Este documento clasifica los glóbulos blancos en dos categorías principales: polimorfonucleares y mononucleares. Los polimorfonucleares incluyen neutrófilos, eosinófilos y basófilos, mientras que los mononucleares incluyen linfocitos y monocitos. Además, proporciona rangos normales para cada tipo de célula blanca y porcentajes en la fórmula leucocitaria a diferentes edades.

1. Formula leucocitaria

2. Clasificacion de globulos blancos
 Polimorfonucleares
 Neutrófilos
 Eosinófilos
 Basófilos
 Mononucleares
 Linfocitos
 Monocitos

3. Rango2(células/
Célula Porcentaje
mm³)
Leucocitos 2000-11000 100%
Neutrófilos 400-7200 54-62%
Linfocitos 800-4000 25-33%
Monocitos 200-900 3-7%
Eosinófilos 0-700 1-3%
Basófilos 0-150 0-1%

4. Formula blanca
Elemento 1d 1s 2s 1m 3m 6m 1a 2a 4-5 a 8-12a
Leucocito 15-20 13- 12 11 10-11 10 9,5-10 8,5-9 8 8
miles/mm3 14
Neutrofilo 55-60 50 35 34 33 36 40 40 50-55 60
Eosinofilo Mantiene valores entre 1 - 5
Basofilos Mantiene valores entre 0 – 0,5
Linfocitos 20 40 50-55 56 57 54 53 50 40 30
Monocitos 10 9 8 7 6-7 6 5-6 7 7 7

5. Formula blanca
IZ Leucocitos DR
Granulocitos Glóbulos Agranulocitos
Blancos
Eosinófilo Monocitos
Neutrofilo Linfocitos
Basófilo
Linfocitos B Linfocitos T
Linfocitos NK

6. Neutrófilos en cayado 0-2%
Neutrófilos egmentados 55 - 65 %
Eosinófilos 1-5%
Basófilos 0-1%
Linfocitos 20 - 45 %
Monocitos 3-8%
formas inmaduras en la sangre, ya que aparecian las celulas en cayado
que son los precursores de los neutrofilos

7. desviación a la izquierda creciente
desviación a la izquierda degenerativa

8.  la desviación a la izquierda puede ser:
 Leve ( leucocitos baciliformes)
 Regular o moderada (baciliformes y de
metamielocitos)
 Marcada (si son baciliformes, metamielocitos y
mielocitos o más inmaduros (como premielocitos o
mieloblastos)).

9. Linfocitosis

10. Lifocitosis relativa
 50% de linfocitos con cifras leucocitarias
disminuidas, normales o poco aumentadas
• infecciones virales respiratorias,
•digestivas
•exantemáticas
(sarampión, rubéola, varicela)
Con aproximadamente 10% o más de linfocitos atípicos o
hiperbasófilos.
Con menor frecuencia se presentan en
tifoidea, brucelosis, tuberculosis.

11. Linfocitosis absoluta
 Más de 10 000 linfocitos mm3, con cifras leucocitarias aumentadas
que pueden llegar a ser > de 50 000 mm3.
 Se presentan en coqueluche,
 adenovirus tipo 12
 linfocitosis infecciosa
mononucleosis infecciosa. Esta última, aproximadamente
en la 2ª semana de evolución presenta más de 20% de
linfocitos medianos o grandes hiperbasófilos
 . Este síndrome mononucleósico también se puede ver en
toxoplamosis, enfermedad por citomegalovirus, hepatitis
infecciosa, y medicamentos (PAS, hidantoínicos).

12. EXAMEN DE ORINA

13. Tecnicas de Recolección

14.  PH: ácido
 Densidad: sin restricción hídrica= 1.015-1.025
con 12 hs de restricción hídrica= > 1.025
 Proteinuria de 24 horas:
Normal= menos de 5mg/kg/día
Significativa= 5-50 mg/kg/día
Masiva o rango nefrótico= más de 50 mg/kg/día o de .
40 mg/m2/hora
 Hematuria: cualitativa negativa
 Glucosuria:
cualitativa negativa(cinta)
cuantitativa < 0,3-0,5 gr/24 hs

15.  Calciuria en 24 hs: hasta 5 mg/kg/día
 Relación calcio/creatinina (una sola muestra,la segunda de la mañana): menos de 0,2
 Creatinuria: Lactantes-Niños= 8-22 mg/kg/día
Adolescentes= 8-30 mg/kg/día
 Osmolaridad (muestra aislada): Lactantes 50-600 mOsm/lt
Niños mayores 50-1400 mOsm/lt
 Ionograma urinario: Relación potasio/sodio= 2:1
 Volúmen normal: 1-2 cc/kg/hora
 Sedimento: ocasionalmente cilindros hialinos
 Células: Glóbulos rojos= 0-3 por campo
Glóbulos blancos= 0-5 por campo
Epiteliales presentes con mayor frecuencia en RN

16. Examen fisico de orina
 Aspecto: normal- turbio(
leucocito, gr, bacteria, cristal, grasa)
 Color: va de amarillo hasta ámbar. Anormal por
Sangre, medicamento, alimento otro pigmentos
 Olor: el olor característico es sui generis o aromático

17. Color Causas
Incoloro •Ingesta hídrica elevada
•Poliuria (diabetes insípida, diabetes
mellitus)
Rosado •Eritrocitos
Amarillo oscuro •Orina concentrada
Rojo •Hemoglobina
•Mioglobina
•Porfirinas
•Fenidiona
•Anilinas
Ámbar •Bilirrubina
Café •Eritrocitos
Anaranjado •Flavinas
•Carotenos
•Nitrofurantoína
Negro •Mioglobina
•Ac. homogentísico
•Metildopa o levodopa
•Metronidazol
•Melanina

18. Amarillo verdoso •Biliverdina
•Ruibarbo
Amarillo-café
•Furazolidona
Verde •Pseudomonas aeruginosa
Azul verdoso •Amitriptilina
•Clorets
•Indicán
•Azul de metileno

19. Olor
Olor Causas
Dulzón •Cetonas
•Infección del tracto urinario por
Amoniacal
gérmenes con ureasa
Jarabe de Arce •Enfermedad por "Jarabe de arce"
Pies sudados •Acidemia glutárica isovalérica o butírica
•Tirosinemia
Rancio
•Hipermetioninemia
Pasto enmohecido •Fenilquetonuria
Drogas •Penicilinas
Alimentos •Espárragos

20. Examen quimico de orina
 pH:tiene un rango de 4.5 a 8.0, pero en muestras matinales
es levemente ácido, con pH de 5.0 a 6.0.
 Nitritos: no se encuentran en la orina, sugiriendo así una
probable infección urinaria
 Glucosa: Menos de 0.1% de la glucosa .
tubulopatías, alteraciones tiroideas y daño del S.N.C.
 Proteinuria de 24 horas:
Normal= menos de 5mg/kg/día
Significativa= 5-50 mg/kg/día
Masiva o rango nefrótico= más de 50 mg/kg/día o de . 40 mg/m2/hora
 Densidad: sin restricción hídrica= 1.015-1.025
con 12 hs de restricción hídrica= > 1.025

21. Densidad segun la edad
Edad densidad
1 – 3 dias 1.010 – 1.012
4 – 10 dias 1.004 – 1.008
10 d . – 6to mes 1.006 – 1.012
2a. – 8 a. 1.008 – 1.016
Ninos > 1.015 – 1.020

22. Sedimento
 Sedimento: ocasionalmente cilindros hialinos
 Células: Glóbulos rojos= 0-3 por campo
Glóbulos blancos= 0-5 por campo

23. I.V.U.
 Etiologia: pedominio Gram –
 E. coli se aísla en 80%
 Otras especies:
géneros Enterobacter, Proteus, Citrobacter,
Pseudomonas, Serratia

24. Método de conteo en placa o recuento de
colonias.
 ntroducido por Kaas para evitar los riesgos del cateterismo vesical
siguiente manera:
 Se homogeneiza la muestra mediante agitación.
 Se diluye la muestra al 1:100, colocando 0.1 ml. de orina en 9.9 ml.
de caldo de tripticasa o de suero fisiológico, estériles.
 Se preparan diluciones al 1:1000 y 1:10 000, a partir de la dilución
al 1:100.
 Se deposita 1 ml. de cada dilución en placas de Petri
esterilizadas, sobre las cuales se vacía un tubo de agar-tripticasa o
medio CLED, fundidos y enfriados a 45°. Mediante rotación
suave, se favorece la distribución homogénea de la siembra.
 Se incuban todas las siembras a 37° durante 24 a 48 horas.
 Para calcular el número de colonias se eligen placas que contengan
entre 30 y 300 colonias. Contadas éstas, basta multiplicar su
número por la dilución respectiva para obtener la cuenta total.

25. Bacteriuria
Colonias R// 1era vez R// 2da vez
<10.000 No infeccion No infeccion
10.000 – 50.000 dudoso Sospecha de infeccion
50.000 – 100.000 dudoso Hay infeccion
>100.000 infeccion Hay infeccion

26. Coprocultivo
 los patógenos habituales como Salmonella y
Schigella.
 los casos especiales, si se sospecha de Escherichia
Coli
enteropatógena, enteroinvasora, enterotoxigénica, e
nterohemorrágica , o entero agregante;
Campylobacter, etc. Yersinia enterocólitica, etc.
 Estudios parasicológicos.
 Estudio oxiuros.

27.  Pastoza
 Se ve sangre moco o pus
 Heces formadas o pastosas: al menos 1 ó 2 gr. para
virología, añadir de 2 a 4 gr. más. Muestras del
tamaño de una nuez
 Heces líquidas: entre 5 y 10 ml.
 Oxiuros: muestra de cinta en la manana

28. Gracias