RECUENTO DIFERENCIAL DE
LEUCOCITOS.
Requiere realizar un frotis, tinción Wright y
conteo.
Su finalidad es diferenciar los leucocitos, así
como reportar la presencia de células en la
sangre que deberían estar en la médula ósea.
EXTENDIDOS DE
SANGRE.
• Cabeza con margen
de 1.5 a 1.9 cm.
• Borde de la cola
finamente
deshilachado
(barbas).
• Extensión fina y
homogénea.
• ¾ partes del
portaobjetos.
ERRORES EN LOS
FROTIS.
FROTIS IDEAL.
Se visualizan dos neutrófilos
y un monocito, rodeados de
eritrocitos.
TINCIÓN DE WRIGHT.
 El colorante está compuesto de azul de metileno en un 50-75% (que tiñe de azul
las partes ácidas de las células) y eosina (tiñe partes alcalinas), disueltos en
metanol (permite fijación de células).
 Tiñe el núcleo de púrpura, dejando el citoplasma ligeramente azulado.
 Dada la presencia de metanol, no requiere fijación antes de la coloración.
 En caso de no teñir el mismo día el extendido, fijar para evitar deterioro del frotis.
 La sangre cambiará de rojo a café claro si se fija con alcohol metílico.
MATERIALES PARA REALIZAR
TINCIÓN.
 Frotis sanguíneo.
 Puente de tinción.
 Colorante de Wright.
 Solución buffer pH 7,2.
 Piseta.
 Cristalizador o vertedero.
 Pipeta Pasteur.
 Tubo de ensayo.
 Cubre objetos.
PROCEDIMIENTO.
1. Se coloca el puente de tinción en el cristalizador o en un vertedero con el frotis encima.
2. Se cubre de colorante Wright utilizando una pipeta Pasteur. Esperar un minuto, escurrir y
enjuagar con solución buffer.
3. Dejar secar verticalmente.
4. Mezclar en un tubo de ensayo 0.5 ml de Wright y 0.5 ml de solución buffer.
5. Aplicar en la muestra y deja actuar de 3 a 5 minutos.
6. Escurrir exceso de colorante y enjuagar con agua destilada.
7. Lavar de nuevo con solución buffer.
8. Escurrir y dejar secar verticalmente de nuevo.
9. Finalmente, colocar cubre objetos una vez haya secado.
Colorante Wright (1
minuto).
Mezcla de Wright y solución
tampón (3-5 minutos).
RESULTADOS DEL FROTIS.
 Núcleos de leucocitos en azul púrpura, con cromatina y paracromatina
diferenciadas.
 Gránulos de neutrófilos en lila o violeta
 Gránulos eosinófilos en rojo-naranja.
 Gránulos basófilos, púrpura-azul oscuro.
 Citoplasma de linfocitos azul claro.
 Citoplasma de monocitos ligero azul.
 Hematíes en rosa y plaquetas lila oscuro.
CONTEO DIFERENCIAL EN MICROSCOPIO.
 Requiere un esquema ilustrado de los cinco tipos de leucocitos distintos.
 Colocar frotis sanguíneo sobre la platina del microscopio. Enfocar directamente con el
objetivo de 100x (inmersión).
 Contar 100 leucocitos y anotar el número correspondiente de neutrófilos, basófilos,
eosinófilos, linfocitos y monocitos.
 Para obtener las cifras absolutas, transformar la cifra porcentual de cada tipo de leucocito,
tomando como número total al cien.
VALORES NORMALES
 Neutrófilos 60-70%,
 Eosinófilos 2-4%,
 Basófilos 0,5-1%,
 Linfocitos 20-25%
 Monocitos 3-8%.

Recuento diferencial de leucocitos

  • 1.
    RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS. Requiererealizar un frotis, tinción Wright y conteo. Su finalidad es diferenciar los leucocitos, así como reportar la presencia de células en la sangre que deberían estar en la médula ósea.
  • 2.
    EXTENDIDOS DE SANGRE. • Cabezacon margen de 1.5 a 1.9 cm. • Borde de la cola finamente deshilachado (barbas). • Extensión fina y homogénea. • ¾ partes del portaobjetos.
  • 3.
  • 4.
    FROTIS IDEAL. Se visualizandos neutrófilos y un monocito, rodeados de eritrocitos.
  • 5.
    TINCIÓN DE WRIGHT. El colorante está compuesto de azul de metileno en un 50-75% (que tiñe de azul las partes ácidas de las células) y eosina (tiñe partes alcalinas), disueltos en metanol (permite fijación de células).  Tiñe el núcleo de púrpura, dejando el citoplasma ligeramente azulado.  Dada la presencia de metanol, no requiere fijación antes de la coloración.  En caso de no teñir el mismo día el extendido, fijar para evitar deterioro del frotis.  La sangre cambiará de rojo a café claro si se fija con alcohol metílico.
  • 6.
    MATERIALES PARA REALIZAR TINCIÓN. Frotis sanguíneo.  Puente de tinción.  Colorante de Wright.  Solución buffer pH 7,2.  Piseta.  Cristalizador o vertedero.  Pipeta Pasteur.  Tubo de ensayo.  Cubre objetos.
  • 7.
    PROCEDIMIENTO. 1. Se colocael puente de tinción en el cristalizador o en un vertedero con el frotis encima. 2. Se cubre de colorante Wright utilizando una pipeta Pasteur. Esperar un minuto, escurrir y enjuagar con solución buffer. 3. Dejar secar verticalmente. 4. Mezclar en un tubo de ensayo 0.5 ml de Wright y 0.5 ml de solución buffer. 5. Aplicar en la muestra y deja actuar de 3 a 5 minutos. 6. Escurrir exceso de colorante y enjuagar con agua destilada. 7. Lavar de nuevo con solución buffer. 8. Escurrir y dejar secar verticalmente de nuevo. 9. Finalmente, colocar cubre objetos una vez haya secado.
  • 8.
    Colorante Wright (1 minuto). Mezclade Wright y solución tampón (3-5 minutos).
  • 9.
    RESULTADOS DEL FROTIS. Núcleos de leucocitos en azul púrpura, con cromatina y paracromatina diferenciadas.  Gránulos de neutrófilos en lila o violeta  Gránulos eosinófilos en rojo-naranja.  Gránulos basófilos, púrpura-azul oscuro.  Citoplasma de linfocitos azul claro.  Citoplasma de monocitos ligero azul.  Hematíes en rosa y plaquetas lila oscuro.
  • 10.
    CONTEO DIFERENCIAL ENMICROSCOPIO.  Requiere un esquema ilustrado de los cinco tipos de leucocitos distintos.  Colocar frotis sanguíneo sobre la platina del microscopio. Enfocar directamente con el objetivo de 100x (inmersión).  Contar 100 leucocitos y anotar el número correspondiente de neutrófilos, basófilos, eosinófilos, linfocitos y monocitos.  Para obtener las cifras absolutas, transformar la cifra porcentual de cada tipo de leucocito, tomando como número total al cien.
  • 11.
    VALORES NORMALES  Neutrófilos60-70%,  Eosinófilos 2-4%,  Basófilos 0,5-1%,  Linfocitos 20-25%  Monocitos 3-8%.