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Cáncer cérvico-uterino control programa capacitación citología
- 1. Harold J Bolaños Bravo MD patólogo http://www.fundacioninnovagen.org
- 2. PROGRAMA DE CAPACITACION EN LA FASE PREANALITICA DE LA CITOLOGIA CERVI-COVAGINAL CONVENCIONAL Y EN BASE LIQUIDA FUNDACION INNOVAGEN AÑO 2013 Fundación Innovagen
- 4. Contenido • Epidemiologia del cáncer de cuello uterino • Plan nacional para el control del cáncer en Colombia 2010-2019 • Normatividad vigente • Factores de riesgo para el cáncer de cuello uterino. • Infección por el Virus del Papiloma Humano • Importancia de un programa de control de cáncer de cuello uterino • Causas mas frecuentes de citologías falsas negativas • Factores que limitan la sensibilidad de la citología como método de tamizaje del cáncer del cuello uterino • Indicadores de mala calidad en la citología cérvico-vaginal • Normas de bioseguridad • Fase preanalítica • Utilidad de la citología en base líquida
- 12. Boletín de la Organización Mundial de la Salud Recopilación de articulos Volumen 89: 2011 Volumen 89, Número 9, septiembre 2011, 621-700
- 19. Woodman et al. Nature Reviews Cancer 7, 11–22 (January 2007) | doi:10.1038/nrc2050
- 20. IMPORTANCIA DE UN PROGRAMA DE TAMIZAJE EN CANCER DE CERVIX. • El uso de la citología redujo la incidencia y la mortalidad por cáncer de cérvix en un 40- 50% en los países con programas de cáncer de cérvix bien organizados. • La sensibilidad de la citología ha sido estimada según diferentes series entre el 50 al 75% y la especificidad del 98%.
- 21. Causas de falsos negativos 1. Error en la obtención de la muestra por parte del clínico o personal paramédico. 2. Falla en los citotecnólogos en el reconocimiento de células anormales ( error de tamizaje) 3. Falla en los patólogos en identificar en forma precisa las células anormales de las placas revisadas ( error de interpretación).
- 22. Para recordar Las dos terceras partes de los falsos negativos son el resultado de un error en la obtención de la muestra y una tercera parte son errores de tamizaje e interpretación.
- 23. Factores que limitan la sensibilidad de la prueba 1. Tamaño pequeño de la lesión 2. Localización inasequible de la lesión 3. Número insuficiente de células anormales en el extendido. 4. Presencia de inflamación y sangrado que oscurece la visualización
- 24. Indicadores de mala calidad • Extendidos gruesos • Extendidos demasiado delgados • Exceso de presión al hacer el extendido • Laminas engrasadas, con polvo • Secado al aire • Extendidos con material insuficiente • Problemas con la fijación y mala coloración . • Placa marcada incorrectamente
- 25. NORMAS DE BIOSEGURIDAD F
- 27. Recomendaciones para la toma de la citología 1. El momento ideal para la toma de citología es durante la mitad del ciclo. 2. La citología no debe obtenerse durante la menstruación. 3. No aplicación de óvulos cremas vaginales ,duchas vaginales o relaciones sexuales 48 horas previas a la toma de citología. 4. En el periodo postparto no debe realizarse la citología antes de haber transcurrido un mínimo de 6 a 8 semanas después del parto, momento para el cual ya habrán concluido los cambios reparativos necesarios en el cuello uterino. 5. Si la mujer es postmenopáusica y en frotis previos no se observaron células endocervicales o el extendido fue atrófico, puede prepararse el cuello uterino con tres semanas de tratamiento a base de un crema de estrógeno intravaginal.
- 28. Elementos para la toma de la citología
- 32. Entrevista
- 33. Técnica citología convencional 1. Diligenciamiento del formato de citología 2. Rotular placa 3. Preparar los elementos para la toma de citología: placa, espátula de Ayre, citocepillo, citofijador, especulo, guantes, caja portaobjetos. 4. Preparación de la paciente con vejiga vacía y posición ginecológica.
- 34. A B C
- 41. Toma de la muestra en citología convencional
- 44. A B C D
- 45. N o Exocervix Endocervix m a r c a r
- 49. Inadecuado Iniciales de nombres y apellidos Número de identificación Código del laboratorio Adecuado
- 53. Toma de la citología en base líquida
- 54. Solución preservante Cervex-Brush® Cervex-Brush® Combi
- 55. 1 5 vueltas 2 Remisión 3
- 56. Procesamiento de la citología en base líquida
- 58. Inicio Citología en fase liquida Pruebas complementarias - DNA para VPH © 2012 www.fundacioninnovagen.org
- 59. Genotipificación viral por PCR-TR Unidad de extracción de ADN Unidad de amplificación PCR-TR
- 60. MUCHAS GRACIAS POR SU ATENCION
Notas del editor
- Basal cells in the cervical epithelium rest on the basement membrane, which is supported by the dermis. Human papillomavirus (HPV) is thought to access the basal cells through micro-abrasions in the cervical epithelium. Following infection, the early HPV genes E1, E2, E4, E5, E6 and E7 are expressed and the viral DNA replicates from episomal DNA (purple nuclei). In the upper layers of epithelium (the midzone and superficial zone) the viral genome is replicated further, and the late genes L1 and L2, and E4 are expressed. L1 and L2 encapsidate the viral genomes to form progeny virions in the nucleus. The shed virus can then initiate a new infection. Low-grade intraepithelial lesions support productive viral replication. An unknown number of high-risk HPV infections progress to high-grade cervical intraepithelial neoplasia (HGCIN). The progression of untreated lesions to microinvasive and invasive cancer is associated with the integration of the HPV genome into the host chromosomes (red nuclei), with associated loss or disruption of E2, and subsequent upregulation of E6 and E7 oncogene expression. LCR, long control region.