Este documento trata sobre los aspectos más importantes del análisis del liquido seminal. Explica la fisiología de la formación del semen, el proceso de espermatogénesis y la maduración de los espermatozoides. Además, detalla los procedimientos correctos para la recogida y análisis de muestras de semen, incluyendo la evaluación de parámetros como el volumen, pH, movilidad, recuento y morfología de los espermatozoides. Finalmente, establece los criterios de normalidad según la Organ

1. En esta parte trataremos los aspectos mas importantes
al momento de analizar liquido seminal.

2. Fisiología del semen
 La formación del semen ocurre en el testículo del
varón.
 Las células de Leydig, o células intersticiales, se
encuentran situadas en el estroma conjuntivos entre y
por fuera de los túbulos seminíferos, son las
principales estructuras productoras de esteroides,
fundamentalmente andrógenos, como la testosterona,
la hormona mas importante.

3. Espermatogenesis
 Tiene lugar en el tejido que recubre la cara interna
delos túbulos seminíferos, por diferenciación celular a
partir de las células del epitelio geminal. Una vez
formados, los espermatozoides son transportados
pasivamente al epidídimo, donde contemplan su
maduración y actúan como almacenes de
espermatozoides.

4. Análisis del liquido seminal
 Aunque este método no comprenda gran complejidad
étnica a estado durante años una gran controversia

5. Recogida de la muestra de esperma

6.  Una correcta recolección de la muestra de semen es de
vital importancia para un diagnostico final correcto.
 Existen varios factores a la hora de la recolección de la
muestras, por ejemplo días previos de abstinencia, y
que debe efectuarse atraves de la masturbación.

7. Normas de recogida de esperma
 Mantener un periodo de continencia sexual de 2-7dias
 Utilizar para la recogida exclusivamente recipientes
suministrados por el laboratorio
 No usar preservativos para la recogida
 Recoger el total de la muestra posmaturbacion
 Remitir la muestra lo antes posible al laboratorio,
nunca mas de 30 minutos
 Anotar en el envase la hora de recogida de la muestra
 Estar en ausencia de procesos febriles un mes antes
 Ausencia quirúrgica 2 meses antes

9. Aspecto
 El eyaculado humano es un fluido cremoso, de color
blanco grisáceo, opalescente y ligeramente
transparente.
 Cualquier alteración del aspecto puede indicar alguna
patología.
 El semana muy claro puede indicar oligospermia o
azoospermia
 El rojizo una hematospernia
 El amarillento suele estar asociado a infecciones, alta
ingestión de vitamina B12 o tras una elevada
abstinencia sexual ( por la oxidación en las vesículas).

10. Licuefacción
 Recién eyaculado el semen presenta un aspecto
gelatinoso, con formación de coágulos o grumos;
 Comienza de inmediato una fase de licuación, que
dependen de activadores de plasminogeno, originados
en la próstata y las glándulas de cowper y ocurre
usualmente antes de los 15 minutos tras la eyaculación.
 Si el tiempo transcurrido es para la muestra es mayor
debe indicarse en el informe.

11. Viscosidad
 La viscosidad se determina una vez termina la
licuación.
 Se puede realizar pasando el semen por una aguja 21G (
diámetro interior 0.8mm) la muestra normal cae y sale
de forma continua; en casos de consistencia anormal
se informa longitud de filamento formado

12. Volumen
 Según la OMS el volumen de la muestra se toma por
peso, teniendo en cuenta el peso del contendor. Su
densidad es de aproximadamente 1,012g/ml por lo que
un gramo de semen corresponde a un mm.

13. pH
 El pH mide el equilibrio entre la secreción acida
prostática y la alcalina de la vesícula seminal.
 Se debe medir con un papel indicador de pH con
intervalo entre 6-10
 Los valores bajos pueden indicar agenesias de las vías
excretoras, obstrucciones o procesos inflamatorios
crónicos.
 Los valores altos pueden indicar procesos
inflamatorios e infecciones.

14. Tipos de movilidad
Tipo A +++ Velocidad , 5 veces
su cabeza en 1
segundo
Tipo B ++ Movimiento no
lineal
Tipo C + Movilidad no
progresiva;
perezoso
Tipo D - Espermatozoide
inmóvil

15. Evaluación de la movilidad y
valores de referencias
 Hay varios procedimientos para determinar la
movilidad, nos basaremos en la 4ta y 5ta edición de la
OMS

16. Procedimientos:
 Atemperar el material y la muestra seminal que se va a
analizar a 37 °C
 Mezclar y homogenizar la muestra de semen
 Depositar un volumen fijo de 20ml sobre un portaobjetos
limpio
 Cubrir con un cubre objetos, sin aplastar y sin hacer
burbujas
 Dejar en reposo para estabilizar la preparación durante
unos 60 ´´
 Examinar al microscopio a X400, observando que los
campos sean homogéneos

17.  Atendiendo los criterios de la 4ta edición se debe
1. contar todos lo espermatozoides progresivos rápidos
( tipo a) y lentos ( tipo b)
2. Contar en el mismo campo los no progresivos ( tipo
c) y los inmóviles (tipo d)
3. Contar en total 200 espermatozoides
 Según la 5ta edición se pueden sumar los tipos a y b,
para el calculo de los PR (progresivos)
 Los resultados se informan en porcentaje de los
observado.

18. Recuento de espermatozoides
 Además de la movilización adecuada del
espermatozoide, se necesita de una cantidad adecuada
para su objetivos.
 La cantidad de espermatozoides de una eyaculación se
correlaciona directamente con la fertilidad.
 Existen diferentes formas de realizar el recuento, entre
ellas tenemos

19. Métodos de recuento
 Recuento con cámara neubauer clásica
 Recuento con camara de neubauer improved
(manual de la OMS 5ta edición)
 Recuento con cámara makler (no recomendada por la
OMS)
 Recuento de células redondas ( leucocitos y células
poligonales de tracto uretral)

20. Criterios de normalidad de
espermatozoides
 La valoración de formas defectuosas del
espermatozoide esta relacionado con las partes
principales del mismo, cabeza, cuello, pieza
intermedia y cola o flagelo.
 El espermatozoide sin defecto se define como ideal.
 La presencia de deformaciones se expresan en
porcentaje
 Se cuentan solo los espermatozoides completos
 Las cabezas de los espermatozoide se cuenta separado.

21. CABEZA •Oval
•Longitud 4,0 -5,0 nm
•Ancho 2,5 – 3,5 nm
•Acrosoma 40 – 70 %
CUELLO O PIEZA
INTERMEDIA
•Ancho 1 nm aprox.
•Longitud 7 – 8 nm
FLAGELO O COLA •Simétricamente unida a
la base de la cabeza
•Debe ser ancha , no
similar a una flecha
•Debe haber solo una cola
•Longitud aproximada 45
nm

22. Alteraciones
1. Defectos de la cabeza
 Alargada
 Piriforme
 Redonda
 Amorfa
 Acrosoma pequeño
 Vacuolada

23. 2. Alteraciones en el cuello o pieza intermedia
 Doblado
 Inserción asimétrica
 Grueso
 Delgado
3. Alteraciones de cola o flagelo
 Corta
 Doblada
 Enrollada
 Restos citoplasmáticos