.
•Explicarle al paciente el procedimiento.
•Rotular el frasco con el nombre completo del paciente,
registro, fecha de nacimiento, hora de recolección y cama.
•Realizar técnica aséptica para la limpieza de la sonda
•Pinzar la sonda aproximadamente a 5 cm por arriba del
conector.
•Limpiar con solución yodada el área del conector.
•Retirar la pinza.
•Recolectar la orina en un recipiente de boca ancha, estéril y
tapón de rosca.
•Tapar el recipiente.
•Pinzar de nuevo la sonda.
•Retirar la sonda.
•Enviar inmediatamente al laboratorio.
• Sonda Nelaton.
• Equipo de higiene:
solución yodada y
algodón.
• Pinza quirúrgica.
• Guantes
• Frasco recolector
Se recomienda enviar al
laboratorio durante los
primeros 15 minutos de la
recolección, no exceder de
dos horas y a temperatura
ambiente. Transportar con
guantes.
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Skin and Soft‐Tissue Infections. Clinical
Infectious Diseases 2005; 41:1373–406.

18. Niñas Niños
Es necesario lavar desde la pelvis hasta el
vestíbulo vaginal y la entrada de la uretra con
agua jabonosa, enjuagar con abundante agua.
Secar y lavar con solución yodada. Quitar el
exceso de solución con gasa estéril.
Se debe hacer retracción del prepucio y lavar desde la
pelvis hasta el glande y meato urinario con agua jabonosa,
enjuagar con abundante agua y secar, lavar con solución
yodada. Quitar el remanente de solución con gasa estéril.
Es ideal recoger la muestra de la primera micción del día.
De no ser posible la recolección de la primera orina de la
mañana, es ideal pasar por lo menos 3 horas desde la
última micción para recolectar la muestra de orina
NO está indicada para identificación de anaerobios. Es una muestra importante para la detección de
infecciones causadas por piógenos comunitarios e intrahospitalarios y levaduras.
Tecnicas de recoleccion Material y equipo Transporte
•Explicar el procedimiento al paciente.
•Realizar técnica de asepsia.
•Colocar la bolsa recolectora dependiendo el género del
paciente.
•Fijar la bolsa recolectora.
•Monitorear que el paciente haya orinado la cantidad
suficiente (2-10 ml)
•Una vez obtenido el volumen adecuado se deberá
retirar la bolsa recolectora y sellar.
•Rotular la bolsa con el nombre completo del paciente,
registro, fecha de nacimiento, hora de recolección y
cama. De no contar con bolsa colectora vaciar el
contenido a un recipiente recolector estéril.
•Enviar inmediatamente al laboratorio con extrema
precaución para evitar el derrame de orina y por
consecuencia la contaminación de la misma.
• Bolsa recolectora,
dependiendo el género se
empleará para niña o niño.
• Equipo de higiene: jabón,
solución yodada, gasa.
• Guantes
• Recipiente recolector (si no se
cuenta con bolsa recolectora).
Se recomienda enviar al
laboratorio durante los primeros
15 minutos de la recolección, no
exceder de dos horas y a
temperatura ambiente.
Transportar con guantes.
Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Skin and
Soft‐Tissue Infections. Clinical Infectious Diseases 2005; 41:1373–406.

19. Es conveniente procesar la muestra fresca dentro de las 2 horas de recolectada. Se puede refrigerar
(entre 4 y 8ºC) durante 8 a 12 horas. Cuanto más pronto se procese la muestra, los resultados son
más fiables. En casos particulares se puede procesar la orina pasados estos tiempos, pero debe
aclararse esta situación en el informe. Para estudios del sedimento se puede agregar una gota de fo-
rmaldehído 40% a un volumen de 10 ml, a fin de conservar la muestra durante más tiempo.
Su proveedor puede ordenar este examen si usted tiene síntomas de una infección urinaria o
vesical, tales como dolor o ardor al orinar. También se puede hacer un urocultivo después de
que le hayan tratado una infección con el fin de constatar que todas las bacterias hayan
desaparecido.
Un urocultivo se considera negativo cuando, después de 48-72 horas de incubación de la orina en medio de cultivo, no se nota
crecimiento de colonias de bacterias. Un cultivo de orina se considera positivo cuando, después de este tiempo, es posible
identificar más de 100.000 colonias de bacterias, llamadas colonias de unidades formadoras de colonias (UFC). Cuando el
urocultivo es positivo, el resultado muestra todavía el nombre de la bacteria que ha sido identificada, junto con los antibióticos
que han demostrado ser eficaces en la prevención de su crecimiento, el llamado antibiograma.
El gran problema del urocultivo está cuando hay crecimiento de colonias de bacterias, pero estas son mucho más pequeñas
que los 100.000 UFC. Estos valores pueden ser la contaminación de la muestra de resultados. Actualmente solamente se
valoran urocultivos entre 10.000 y 100.000 UFC cuando también hay piuria en el examen general de orina (leucocitos en orina)
y síntomas clínicos sugestivos de infección del tracto urinario.
Ban KM, Easter JS. Selected urologic problems. In: Marx JA, Hockberger RS, Walls RM, et al,
eds. Rosen's Emergency Medicine: Concepts and Clinical Practice. 7th ed. Philadelphia, PA:
Elsevier Mosby; 2009

20. Método de conteo en placa o recuento
de colonias
Método del asa calibrada
Introducido por Kaas para evitar los riesgos del cateterismo
vesical y diferenciar bacteriuria verdadera de contaminación
Esta estimación cuantitativa consiste en sembrar una placa con
medio de agar-sangre o agar con CLED en una muestra de orina,
sin centrifugar, empleando asa de platino calibrada. Después de
incubar las siembras a 37° durante 24 a 48 horas, se cuenta el
número de colonias desarrolladas y el resultado se multiplica por
100, ya que la asada de platino contiene 0.01 ml. de orina.
• Se homogeneiza la muestra mediante agitación.
• Se diluye la muestra al 1:100, colocando 0.1 ml. de orina en 9.9 ml. de
caldo de tripticasa o de suero fisiológico, estériles.
• Se preparan diluciones al 1:1000 y 1:10 000, a partir de la dilución al
1:100.
• Se deposita 1 ml. de cada dilución en placas de Petri esterilizadas,
sobre las cuales se vacía un tubo de agar-tripticasa o medio CLED,
fundidos y enfriados a 45°. Mediante rotación suave, se favorece la
distribución homogénea de la siembra.
• Se incuban todas las siembras a 37° durante 24 a 48 horas.
• No hubo desarrollo microbiano.
• Menos de 10 000 colonias por ml.
• Entre 10 000 y 100 000 colonias por ml.
• Más de 100 000 colonias por ml.
Para calcular el número de colonias se eligen placas
que contengan entre 30 y 300 colonias. Contadas
éstas, basta multiplicar su número por la dilución
respectiva para obtener la cuenta total.
Cuando se obtienen dos recuentos sucesivos con más de 100 000
colonias por ml, la probabilidad de infección es de 80%, cifra que se eleva
a 95% si el mismo resultado se logra en tres recuentos sucesivos. Por lo
general, las muestras contaminadas tienden a mostrar cuentas inferiores
a 10 000 colonias/ml. Cuando el recuento revela valores intermedios,
entre 10 0000 y 100 000 colonias /ml, el examen debe repetirse. Conviene
advertir que pueden pasar inadvertidas infecciones urinarias verdaderas,
si no se toman en cuenta cuentas inferiores a 100 000 colonias por ml, ya
que existen diversos factores que pueden explicar recuentos bajos en
infecciones urinarias verdaderas, diuresis acentuada, obstrucción uretral,
infecciones crónicas e infecciones por cocos grampositivos
Ban KM, Easter JS. Selected urologic problems. In: Marx JA,
Hockberger RS, Walls RM, et al, eds. Rosen's Emergency
Medicine: Concepts and Clinical Practice. 7th ed.
Philadelphia, PA: Elsevier Mosby; 2009

21. Antibióticos Antibiograma
Ha sido definido como una sustancia
química producida por un
microorganismo capaz de inhibir el
desarrollo de otros microorganismos.
Los antibióticos modificados por
manipulaciones químicas aun se
consideran como tales. Un agente
antimicrobiano es activo contra los
microorganismos y puede ser producido
en forma natural por microorganismos o
sintéticamente en el laboratorio.
El objetivo del antibiograma es el de
medir la sensibilidad de una cepa
bacteriana que se sospecha, es la
responsable de una infección a uno o
varios antibióticos. En efecto, la
sensibilidad in vitro es uno de los
requisitos previos para la eficacia in vivo
de un tratamiento antibiótico. El
antibiograma sirve, en primer lugar, para
orientar las decisiones terapéuticas
individuales.
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/SeminarioAntibioticos.htm

22. La determinación de la Concentración Inhibidora Mínima (CIM) es la base
de la medida de la sensibilidad de una bacteria a un determinado
antibiótico. La CIM se define como la menor concentración de una gama de
diluciones de antibiótico que provoca una inhibición de cualquier
crecimiento bacteriano visible. Es el valor fundamental de referencia que
permite establecer una escala de actividad del antibiótico frente a
diferentes especies bacterianas.
Ciertos mecanismos de resistencia se expresan débilmente in vitro,
cuando se inscriben en el DNA bacteriano. Su expresión en el
organismo, en donde las condiciones en cuanto a medios son
diferentes, expondría al riesgo de fracaso terapéutico. Para evitar
esto, el antibiograma debe ser interpretado de manera global a fin
de descubrir, a través de la comparación de las respuestas para
cada antibiótico, un mecanismo de resistencia incluso débilmente
expresado.
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/SeminarioAntibioticos.htm

23. Cada antibiótico se caracteriza por un espectro natural de actividad
antibacteriana. Este espectro comprende las especies bacterianas que,
en su estado natural, sufren una inhibición de su crecimiento por
concentraciones de su antibiótico susceptibles de ser alcanzadas in vivo.
A estas especies bacterianas se les dice naturalmente sensibles a dicho
antibiótico. Las especies bacterianas que no se encuentran incluidas
dentro de dicho espectro se denominan naturalmente resistentes.
Resistencia
Natural
Resistencia
Adquirida
Resistencia
Asociada
Resistencia
Adquirida
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/SeminarioAntibioticos.htm

24. Mecanismo Genético
La mutación de un gen implicado en el modo
de acción de un antibiótico: Este mecanismo
afecta preferentemente a ciertos antibióticos:
quinolinas, rifampicina, ácido fusídico,
fosfomicina, antituberculosos y a veces
cefalosporinas (Ejemplo: La resistencia a las
quinolonas por modificación del ADN gìrasa
en las enterobacterias).
La adquisición de genes de resistencia
transferidos a partir de una cepa
perteneciente a una especie idéntica o
diferente: Ciertos Antibióticos están
particularmente afectados por este
mecanismo: B- lactámicos, aminoglicósidos,
tetraciclinas; cloranfenicol, sulfamidas
(Ejemplo: Resistencia a la ampicilina E. coli y
del Proteus mirabilis).
Mecanismo Bioquímico
Una producción por la bacteria de enzimas
que inactivan el antibiótico. Ejemplo:
Penicilinasa de los estafilococos, ß
lactamasa de amplio espectro (BLAE) de las
enterobacterias.
Una modificación del blanco del antibiótico.
Ejemplo: Modificación de las Proteínas de
Enlace con la Penicilina (PBP) de los
estafilicocos resistentes a la oxacilina
(llamados estafilococos "Meti-R").
Neumococos resistentes a la penicilina.
Una impermeabilidad de la pared bacteriana
por modificación o por disminución
cuantitativa de las porinas. Ejemplo:
Pseudomonas aeruginosa resistente a la
imipenem.
Un mecanismo de efusión: expulsión de la
molécula por un transporte activo. Ejemplo:
Estafilococos resistentes a las tetraciclinas.
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/SeminarioAntibioticos.htm