Secuenciar ????




Establecer el orden exacto de las 4 bases
(A,C,G,T) a lo largo de un fragmento de ADN.
Métodos básicos de secuenciación

Método químico de Maxam y Gilbert
Maxam, A.M. and Gilbert,W.
(1977) A new method for sequencing DNA.
Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 560-564.

Método enzimático de Sanger
Sanger, F., Micklen, S.,and Coulson, A.R.
(1977) DNA sequencing and chain terminating
inhibitors.
Proc. Natl. Acad.
Sci. USA, 74, 5463-5467
Frederick Sanger y Walter
                         Gilbert compartieron, en
                         1980, el premio Nobel de
                         química por haber
                         desarrollado
                         independientemente métodos
                         de secuenciación del ADN .
                         Sanger ganó anteriormente
                         el premio Nobel de 1959 por
                         la secuenciación de la
                         proteína insulina.



F. Sanger   W. Gilbert
Método químico de Maxam y Gilbert

El fragmento de ADN se marca en sus extremos
con Ɣ 32P ó Ɣ 32S dATP por acción de la
Polinucleótido Quinasa.

Las moléculas marcadas se rompen con
reacciones químicas específicas para cada una
de las cuatro bases.

Los productos luego se resuelven en
función de su tamaño en geles de
poliacrilamida.
Extremo marcado radioactivamente 5' o 3‘.

El tratamiento químico rompe la unión
glicosídica entre la ribosa y el nucleótido.

Reacciones químicas específicas
–G : DMS, piperidina
–A + G: DMS, ácido fórmico,piperidina
– C+T: Hidracina, piperidina
–C : Hidracina en 1.5M NaCl, piperidina(rompe la unión
fosfodiester)

Electroforesis en gel + Autoradiografía
USOS

Secuenciar oligonucleótidos sintéticos

Analizar modificaciones en la
estructura del adn (ejemplo: metilación
de bases)

Estudiar la estructura secundaria del
ADN o su interacción con proteínas
(ejemplo: experimentos de protección
química).
Método de secuenciación de Sanger




Desarrollado en 1977 por Frederick Sanger.

Método Bioquímico (usa una polimerasa).

Basado en la incorporación de
Dideoxinucleótidos (ddNTPs) que detienen el
crecimiento de la cadena de ADN.
Los dideoxinucleótidos no tienen OH
en carbono 2' ni en 3' de la
desoxirribosa, por lo que no pueden
formar enlaces fosfodiéster.
Durante la secuenciación se llevan a cabo cuatro
reacciones de síntesis separadas incluyendo en
cada una de ellas pequeñas cantidades de los
dideoxinucleótidos (ddNTP: ddGTP; ddATP, ddCTP,
ddTTP)
se requiere:
+ Primer Marcado
+ ADN polimerasa
+ 4 dNTPs
+ ddATP
Al incorporarse un dideoxinucleótido finaliza la copia del
templado y se generan fragmentos de distintos tamaños.

                                   Los ddNTP compiten
                                   con los dNTP
                                   para ser incorporados.
                                   produciendo
                                   una mezcla de cadenas
                                   de distintas
                                   longitudes.
La sustitución de uno de
los dNTPs por el mismo
nucleótido marcado
radiactivamente permite
la visualización de las
bandas de distinta
longitud por
autoradiografía.
En el gel la separación de las
distintas bandas se produce
en función
de su tamaño y la secuencia
puede
determinarse leyendo las
bandas de los
cuatro carriles.
Los protocolos de secuenciación
automática:

Son una alternativa al método de Sanger.

Se utilizan compuestos fluorescentes para
 “marcar” al “primer” ó a los terminadores.

Los productos de la reacción se detectan
 directamente durante la electroforesis.

Los fluoróforos son excitados por la luz de
  un láser y luego el equipo detecta la fluorescencia
 emitida.

La reacción se realiza en un ciclador
Las reacciones de secuenciación
automática pueden emplear:



Terminadores fluorescentes

Primers fluorescentes
Secuenciación empleando
terminadores fluorescentes

Se realiza una única reacción de
secuencia
en presencia de los cuatro ddNTPs, cada
uno de ellos marcados con una sonda
fluorescente distinta.
Las sondas empleadas son:
A ---> JOE.
Emisión: verde. Derivado de
fluoresceína
C ---> FAM.
Emisión: azul. Derivado de
fluoresceína
G --> TAMRA.
Emisión: amarillo. Derivado de
rodamina
T --> ROX.
Emisión: rojo. Derivado de
rodamina
Secuenciación empleando
primers fluorescentes


Se realizan cuatro reacciones de secuencia
distintas en cada una de las cuales se añade el
“primer” marcado en 5´ con una sonda
fluorescente distinta, junto con la polimerasa, los
dNTPs y el ddNTP correspondiente.
En la secuenciación cíclica solo se utiliza UNO de los
dos primers a la vez.
Si utilizáramos al mismo tiempo ambos “primers”,
como en un PCR común, resultarían dos secuencias
solapadas ( la del templado y la de su cadena
complementaria).
Aplicaciones de la secuenciación de ADN
Secuenciación genómica

Evaluación del clonado en vectores
Diagnóstico de enfermedades :
bacterianas
virales
protozoos
hongos
cáncer
genéticas

Detección de polimorfismos (single nucleotide
polymorphism)
Forense
ADNs fósiles
Pcr secuenciacion

Pcr secuenciacion

  • 1.
    Secuenciar ???? Establecer elorden exacto de las 4 bases (A,C,G,T) a lo largo de un fragmento de ADN.
  • 2.
    Métodos básicos desecuenciación Método químico de Maxam y Gilbert Maxam, A.M. and Gilbert,W. (1977) A new method for sequencing DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 560-564. Método enzimático de Sanger Sanger, F., Micklen, S.,and Coulson, A.R. (1977) DNA sequencing and chain terminating inhibitors. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 5463-5467
  • 3.
    Frederick Sanger yWalter Gilbert compartieron, en 1980, el premio Nobel de química por haber desarrollado independientemente métodos de secuenciación del ADN . Sanger ganó anteriormente el premio Nobel de 1959 por la secuenciación de la proteína insulina. F. Sanger W. Gilbert
  • 4.
    Método químico deMaxam y Gilbert El fragmento de ADN se marca en sus extremos con Ɣ 32P ó Ɣ 32S dATP por acción de la Polinucleótido Quinasa. Las moléculas marcadas se rompen con reacciones químicas específicas para cada una de las cuatro bases. Los productos luego se resuelven en función de su tamaño en geles de poliacrilamida.
  • 5.
    Extremo marcado radioactivamente5' o 3‘. El tratamiento químico rompe la unión glicosídica entre la ribosa y el nucleótido. Reacciones químicas específicas –G : DMS, piperidina –A + G: DMS, ácido fórmico,piperidina – C+T: Hidracina, piperidina –C : Hidracina en 1.5M NaCl, piperidina(rompe la unión fosfodiester) Electroforesis en gel + Autoradiografía
  • 8.
    USOS Secuenciar oligonucleótidos sintéticos Analizarmodificaciones en la estructura del adn (ejemplo: metilación de bases) Estudiar la estructura secundaria del ADN o su interacción con proteínas (ejemplo: experimentos de protección química).
  • 9.
    Método de secuenciaciónde Sanger Desarrollado en 1977 por Frederick Sanger. Método Bioquímico (usa una polimerasa). Basado en la incorporación de Dideoxinucleótidos (ddNTPs) que detienen el crecimiento de la cadena de ADN.
  • 11.
    Los dideoxinucleótidos notienen OH en carbono 2' ni en 3' de la desoxirribosa, por lo que no pueden formar enlaces fosfodiéster.
  • 12.
    Durante la secuenciaciónse llevan a cabo cuatro reacciones de síntesis separadas incluyendo en cada una de ellas pequeñas cantidades de los dideoxinucleótidos (ddNTP: ddGTP; ddATP, ddCTP, ddTTP)
  • 13.
    se requiere: + PrimerMarcado + ADN polimerasa + 4 dNTPs + ddATP Al incorporarse un dideoxinucleótido finaliza la copia del templado y se generan fragmentos de distintos tamaños. Los ddNTP compiten con los dNTP para ser incorporados. produciendo una mezcla de cadenas de distintas longitudes.
  • 14.
    La sustitución deuno de los dNTPs por el mismo nucleótido marcado radiactivamente permite la visualización de las bandas de distinta longitud por autoradiografía.
  • 15.
    En el gella separación de las distintas bandas se produce en función de su tamaño y la secuencia puede determinarse leyendo las bandas de los cuatro carriles.
  • 16.
    Los protocolos desecuenciación automática: Son una alternativa al método de Sanger. Se utilizan compuestos fluorescentes para “marcar” al “primer” ó a los terminadores. Los productos de la reacción se detectan directamente durante la electroforesis. Los fluoróforos son excitados por la luz de un láser y luego el equipo detecta la fluorescencia emitida. La reacción se realiza en un ciclador
  • 17.
    Las reacciones desecuenciación automática pueden emplear: Terminadores fluorescentes Primers fluorescentes
  • 18.
    Secuenciación empleando terminadores fluorescentes Serealiza una única reacción de secuencia en presencia de los cuatro ddNTPs, cada uno de ellos marcados con una sonda fluorescente distinta.
  • 19.
    Las sondas empleadasson: A ---> JOE. Emisión: verde. Derivado de fluoresceína C ---> FAM. Emisión: azul. Derivado de fluoresceína G --> TAMRA. Emisión: amarillo. Derivado de rodamina T --> ROX. Emisión: rojo. Derivado de rodamina
  • 20.
    Secuenciación empleando primers fluorescentes Serealizan cuatro reacciones de secuencia distintas en cada una de las cuales se añade el “primer” marcado en 5´ con una sonda fluorescente distinta, junto con la polimerasa, los dNTPs y el ddNTP correspondiente. En la secuenciación cíclica solo se utiliza UNO de los dos primers a la vez. Si utilizáramos al mismo tiempo ambos “primers”, como en un PCR común, resultarían dos secuencias solapadas ( la del templado y la de su cadena complementaria).
  • 26.
    Aplicaciones de lasecuenciación de ADN Secuenciación genómica Evaluación del clonado en vectores Diagnóstico de enfermedades : bacterianas virales protozoos hongos cáncer genéticas Detección de polimorfismos (single nucleotide polymorphism) Forense ADNs fósiles