Este documento describe las principales infecciones de transmisión sexual (ITS), incluyendo gonorrea, clamidia, sífilis, herpes, VIH y hepatitis. Explica los métodos de diagnóstico de laboratorio como microscopía, cultivos, pruebas serológicas y moleculares que se usan para detectar estas ITS. Resalta la importancia de realizar pruebas diagnósticas rápidas para proporcionar un tratamiento temprano, interrumpir la transmisión y controlar brotes de ITS.
Histologia del sistema respiratorio y sus funciones
SEMANA 17 CLASE LABORATORIO EN LAS ITS.ppt
1. EL LABORATORIO EN LAS
INFECCIONES DE TRANSMISIÓN
SEXUAL (ITS)
Dra. Maritza Peralta Quispe
Médico Patólogo Clínico
2. INFECCIONES DE TRANSMISIÓN
SEXUAL (ITS)
• Importante carga de morbimortalidad
• Su importancia radica en su trascendencia de
tipo social ya que son enfermedades frecuentes
y de fácil contagio.
• Se adquieren a través del contacto sexual entre
dos personas, estando una de ellas infectada.
3. INFECCIONES DE
TRANSMISIÓN SEXUAL (ITS)
• Con mayor frecuencia se da en adolescentes y adultos
jóvenes.
• Pruebas diagnosticas en el lugar de atención dx
sistemático y precoz en los sujetos sospechosos de
padecerlas.
• Muchas veces están contagiados y no tienen síntomas.
4. INFECCIONES DE TRANSMISIÓN
SEXUAL
• Primeras ITS reconocidas
• Sífilis
• Chancroide
• Gonorrea
• Granuloma inguinal
• Linfogranuloma venéreo (Chlamidia)
• Herpes genital
• Condyloma Acuminata (verrugas genitales)
7. ITS: LABORATORIO EN LA
PRÁCTICA CLÍNICA
• Pruebas diagnósticas que proporcionen resultados
inmediatos tratamiento etiológico a un mayor nro de
pacientes infectados e interrumpir la cadena de transmisión de
la infección.
• Diagnostico sistemático y precoz de las ITS en sospechosos ,
incluso en asintomáticos
8. ITS: PROPÓSITOS DE LAS
PRUEBAS DIAGNÓSTICAS
• Diagnóstico
• Cribado de grupos de alto riesgo
• Monitorización del tratamiento
• Vigilancia epidemiológica
• Investigación de brotes
• Validación del manejo sindrómico
• Detección de patrones de resistencia
• Investigación
9. CRITERIOS PARA LA SELECCIÓN
DE PRUEBAS DE LABORATORIO EN
ITS
• Sensibilidad y Especificidad
• Confiabilidad
• Rápida y bajo costo.
• Factibilidad
• Aceptabilidad. Depende del tipo de muestra
biológica que se requiera.
• Calidad
11. MANEJO SINDRÓMICO DE
PACIENTES
• Brindar un tratamiento rápido y oportuno con esquemas de
dosis únicas en los casos que sea posible y cuya eficacia
sea igual o mayor al 95 %.
• Ofrecer información y las 4 “C”:
• 1. Consejería para el cambio de conductas hacia
comportamientos de menor riesgo.
• 2. Cumplimiento del tratamiento.
• 3. Contactos en lo que significa su ubicación y manejo.
• 4. Preservativos en lo referente a su promoción.
12. SÍNDROMES EN ITS
• Secreción Uretral (varones).
• Flujo cervical y Dolor Pélvico (mujeres).
• Ulcera genital (ambos).
• Bubón inguinal.
17. ULCERA GENITAL –
LABORATORIO
• Tinción de Gram Haemophilus ducrey
• Wright o Giemsa Calymatobacterium granulomatis.
• Test de Tzanck Herpes virus
• Microscopia de campo oscuro Treponema pallidum
• Pruebas serológicas: Sífilis (Pruebas No treponémicas y
Treponémicas)
18. INFECCIÓN POR
GONOCOCO
Agente: Neisseria gonorrhoeae.
Muestra: Exudado uretral (uretritis) o de cuello
uterino.
Examen: Frotis muestra diplococos
intracelulares gramnegativos (Gram).
S: 90 % (v) 50% (m) y E: 99 % (v) 95 % (m).
Cultivo (Thayer Martin)en mujeres.
Pruebas serológicas: no son útiles.
19. INFECCIONES POR CHLAMYDIA
• Agente: Clamydia trachomatis. Bacilo pequeño
intracelular.
• Muestra: Uretritis, Cervicitis: de las células
columnares de Endocervix. Endometrio: raspado.
• Tinción de Gram
• Cultivo: Técnica de cultivo celular. Inclusiones
Intracitoplasmáticas.
20. INFECCIONES POR
CHLAMIDIA
• Inmunoanálisis enzimáticos (EIA).
• Detección de los antígenos de la Chlamydia.
Sensibilidad: 90 % y Especificidad: 97 %.
• PCR (Reacción en cadena de la polimerasa. S:
100 % y E: 100 %.
• Pruebas moleculares rápidas (GeneXpert
CT/NG)*
* Diagnóstico molecular de Enfermedades Infecciosa-Dr Juan Carlos Goméz de la Torre-2016
23. HERPES GENITAL
• Agente: VHS-2.
• M.O. No es una técnica adecuada.
• Tinción de Tzanck S y E
• Serología : EIA S y E entre 70 a 90%.
• Cultivo: Aislamiento del virus.
• PCR técnica recomendada, permite
diferenciación entre VHS-1 y 2.
24. SÍFILIS
• Agente: Treponema pallidum.
• M.O de campo oscuro y por Inmunofluorescencia directa
• Pruebas serológicas se hacen positivas 3 a 6 semanas de la
infección.
• Prueba de floculación (RPR o VDRL).
• Requiere de Prueba Confirmatoria:
FTA, TPHA.
25. SIFILIS –ETAPAS
Primaria: elección es microscopía de campo
oscuro. No es útil las pruebas serológicas.
Secundaria: En el rash papular cutáneo o en el
condiloma. De elección Pruebas serológicas.
Terciaria : No se encuentra el Treponema.
Pruebas serológicas son útiles
26. SIFILIS: PRUEBAS
SEROLÓGICAS NO
TREPONÉMICAS (REAGINAS).
• VDRL: Veneral Disease Research Laboratory.
• RPR: Rapid Plasma Reagin.
• USR: Unheated Serum Reagin.
• Emplean antígeno lipoidal (cardiolipina, lecitina,
colesterol)
• Fáciles de realizar
• Miden anticuerpos IgG e IgM.
• Los resultados se informan en forma cuantitativa
• Útiles para el seguimiento terapeútico.
27. SIFILIS: PRUEBAS
SEROLÓGICAS
TREPONÉMICAS
FTA – ABS (Fluorescent Treponemal Antibody
Absortion).
TPHA (Hemaglutinación con T. pallidum).
ELISA (Enzyme Linked Inmuno Sorbent Assays).
• Detectan Ab dirigidos contra componentes
treponémicos celulares
• Son exámenes cualitativos
• Son exámenes confirmatorios
• Son sensibles y específicos.
28. SIFILIS – INTERPRETACIÓN
• Prueba No Treponémica Reactiva:
-Mejor en Infección Secundaria
-Infección Reciente tratada o no tratada.
• Prueba Treponémica Reactiva:
-Infección Primaria Inicial.
- Infección Secundaria
-Infección Reciente tratada o no tratada.
-Infección pasada: sífilis tardía en aquellos casos
con prueba No treponémico No reactivos
• Distinguir reacciones debidas a sífilis de las FP
en las pruebas No treponémicas.
29.
30. SIFILIS – INTERPRETACIÓN
• La seroconversión de pruebas no treponémicas a negativo,
en pacientes adecuadamente tratados, ocurre a partir de los
6 meses.
• La seroconversión a negativo de las pruebas treponémicas
también puede ocurrir. Permanecen reactivos de por vida
31. CHANCROIDES
• Agente: Haemophilus ducreyi.
• Examen: frotis de la lesión supurante.
• Tinción de Gram CBGN
• Cultivo: medios selectivos.
• Mayor utilidad PCR.
32. GRANULOMA INGUINAL
• Agente: Calymmatobacterium (donovania) granulomatis.
• Tinción de Gram.
• Cultivos: no son fáciles de recuperar al germen.
• Biopsia: es más útil en la identificación de los “Cuerpos de
Donovan” intracelulares.
• Pruebas serológicas no son útiles.
33. VAGINITIS
• Agente: -Trichomonas vaginalis
-Cándida albicans.
• Microscopia y cultivo Candidiasis
• Examen en fresco y/o cultivos de secreción vaginal.
• Examen de la secreción genital con una preparación de
hidróxido de potasio (KOH).
• pH < 4.5
34. TRICOMONIASIS
• Tricomona vaginalis
• Examen directo y tinción de la secreción.
• Colpitis
• pH> 4.5
• Pruebas rápidas identificación del antígeno.
35. VAGINOSIS BACTERIANA
• Agente: Gardnerella vaginalis y/o
Mobiluncus.
• No es ITS
• Criterios de Amsel
• Examen de la secreción: flujo
grisáceo.
• pH > 4.5
• Test de aminas (+) cuando se
alcaliniza con hidróxido de
potasio.
• Presencia de células guía o
clave.
*El laboratorio en el diagnóstico clínico-John Bernard Henry, M.D
36. INFECCION POR VPH
. VPH DE BAJO RIESGO –TIPO 6 Y 11 – CONDILOMA
ACUMINADO COILOCITOS
. VPH DE ALTO RIESGO– TIPO 16, 18, 30, 31, 33, 35,
OTROS– CA DE CERVIX
. CITOLOGIA CERVICAL (PAP)
. DETECCION MOLECULAR DE VPH ( PCR)