Este documento describe la anatomía y microbiota normal del tracto genital masculino y femenino, así como las principales enfermedades infecciosas que afectan el tracto genital, incluyendo infecciones de transmisión sexual. Explica los métodos para la toma de muestras, transporte al laboratorio, exámenes microscópicos directos y cultivos requeridos para el diagnóstico de estas infecciones.
2. Tema 22. Infecciones del tracto genital
1. Anatomía del tracto genital
2. Microbiota normal
3. Enfermedades y agentes etiológicos del tracto genital
4. Toma de muestras y transporte al laboratorio
5. Examen microscópico directo de la muestra
6. Métodos que no requieren cultivo
7. Cultivo de la muestra
4. 2. Microbiota normal
Hombre
Microbiota uretral
• Estafilococos
• Estreptococos
• Lactobacilos
• Corinebacterias
• Neiserias no patógenas
• Enterobacterias y otros bacilos Gram negativos
• Cocos anaerobios
• Cocos y bacilos Gram negativos anaerobios
• Micobacterias y ocasionalmente levaduras
Mujer
Microbiota uretral
• Procede de la piel y de la vagina
5. 2. Microbiota normal
Microbiota vaginal
Varía con el pH y con la concentración de estrógenos de la mucosa (dependiente
de la edad) aunque en la edad fértil predominan los lactobacilos
Período prepuberal: estafilococos y corinebacterias
Período fertil: lactobacilos, enterobacterias, estreptococos, estafilococos,
bacilos anaerobios no esporulados, clostridios
Período de gestación: reducción microbiota anaerobia, aumento microbiota
lactobacilar
Menopausia: microbiota similar a período prepuberal, reducción población
lactobacilar
Algunas mujeres portadoras de Streptococcus agalactiae pueden transmitirlo a sus
hijos en el momento del parto
7. 3. Enfermedades y agentes etiológicos del tracto genital
• Manifestación con formación de vesículas o úlceras
− Treponema pallidum (sífilis, “chancro sifilítico”)
− Herpes simple (herpes, vesículas, úlceras)
− Haemophilus ducreyi (chancro blando)
− Chlamydia trachomatis serotipos L1, L2 y L3 (linfogranuloma venéreo)
− Calymmatobacterium granulomatis (granuloma inguinal)
• Manifestación con formación de eflorescencias cutáneas verrucoides
− Papilomavirus (condilomas acuminados)
8. 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio
El exudado vaginal puede tomarse con asa o con hisopo
Debe emplearse hisopo urogenital (especial): algodón o
rayón tratados con carbón para absorber sustancias
tóxicas para gonococos, enrollados en alambre fino y
flexible
Para muestras virales se recomienda hisopos de Dacrón (menos tóxicos)
En muestras uretrales se introduce hisopo 2 cm
en uretra y se rota suavemente (importante
extraer células epiteliales de mucosa por ser
clamidias patógenos intracelulares)
Las muestras endocervicales deben tomarse con
la ayuda de un espéculo
Se requieren muestras separadas para cultivo de
gonococos, clamidias y ureaplasmas
Espéculo
9. 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio
Las muestras vaginales, uretrales y endocervicales deben procesarse de inmediato
a la cabecera del enfermo para preservar la viabilidad de los microorganismos
Cundo no es posible un procesamiento inmediato, debe utilizarse medio de
transporte Amies o Stuart y mantener a temperatura ambiente
Se puede lograr una recuperación
excelente de gonococos cuando se
inoculan las muestras de forma
directa en placas Jembec (sistema
de transporte y de cultivo a la vez)
El sistema consta de una placa de
plástico delgada y transparente
con medio de cultivo (Thayer-
Martin, Thayer-Martin modificado,
NYC) y una bolsa de plástico con
cierre hermético. El sistema genera su propia atmósfera de CO2 por medio de un
comprimido de bicarbonato sódico
10. 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio
Para la inoculación de la placa Jembec,
se siembra el agar con el hisopo con
rotaciones continuas hacia un lado y
otro con un patrón en W (M) (en el
laboratorio pueden hacerse estrías con
un asa estéril)
En las lesiones vesiculosas la muestra se
toma con jeringa de insulina
En vesículas ulceradas, la muestra se
toma con hisopo frotando enérgicamente
de la base de la úlcera, colocando después
el hisopo en medio de transporte para
virus (Hanks)
Si la muestra para cultivo virológico se ha transportado en medio
bacteriológico tipo Amies, al llegar al laboratorio debe inocularse
de inmediato en cultivos celulares o pasarse a un medio de transporte virológico
11. 5. Examen microscópico directo de la muestra
En fresco: detectar Trichomonas vaginalis (por su gran movilidad) y hongos
(KOH, 10%)
Campo oscuro: visualización de treponemas a partir de una muestra de la base de
la úlcera sifilítica
Tinción de Gram
• Útil para diagnóstico presuntivo de gonorrea en hombres (diplococos Gram
negativos), si la tinción es positiva no se realizan cultivos
• En mujeres posible confusión con microbiota normal
• Válida para confirmar candidiasis
• Sirve también para el diagnóstico de la vaginosis por la presencia de
“células clave” (células epiteliales desprendidas y cubiertas por bacilos
delgados y cocobacilos Gram variables)
12. 6. Métodos que no requieren cultivo
Inmunofluorescencia directa: Chlamydia trachomatis, Herpes simple
Enzimoinmunoanálisis: Chlamydia trachomatis, Herpes simple
Diagnóstico serológico: sífilis
PCR: Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Herpes simple,
papilomavirus
• Algunos kits permiten realizar la prueba a partir de una muestra de orina
• En la actualidad, la PCR es el método de elección para el diagnóstico de
Chlamydia trachomatis
13. 7. Cultivo de la muestra
Neisseria gonorrhoeae: agar Thayer-Martin, agar Thayer-Martin modificado o
agar New York City
Gardnerella: agar sangre
Trichomonas: medio de Roiron, medio Diamond
Herpes simple: cultivo en líneas celulares (Vero, A-549), crecimiento en 24-48
horas
Agar de Thayer-Martin Agar NYC Agar sangre
14. 7. Cultivo de la muestra
Aislamiento de levaduras: agar de Sabouraud con o sin antibióticos, agar
cromogénico
El diagnóstico microbiológico del chancro blando, linfogranuloma venéreo y
granuloma inguinal se efectúa sólo en laboratorios especializados
Agar de Sabouraud
Agar cromogénico
