Ud 1 el laboratorio clínico . equipamiento básico.

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IES: “Tirant lo Blanc” 1
Módulo: OPC de Muestras Biológicas Humanas Prof.: Lucía Gil Álvarez
U.D. 1: EL LABORATORIO CLINICO
EQUIPAMIENTO BÁSICO
A) CARACTERÍSTICAS DE LOS PRINCIPALES MATERIALES USADOS EN EL
LABORATORIO…
B) MATERIAL DE VIDRIO PARA MEDIDAS DE VOLUMEN
C) PEQUEÑOS EQUIPOS E INSTRUMENTOS BÁSICOS
D) OTROS APARATOS Y EQUIPOS
A) CARACTERÍSTICAS DE LOS PRINCIPALES
MATERIALES USADOS EN EL LABORATORIO
En la elaboración del equipo del laboratorio se utilizan los siguientes materiales:
• Metales: Los más utilizados son el hierro y sus aleaciones, cobre, níquel, platino, plata y
plomo. Con estos metales se fabrican soportes, pinzas, anillos, trípodes, triángulos, rejillas,
sacacorchos, recipientes para agua, crisoles, espátulas, mecheros y electrodos, entre otros.
• Porcelana: Se fabrican cápsulas, crisoles, navecillas, espátulas, embudos, triángulos.
• Madera: Gradillas, soportes de pie para tubos y embudos.
• Corcho: Se usa principalmente en la elaboración de tapones.
• Caucho: Para fabricar mangueras y tapones.
• Asbesto: Se emplea en la fabricación de mallas, guantes y como aislante térmico.
• Teflón: Utilizado en la fabricación de mangueras, válvulas, llaves para buretas, recipientes,
empaques entre otros.
 Plástico
Se utiliza desde hace algunos años con gran profusión en el laboratorio. Peden ser tanto
de un solo uso (puntas de pipeta, placas de Petri, etc.) como de uso múltiple (probetas,
matraces, vasos de precipitado, etc.).Las ventajas del plástico frente al vidrio son,
principalmente, su resistencia a la rotura y su bajo peso.
• Vidrio: Es uno de los materiales más usados en el laboratorio. Aquél que se destina a la
fabricación de equipo de laboratorio debe ser resistente a los ácidos y a los álcalis y
responder a determinadas exigencias térmicas y mecánicas.
El material de vidrio de laboratorio puede clasificarse en dos categorías:
Vidriería Común. Comprende los vasos de precipitados, los erlenmeyers, los balones
de fondo plano y de fondo redondo, los embudos (al vacío, por gravedad, de decantación),
tubos de ensayo, condensadores, frascos con tapón esmerilado, vidrios de reloj y otros.

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Vidriería Volumétrica (de alta precisión). Este material suele ser más costoso debido
al tiempo gastado en el proceso de calibración. Comprende una serie de recipientes
destinados a medir con exactitud el volumen que “contienen” o el volumen que “vierten”. En
los recipientes volumétricos aparece señalado si el recipiente es para verter o para contener,
lo mismo que la temperatura a la cual ha sido calibrado.
La mayoría de las pipetas y las buretas están diseñadas y calibradas para “verter”
líquidos, en tanto que los matraces o balones aforados están calibrados para contenerlos.
Hay que tener en cuenta una serie de precauciones al trabajar con vidrio:
 No someterlo a cambios bruscos de temperatura
 No aplicar fuerza sobre llaves, tapones, etc.
 No someterlo a variaciones bruscas de presión
 No conservar soluciones de álcalis concentradas en vidrio de borosilicato.
Figura 1. Equipo básico de laboratorio (I)
Figura 2. Equipo básico de laboratorio (II)

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B) MATERIAL DE VIDRIO PARA MEDIDAS DE VOLUMEN
Se utilizan diversos tipos de vidrios para medir el volumen. El tipo a emplear
dependerá de la exactitud con que se quiera hacer la medición.
Para medir volúmenes se usan recipientes y aparatos construidos de vidrio, por
regla general, o de cualquier otro material resistente a la dilatación, con el fin de que este efecto
no influya apreciablemente en la medida realizada.
El material de vidrio lo podemos clasificar en material de medida exacto y material
de medida aproximado:
- Son de medida exacta: pipeta, matraz aforado y la bureta.
- Son de medida aproximada: matraz erlenmeyer, probeta y vaso de precipitados.
El material de volumen exacto, no es aconsejable secarlo en la estufa, ya que los
cambios de temperatura los desajustan y, por supuesto no utilizarlos en caliente, porque se
produciría un error en la medida por la dilatación del material.
1) Las pipetas
Pipeta
Tubo de vidrio diseñado para administrar volúmenes específicos cuando se llena hasta la marca de
calibración.
Existen varios tipos de pipetas:

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Para aportar un volumen específico de disolución se utilizan:
- Pipetas volumétricas o de transferencia: están diseñadas para medir un sólo volumen.
Son cilíndricas con un ensanchamiento central. Se llaman también aforadas. Podemos
encontrar también las pipetas de doble aforo, que se caracterizan porque además del
aforo en la parte superior disponen de otra línea de aforo en la parte inferior; en estos
casos la capacidad de la pipeta coincide con el volumen del líquido contenido entre las
dos líneas de aforo.
- Pipetas graduadas: son cilíndricas y van graduadas lo que permite medir un volumen
cualquiera hasta su máxima capacidad. Son menos exactas que las aforadas, pero más
exactas que las probetas graduadas.
- Pipetas especiales: micropipetas, usadas para transferir pequeños volúmenes
(microlitros: 1μl = 10-6
L). Proporcionan una gran precisión y disminuye la fatiga. Resultan
muy ventajosas en inmunoanálisis. Funcionan mediante un pistón y llevan puntas
desechables de plástico.
Dentro de las micropipetas consideramos las de “lavado” y “dilución”. Ambas se usan en
realidad como matraces aforados, cuando es necesario diluir un líquido en una
determinada relación. Las primeras incorporan el agua de lavado al volumen inicial que se
midió de muestra tras su vaciado con lo que logran un volumen doble o triple al inicial. Las
de dilución poseen tres enrases y pueden llenarse hasta el primero, segundo o tercero,
con la muestra o con agua respectivamente consiguiéndose así la dilución deseada.
También las clasificamos como monocanal y multicanal. pp
- Pipetas tipo jeringa: con puntas de plástico desechables. El émbolo se acciona con el
pulgar, tanto para llenar como para dispensar.
- Las utilizadas en hematología poseen una cámara de dilución con una perla de vidrio que
facilita la homogeneización de la muestra.
 Es muy importante la calidad de las puntas de pipetas para no
perjudicar a la precisión y exactitud del volumen liberado.
 Pero más importante que la calidad del plástico es la perfección de la
técnica con la que se manejen; se producen errores por insuficiente
atención a la acción mecánica de las micropipetas.
Manejo de las pipetas:
1. Pipeteo manual:
Precauciones:
Para tomar un volumen con una pipeta, debe elegirse aquella cuya diferencia entre el
volumen total de la pipeta y el volumen a medir sea mínimo.
Pipeta limpia, seca y libre de restos
Inspección: desechar puntas rotas
No pipetear con la boca
Forma de cogerla:
Pulgar y corazón (ayuda anular y meñique)
Índice libre para taponar y ejercer presión
Adicción de accesorios:
Si es en microbiologia: algodón graso
Si son sustancias tóxicas o peligrosas (todas lo son potencialmente): prepipeta

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Fases:
A. Toma de la muestra
1. Mantener la pipeta en posición vertical
2. Introducir la punta en la solución, evitar la aspiración de aire, sin tocar las paredes del
recipiente
3. Se coloca la propipeta en el extremo libre.
4. Si en la pipeta quedan restos del agua de lavado, debemos aspirar el líquido que vamos
a medir y desecharlo, para así lavar la pipeta evitando errores por dilución.
5. Se hace ascender el líquido por encima del aforo superior aplicando succión; se dejar
de succionar. Ir aflojando la presión para permitir que el líquido escurra hasta que la parte
inferior del menisco sea tangente a la marca. ¡Atención a los errores de paralelaje!
En soluciones trasparentes se lee la parte inferior del menisco.
La posición de la pipeta ha de ser: nivel del líquido....nivel del ojo
Si el líquido descendió demasiado, se comienza nuevamente.
6. Retirar la pipeta de la solución
7. Tocar la pared del recipiente para eliminar el líquido final. Inclinar ligeramente la punta y
eliminar cualquier gota de la superficie exterior pasando un papel de filtro, pañuelo de
papel, gasa, etc.

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B. Expulsión de la muestra
1. Se traslada la pipeta al recipiente de destino.
2. La transferencia se realiza inclinando ligeramente la pipeta y apoyando suavemente el
pico en la pared del recipiente.
3. Se disminuye nuevamente la presión hasta llegar a la cantidad de mililitros necesarios
o en el caso de las pipetas graduadas, para vaciarla completamente. Pero no se debe
forzar la caída de las últimas gotas, sino que éstas deben quedar en la punta
cónica de la pipeta.
4. Una vez vaciada se espera unos segundos (algunas pipetas - llevan grabado el tiempo
de espera) y se retira, realizando un ligero movimiento de rotación que facilite el
desprendimiento de alguna gota aún adherida.
LAS PIPETAS y otros instrumentos de medida de volúmenes contienen las
siguientes INSCRIPCIONES:
o capacidad
o tipo de calibrado:
o "TC" “In” o “Cont” (para contener): La cantidad de líquido vertido se encuentra
reducida en la cantidad de líquido que permanece adherida a la pared del vidrio.
o "TD" “Ex” o “Vert” (para. vaciar): La cantidad de líquido vertida corresponde
exactamente al volumen indicado, ya que el líquido adherido se ha tenido en cuenta
al realizar la calibración.
o temperatura a la que ha sido calibrada.
o banda de color oscuro usada como código de color para el volumen
o precisión (±0,02)
o sensibilidad del instrumento o exactitud (0,01)
o tiempo de espera (:0,1)
o señal de calibrado que indica el nivel hasta el cuál se debe llenar para obtener el
volumen deseado.
o las pipetas que deben ser sopladas llevan en la parte superior una o dos bandas
oscuras (no confundir con la banda de color indicativa de volumen) o la inscripción
“Blow out”
o tipo de vidrio : calidad “A” o “B”
Expresión del error de una medida con una pipeta
Datos de la pipeta: 2 mL ±0,02 1/100
La medición efectuada con una pipeta cuya precisión es de ±0,02 tiene en cuenta los errores
aleatorios. Así en esta pipeta nos indica el fabricante que tiene una capacidad de 2 mL y un
margen de error o precisión de ±0,02 y nos realiza una medición que está probablemente
entre 1,98 y 2,02 mL en el caso en que se efectúen varias mediciones.
Por otro lado y según el fabricante el instrumento es sensible (exacto) a la centésima de mL
siendo la última cifra (centésima de mL) incierta por convención. El fabricante indica el
error instrumental como 1/100. Este el error a tener en cuenta cuando se efectúe una sola
medición. Se expresará 2,00 ± 0,01 mL.
Se tendrá en cuenta en la expresión de la medida uno u otro error y se tomará el de mayor
valor cuando proceda, es decir, cuando se efectúen varias mediciones. En este caso ±0,02.
Así tendremos que esta pipeta mide 2,00 ± 0,02 mL cuando se efectúen varias mediciones.

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2. Pipeteo automático
Existe dos tipos: Normal e Inverso
 Pipeteo normal:
1) Colocar la punta, regular el volumen. Presionar pulsador con el dedo pulgar
hasta el primer tope. Sumergir la punta verticalmente en la muestra unos 2 ó 3mm
2) Dejar deslizar el pulsador de pipeteo continuamente hasta arriba, observando
el llenado. No deben producirse turbulencias en la punta ya que hay peligro de
formar aerosoles. Sacar despacio la punta del líquido
3) Para descargar el volumen mantener ligeramente inclinada la punta (10°-45°)
en la pared del recipiente. Apoyar el pulgar y accionar el pulsador de pipeteo
uniformemente hasta el primer tope. Esperar 1 segundo. Presionar luego
ininterrumpidamente hasta el segundo tope para quitar el aire con el recorrido
adicional
 Pipeteo inverso:
En el pipeteo inverso se utiliza el recorrido adicional para aspirar más volumen de
líquido. Esta técnica mejora los resultados con líquidos viscosos, muy volátiles o
muy humectantes
1) A diferencia de la operación normal se oprime el pulsador de pipeteo hasta el
segundo tope, manteniendo la pipeta vertical.
2) Durante la aspiración se succiona un volumen mayor que el regulado
3) Para el vertido, sólo se oprime hasta el primer tope y luego se toca la pared del
recipiente con la punta. Se desecha el resto de líquido que queda en la punta.
Etapas en el manejo de una micropipeta de punta de un solo uso
(Revisar las instrucciones de uso de la pipeta Nahita)
Actividad: Uso de la pipetas automáticas y recomendaciones sobre el pipeteado.

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2) Matraz aforado o volumétrico
Cuando se llena hasta su marca de calibración, un matraz volumétrico contiene un
volumen exacto de disolución a la temperatura señalada, en general 20 ºC.
Los matraces volumétricos de menos de 100mL suelen medir volúmenes con
aproximaciones de centésimas de mL, mientras que los de mayor tamaño miden volúmenes
de hasta décimas de mL. Por ejemplo, un matraz volumétrico de 10 mL contiene 10,00 mL,
pero uno de 250 mL contiene 250,0 mL (esta observación es importante cuando se han de
conservar las cifras significativas).
Matraz volumétrico
Frasco de vidrio diseñado para contener un volumen específico de disolución cuando se llena hasta su
marca de calibración.
Como los matraces volumétricos pueden contener disoluciones, son útiles para
preparar disoluciones con concentraciones exactas. El reactivo se introduce en el matraz y se
añade disolvente suficiente para que aquél se disuelva. Una vez disuelto el reactivo, se añade
más disolvente en varias porciones, mezclando la disolución después de cada adicción. El
ajuste final del volumen a la marca de calibración del matraz se hace utilizando una pipeta de
goteo. Para completar el proceso de la mezcla, hay que invertir el matraz volumétrico al
menos 10 veces.
Este recipiente es el más idóneo para medir volúmenes exactos, debiéndose enrasar por
debajo del menisco igual que en la pipeta. Normalmente existen entre 10 y 5000 cc. Pequeñas
adiciones de líquido producen grandes incrementos de volumen, por su construcción.
No deben realizarse diluciones de solutos directamente en su interior, sino que, deben
disolverse primero en un vaso de precipitados y, posteriormente completar el volumen final de la
disolución en el matraz aforado por contenido.
Precauciones:
Cuando se trabaja con pipetas y matraces volumétricos es necesario adoptar unas
precauciones importantes.
1. En primer lugar, el volumen aportado por una pipeta o contenido en un matraz
volumétrico presupone que el vaso está limpio. La suciedad y la grasa del interior de
un vaso de vidrio impiden que el líquido se vierta de manera uniforme, dejando gotitas
del mismo en las paredes.
En el caso de una pipeta, esto significa que el volumen aportado es inferior al
calibrado; por otra parte, las gotas de líquido que quedan por encima de la marca de
calibración significan que el volumen contenido en el matraz volumétrico es superior al
señalado por la marca de calibración. Para limpiar las pipetas y los matraces pueden
usarse soluciones limpiadoras comercializadas.
2. En segundo lugar, cuando se llena una pipeta o un matraz volumétrico, hay que
enrasar el líquido exactamente en la marca de calibración.
La superficie superior del líquido hace una curva o menisco, cuya parte inferior debe
coincidir exactamente con la marca de calibración del vaso utilizado. El menisco debe
ajustarse manteniendo el ojo en el nivel de la marca de calibración para evitar errores
de paralelaje. Si el nivel del ojo se encuentra por encima de la marca de calibración, la
pipeta o el matraz volumétrico se llenarán en exceso y, por el contrario, si el nivel del
ojo es inferior al de la marca de calibración, el llenado será insuficiente.
3. Por último, antes de usar una pipeta o un matraz volumétrico hay que enjuagarlo
varias veces con porciones pequeñas de la disolución cuyo volumen va a ser medido.
Se asegura así que se ha retirado cualquier líquido residual que haya podido quedar
en el vaso.
4. Es posible la pesada directa del soluto en un matraz aforado sólo cuando no haya que
calentar para disolver el soluto.

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En este caso usaríamos un vaso de precipitados para la pesada y posteriormente para
calentar el soluto junto con el disolvente y se deja enfriar la solución hasta temperatura
ambiente; posteriormente se transfiere cuantitativamente al matraz aforado.
3) Bureta
Las buretas son útiles destinados a la transferencia de volúmenes exactos de líquidos. Se
utilizan, sobre todo en la valoración de disoluciones de concentración desconocida.
Existen dos grandes grupos:
 Buretas que se vacían sólo por acción de la gravedad, y
 Buretas con sistema de vaciado a presión o “positivas”
También existen las microburetas y las buretas digitales, con una exactitud no inferior a
1/1000 mL y en las que el vaciado es a presión para evitar uno de los principales errores que se
comenten con su uso.
Una bureta consta de un tubo calibrado para contener el líquido y un dispositivo que, a
modo de grifo, permite controlar el vaciado.
Este dispositivo de apertura-cierre de las buretas convencionales consiste normalmente
en una llave de vidrio que conviene mantener engrasada y limpia. Se debe tener especial
cuidado en la aplicación de la capa de grasa lubricante. Un exceso puede taponar el orificio de
salida del líquido; por ello se acostumbra a dejar libre de ella las proximidades del mismo. Cada
vez es más frecuente el empleo de válvulas de material plástico que no requieren lubricante.
Utilización:
Antes de usar la bureta es conveniente humedecerla con la disolución que va a ser
empleada.
Después se llenará la bureta ligeramente por encima del cero con la llave cerrada; se
procede posteriormente al enrase abriendo ligeramente la válvula hasta que coincida la parte
inferior del menisco con el cero de la graduación.
Colocar el recipiente con el problema debajo del extremo inferior de la bureta sujetándola
con la mano derecha, para con la izquierda manejar la llave de la bureta.
Dejar caer gota a gota la disolución. Cuando se acerque el final de la reacción, lo que se pone de
manifiesto por el indicador, hacer más lenta la adicción.

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4) Probeta
Las probetas son recipientes cilíndricos provistos de una base que les da
estabilidad y de un "pitorro" que facilita su vaciado. Van graduadas en mL y se usan para medir
volúmenes que requieren poca precisión.
La medida se realiza enrasando la división correspondiente con la parte inferior
del menisco.
5) Matraz Erlemmeyer
Su principal uso es el de recibir líquidos de filtrado y, realizar valoraciones de
disoluciones en su interior.
No deben usarse para medir volúmenes, ni siquiera de forma aproximada.
6) Vaso de precipitados
Su principal cometido es el de contener líquidos que vamos a usar.
Pueden usarse para preparar disoluciones en un primer paso para después
verterse en un matraz aforado.
7) Dispensadores automáticos
Se utilizan frecuentemente. Sirven para agregar repetidamente un determinado volumen
de un reactivo o diluyente a una solución. Generalmente dispone de un émbolo, un sistema de
válvula y un extremo para dispensar el líquido.
C) PEQUEÑOS EQUIPOS E INSTRUMENTOS BÁSICOS
Las mediciones se realizan con los equipos e instrumentos adecuados. El conjunto de
los equipos e instrumentos utilizados en química es impresionante ya que va desde los más
complejos y costosos a los más baratos y simples.
INSTRUMENTOS PARA MEDIR LA MASA
La masa de un objeto se mide con la balanza.
El tipo más frecuente es la balanza electrónica, en la que el platillo se sitúa sobre un
electroimán. La muestra a pesar se coloca en el platillo para muestras, que se desplaza hacia
abajo con una fuerza igual al producto de la masa del objeto por la aceleración debida a la
gravedad.
La balanza detecta este movimiento hacia abajo y genera una fuerza contraria de
equilibrio, para lo que utiliza el electroimán. La corriente necesaria para producir esta fuerza
es proporcional a la masa del objeto. Las balanzas electrónicas típicas tienen una capacidad
de 100-200 g y puede medir masas con aproximaciones de +-0,01 a +-1 mg.
CLASIFICACION DE BALANZAS
CLASE CAPACIDAD máx. SENSIBILIDAD
GRANATARIA
Ordinaria
Fina
Miligramática
25.000 g
2600 g
200 g
1 g – 10 g (1000-10000 mg)
0,01- 0,1 g (10-100 mg)
0,001 g (1 mg)
ANALITICA
Macro 200g 0.1 mg
Semimicro 30 g 0.01 mg
Micro 3 g 0.001 mg =1 μg

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Diagrama esquemático de una balanza electrónica: la colocación de una muestra
desplaza el platillo hacia abajo, lo que permite que la cantidad de luz que llega al detector sea
mayor. El circuito de motor dirige el servomotor electromagnético para que genere una fuerza
opuesta a fin de elevar la muestra hasta que se restablezca la intensidad lumínica que llegaba
inicialmente al detector.
Detector Luz Platillo
Circuito de control Servomotor electromagnético
Otro tipo de balanza es la de un solo platillo y brazos desiguales. Es una balanza
mecánica, en la que tanto el platillo como un conjunto de pesas normalizadas que pueden
retirarse se encuentran en un lado del brazo y se mantienen en equilibrio con un contrapeso
fijo situado en el otro lado del mismo. El brazo propiamente dicho está equilibrado sobre un
punto de apoyo consistente en el borde afilado de una cuchilla. Al poner una muestra en el
platillo de la balanza, el brazo se inclina separándose del punto de equilibrio. Se retiran
entonces las pesas necesarias hasta que el brazo recupera el equilibrio. La masa combinada
de las pesas retiradas equivale a la masa de la muestra.
Las capacidades y límites de detección de este tipo de balanzas son comparables a
las electrónicas.
Punto de apoyo Brazo de la balanza Contrapeso
Pesos móviles
Platillo de la balanza
Diagrama esquemático de una balanza mecánica de un solo brazo

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Procedimiento para determinar la masa:
Si el material a pesar no es sensible a la humedad, en la balanza se coloca un envase
limpio y seco. La masa de este envase recibe el nombre de tara. La mayoría de las balanzas
permiten el ajuste automático de la tara, para que el ajuste de la masa se haga a partir de
cero. A continuación, se coloca la muestra en el envase, se mide la masa nueva y se
determina la masa de la muestra restando la de la tara si no se ha hecho el ajuste automático.
Los recipientes más usados son los vidrios de reloj, útiles para pesar pequeñas
cantidades de sustancia que no sean higroscópicas.
Los sólidos se transfieren de un recipiente a otro por medio de una cucharilla o de una
espátula. Ver archivo pdf: Protocolo de pesada
Métodos para pesar una porción de sustancia:
1. Pesada directa: se emplea cuando se desea pesar una cantidad fija de
sustancia. Puede ser con tara o sin tara automática.
2. Pesada por diferencia: se utiliza, en general, para pesar pequeñas muestras
que no necesitan tener un valor fijo, pero sí interesa saber la cantidad que se
ha pesado con exactitud Ej.: Patrones.
Fuentes de error al pesar:
1. Por flotación: ocurre si la densidad del objeto a pesar difiere
significativamente de las pesas patrón.
2. Por efecto de la temperatura, cuando la temperatura del objeto es
diferente a la del ambiente. Se deben a que las corrientes de
convección sobre el platillo y el objeto tienen un efecto de flotación. Por
otro lado el aire caliente atrapado en la vitrina pesa menos. Ambos
efectos hacen que un objeto caliente pese menos.
3. Un objeto de porcelana o vidrio adquirirá ocasionalmente una carga
estática suficiente para que la balanza se comporte de manera errónea.
Este problema se acentúa cuando la humedad relativa es baja. Para
resolverlo el objeto pede limpiarse con una gamuza humedecida.
Precauciones al pesar:
Para minimizar los errores de la medición de la masa de los objetos hay que adoptar
varias precauciones importantes.
 Las balanzas deben hallarse sobre superficies densas para reducir el efecto de
las vibraciones del ambiente adyacente y deben mantenerse en una posición
nivelada. La sensibilidad de las balanzas analíticas permite medir la masa de
una huella dactilar.

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 Por ello, los materiales que se sitúan sobre ellas deben ser manipulados
utilizando pinzas o papel de laboratorio.
 Las muestras de líquidos volátiles deben pesarse en envases cerrados para
evitar pérdidas por evaporación.
 Las corrientes de aire pueden afectar de manera importante a la masa de la
muestra por lo que, para evitarlas, deben cerrarse las ventanas de cristal de la
balanza o hay que colocar la protección de viento de la balanza.
 Una muestra más fría o caliente que el ambiente que la rodea creará corrientes
conectivas de aire que influirán adversamente sobre la medición de la masa.
 Por último, las muestras que se han secado en un horno deben conservarse
en un desecador para evitar que reabsorban la humedad atmosférica.
PESADA DE SUSTANCIAS HIGROSCÓPICAS
Muchas sustancias son, relativamente, muy higroscópicas y alcanzan el equilibrio
absorbiendo humedad hasta su saturación en un plazo de tiempo breve. Cuando este efecto
es importante, se introduce en el frasco pesafiltros la cantidad aproximada de la muestra.
Después de secarla y enfriarla, se determina el peso exacto por diferencia, y se procurará
extraer la muestra y volver a tapar el pesafiltros lo más rápidamente posible.
Método:
Se obtiene primeramente el peso del frasco pesafiltros y su contenido una vez
desecada la muestra. Se pasa la muestra del frasco al recipiente, con las máximas
precauciones, para evitar pérdidas durante el trasvase. Por último se pesa de nuevo el frasco.
La diferencia entre ambas masas corresponde a la masa de la muestra extraída.
Los pesafiltros, que disponen de tapa, se utilizan mucho para pesar líquidos, sobre todo
si se evaporan con facilidad.
Componentes de un desecador Dispositivo para secado de muestras
PESADA DE LÍQUIDOS
El peso de un líquido siempre se obtiene por diferencia. Las muestras no corrosivas y
relativamente poco volátiles se pesan en recipientes provistos de tapas de ajuste cómodo,
tales como los pesafiltros; la masa del recipiente se resta del peso total. Si la muestra es
volátil o corrosiva, se encerrará en una ampolla de vidrio tarada.

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TRANSFERENCIA DE SÓLIDOS Y LÍQUIDOS
Para transferir pequeñas cantidades de sólidos de un frasco a otro se utiliza una espátula
o una cucharilla.
Cuando se trata de una cantidad un poco grande, si el recipiente receptor es de boca
ancha, puede verterse directamente, con cuidado de que no se derrame nada; para controlar la
cantidad que va cayendo se hace que el frasco gire lentamente de un lado a otro. Si el receptor
es de boca estrecha (erlenmeyer), es muy útil un embudo hecho de papel, o bien, cuando la
cantidad de sólido no es muy grande, puede utilizarse una tira de papel donde se echa el sólido y
luego, doblándola haciendo como un canal, se transfiere al recipiente.
Métodos para trasvasar muestras
Al transferir un líquido, hay que tener cuidado de que no haya salpicaduras. Normalmente
se transfieren directamente de un recipiente a otro.
Si el receptor es de boca estrecha se usa un embudo. Por ejemplo para transferir
cuantitativamente un líquido desde un vaso de precipitados a un matraz aforado se utiliza una
varilla agitadora para dirigir el chorro hacia el embudo, se retira la última gota del borde del vaso
con la varilla, se enjuaga tanto la varilla como el interior del vaso con agua destilada y se
transfieren los lavados al matraz. Se repite el proceso de enjuague al menos dos veces más.
Cuando es de boca ancha, se utiliza una varilla por la que se hace resbalar el líquido,
para ello se apoya el pico del recipiente que contiene el líquido en la parte superior de la varilla y
por el otro extremo se recoge en el recipiente colector.
Hay que procurar que la etiqueta del frasco no se manche en esta operación. Si hay
algún derramamiento de líquido por el exterior del frasco hay que limpiarlo con un paño o un
trozo de papel de filtro.

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Puntos de verificación de una balanza y control de calidad ( COMPLETAR pp)
• Sensibilidad sin carga
• Sensibilidad con carga
• Exactitud
• Precisión
• Excentricidad
• Control de carga máxima
• Tiempo de prueba
NEVERAS Y CONGELADORES
Son los equipos de laboratorio que sirven para producir conservación por enfriamiento
(bajando la temperatura a valores cercanos al punto de congelación), o bien por congelación
del producto (la mayor parte del agua del tejido se ha cristalizado en hielo).
Constan de:
 Cámara frigorífica o congeladora, propiamente dicha. En su interior llevará
incorporados los accesorios para su mejor distribución.
 Puertas. Completamente adaptadas para impedir la pérdida de temperatura.
 Sistemas de aislamiento. Con material aislante de poliuretano.
 Sistema frigorífico. Formado por:
o Evaporadora. Que a su vez puede ser "estática", en que la temperatura interior
actúa por gradientes; o de "tiro forzado", con el que se mantiene una
temperatura uniforme en la cámara interna.
o Compresor.
o Condensador.
 Termostato. Selecciona la temperatura deseada, controlando la acción del compresor
por medio de una válvula de expansión que regula la entrada del refrigerante al
evaporador.
Fundamento
Actúan extrayendo el calor de una fuente, que se queda fría, y trasladándolo a zonas
cuya temperatura se eleva (medio ambiente, líquido refrigerante).
En algunos casos el agente refrigerante se descarta, pero en general se recupera y vuelve a
circular, siendo el método más usado el basado en la evaporación de un líquido a baja
temperatura, con posterior recuperación del vapor con su condensación al estado líquido; el
vapor es aspirado a través de una bomba, y posteriormente comprimido y condensado.
Utilidad
Con el frío se consiguen los siguientes efectos:
 Retardar o anular el metabolismo propio de las células.
 Reducir todos los procesos químicos debidos a la actividad enzimática, al actuar sobre
la velocidad de la reacción y dificultar las transferencias de materia.
 Reducir el metabolismo, incluso la reproducción de microorganismos, al mantener
condiciones de temperatura no óptimas.
 Aumento de la concentración de solutos en el agua no cristalizada

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Por todo ello, en el laboratorio se utilizan para conservar muestras y reactivos, para
retardar el crecimiento bacteriano y el deterioro de cultivos; con este fin se emplean
temperaturas alrededor de 4°C.
Utilizaremos el congelador con temperaturas de unos -20°C cuando el tiempo de
conservación debe ser prolongado o la conservación del elemento así lo requiera.
Control y mantenimiento
 No colocar los refrigeradores a pleno sol, ni en las proximidades de un foco de calor,
una corriente de aire caliente, etc.
 No obstruir ni dificultar el paso de aire a través de las rejillas de ventilación.
 Limpiar el condensador con chorro de aire o gas a presión, o con cepillos de cerdas,
estando el aparato apagado.
 Abrir lo menos posible la puerta de las neveras o congeladores, pues disminuye la
capacidad de mantener constante la temperatura.
 Registrar diariamente las temperaturas del interior de las neveras o congeladores en
un gráfico para observar las desviaciones que se producen. Un caso especial son las
neveras de los bancos de sangre, en las que es imprescindible que exista un registro
automático de su temperatura interior con alarmas acústicas o luminosas cuando las
desviaciones son superiores a las deseadas, o cuando se produce un fallo en el
suministro eléctrico.
 Usar viales con una solución coloreada (sulfato de cobre) marcando su nivel de
llenado y colocándolos, una vez congelados, boca abajo, en distintas zonas del
congelador. Si se produce deshielo, la solución coloreada se licua y fluye hacia la parte
inferior del vial. que aparece coloreado.
 A intervalos regulares, según las indicaciones de los fabricantes y como sistema de
mantenimiento, deben descongelarse los aparatos.
FUENTES DE CALOR
Muchas operaciones de laboratorio necesitan efectuarse a una temperatura superior a
la normal, para ello se dispone de distintas fuentes caloríficas.
Estas fuentes utilizan un combustible o la corriente eléctrica. Pertenecen al primer
grupo los mecheros y la lámpara de alcohol; entre los segundos se encuentran la manta
calefactora, el calefactor de inmersión y los hornos y estufas.
MECHERO BUNSEN
Un mechero o quemador Bunsen es un instrumento utilizado en laboratorios científicos
para calentar o esterilizar muestras o reactivos químicos.
El quemador tiene una base pesada en la que se introduce el suministro de gas.

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De allí parte un tubo vertical por el que el gas fluye atravesando un pequeño agujero
en el fondo del tubo. Algunas perforaciones en los laterales del tubo permiten la entrada de
aire en el flujo de gas (gracias al efecto Venturi) proporcionando una mezcla inflamable a la
salida de los gases en la parte superior del tubo donde se produce la combustión.
La cantidad de gas y por lo tanto de calor de la llama puede controlarse ajustando el
tamaño del agujero en la base del tubo. Si se permite el paso de más aire para su mezcla con
el gas la llama arde a mayor temperatura (apareciendo con un color azul).
Si los agujeros laterales están cerrados el gas solo se mezcla con el oxígeno
atmosférico en el punto superior de la combustión ardiendo con menor eficacia y produciendo
una llama de temperatura más fría y color rojizo o amarillento. Cuando el quemador se ajusta
para producir llamas de alta temperatura, éstas, de color azulado, pueden llegar a ser
invisibles contra un fondo uniforme.
Es uno de los medios de calefacción más usados en el laboratorio. Resultan
absolutamente necesarios para la labor de microbiología, al favorecer una zona estéril a su
alrededor.
La llama se genera por la combustión de un gas (propano, butano, gas ciudad, etc.)
con el oxígeno (comburente) del aire. Consta de: pie, entrada de gas, virola (anillo metálico
móvil que regula la entrada de aire) y chimenea o barril.
Los que vamos a utilizar se componen de una pequeña bombona de propano y el
mechero en sí, con llave para el paso del gas. Poseen en su base una ventana por donde
toman el oxígeno necesario para la combustión. Esta ventana puede cerrarse o abrirse para
favorecer la combustión.
Encendido:
Antes de encender el mechero hay que cerrar la entrada de aire, se enciende una
cerilla o encendedor y, mientras se sujeta con una mano, con la otra se abre primero la llave
del gas, se espera un momento para que salga el aire del interior, se acerca la cerilla a la
boca del mechero y este se enciende; la llama será grande, amarilla y con hollín. Si se abre la
entrada del aire, la llama se azulea a la vez que sale con más fuerza y su temperatura es
mayor. Si entra demasiado aire la llama se propaga por el interior del mechero, se dice que se
ha “calado”. Es peligroso porque el mechero se calienta y si se coge puede producir
quemaduras.
En este caso hay que cerrar inmediatamente la entrada del gas y esperar a que se
enfríe, entonces ya puede encenderse de nuevo. Para apagar el mechero, basta con cortar la
entrada de gas.
Cuando no funciona correctamente, se dice que está gripado, lo que se soluciona
frotando con una escobilla el orificio de salida, para eliminar la carbonilla acumulada.
Características de la llama:
 La temperatura de la llama depende del tipo de gas y para un determinado gas
puede regularse mediante la entrada de aire.
 Si la entrada de aire está cerrada, la llama es larga, luminosa, de color amarillo y
con ondulaciones. La combustión del gas es incompleta y queda carbón por
quemar que mancha los objetos sobre los que actúa. Podemos distinguir dos
conos.
 Cuando se abre totalmente la entrada de aire, al haber más oxígeno la combustión
es total y la llama es de color azul y no mancha. Tiene mayor poder calorífico.
Podemos considerar dos zonas: el cono interno, oscuro, formado por una zona
brillante, su zona central está formada por gases sin arder; y el cono exterior,
incoloro y de gran poder calorífico, ya que en ella la combustión es completa. La
zona a utilizar es la intermedia.

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Hay otros mecheros similares al Bunsen, que también utilizan gas como combustible.
El mechero de Meker tiene más orificios para la entrada de aire y por tanto la combustión es
completa y alcanza una temperatura superior al Bunsen, aunque la llama es más pequeña, en
la boca lleva una rejilla para evitar que se cale. El mechero Tecla también proporciona
temperaturas superiores.
PLACA CALEFACTORA
Consiste en una superficie metálica calentada por resistencias eléctricas, encima de la
cuál se coloca la sustancia que se desea calentar. Cuando lleva un regulador de temperatura
permite también mantener una sustancia a una temperatura determinada durante un cierto
tiempo.
MANTA CALEFACTORA
Está diseñada para que en ella se adapte perfectamente un matraz, con lo que la
pérdida de energía es mínima. Se trata de un sistema de resistencias eléctricas montadas
sobre un tejido de lana de vidrio, que permite conseguir temperaturas de 400 ºC. Al estar el
foco de calor distribuido por todo el aparato, la temperatura del recipiente es más uniforme. Se
fabrican de distintos tamaños para adaptarse a distintas necesidades.
BAÑOS DE INCUBACIÓN
Se componen de un recipiente para el líquido a calentar y un sistema de calefacción
con termostato y agitador.
Se pueden regular a diferentes temperaturas y se utilizan para la incubación, siendo 37
ºC la temperatura más utilizada.
Pueden utilizarse agua, arena o un bloque metálico troquelado para la colocación de los
tubos. El más habitual utiliza agua destilada para proteger la resistencia metálica.
Mantenimiento:
Para su mantenimiento controlaremos el nivel de agua destilada y el estado de la
misma, cambiándola siempre que sea necesario. El recipiente se puede limpiar con agua
jabonosa aclarando después. La resistencia con una solución al 3% de alcohol clorhídrico.
Normas para la calefacción
 Colocar siempre una rejilla de amianto entre el recipiente de vidrio y la llama.
 No calentar nunca recipientes de vidrio gruesos.
 Las sustancias que desprenden vapores que pueden presentar algún peligro han
de calentarse en una vitrina con un buen extractor.
 No calentar nunca sustancias inflamables directamente, utilizando un baño o un
calentador eléctrico.
 Los tubos de ensayo no han de calentarse por la parte inferior.
 Evitar siempre las salpicaduras, una forma de conseguirlo es bajando la
temperatura.
 Cuando se va a calentar un líquido a ebullición es conveniente colocar unos
trocitos de porcelana porosa o bolas de vidrio.
 No tocar nunca los recipientes calientes.
 Una vez terminado, no olvidar nunca cerrar los grifos del gas o desconectar los
aparatos eléctricos.
TIPOS DE ESTUFAS
1. Estufas para esterilización y desecación, pueden alcanzar temperaturas de
entre 50 y 300 ºC
2. Hornos de mufla, alcanzan altas temperaturas, superiores a 1000ºC
3. Estufas de cultivo. La temperatura óptima de incubación con el fin de
favorecer su desarrollo es para casi todos los microorganismos patógenos
para el hombre de 37 ºC

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Funcionamiento: Todas ellas funcionan produciendo un aumento de
temperatura a partir de una fuente de calor eléctrica y tienen dos sistemas de ventilación
posibles:
- Ventilación natural, en que el aire se mueva por las diferencias de densidad
- Ventilación forzada, en que el aire se mueve por acción de un ventilador
situado en el exterior con velocidad fija o variable. Se incorporan cuando la estufa es muy
grande y permiten mantener una temperatura homogénea en toda la cámara que evite las
diferencias de gradiente.
En todos los casos se trata de un armario aislado térmicamente del exterior, con
compartimentos en su interior, una puerta frontal, una fuente de calor eléctrica y un termostato
regulador en el que podemos obtener una temperatura constante.
Para su uso tendremos en cuenta no mantener la puerta abierta durante mucho
tiempo. En ocasiones podremos apreciar su contenido a través de la puerta de cristal, sin
necesidad de abrirla.
Mantenimiento y precauciones:
Limpieza de las paredes interiores y desinfección con formalina.
Comprobar el correcto funcionamiento mediante un termómetro distinto al del sistema
pues el termostato es solo orientativo.
No utilizar para el secado de productos que puedan producir vapores susceptibles de
hacer mezclas explosivas o tóxicas
No trabajar a una temperatura igual o inferior a la ambiental ya que el termostato no
funciona correctamente.
Todas las regulaciones deben hacerse de menor a mayor temperatura.
HORNO PASTEUR O POUPINEL
Se utilizan para la esterilización, empleando calor seco a 180 ºC para destruir también las
esporas, con el inconveniente de su lentitud.
Podemos esterilizar en él material de vidrio y porcelana.
Manejo:
 Prepararemos el material en paquetes o tapado.
 Le colocamos un trocito de cinta minesota (cinta testigo)
 Colocamos el material en el interior procurando que no toque las paredes.
 Abrimos la ventana lateral de dilatación
 Cerramos la puerta, colocamos el mando a la temperatura deseada y encendemos.
 Cuando comienza a realizar ciclos de encendido y apagado, cerramos la ventana
lateral y lo mantenemos durante una hora.
 Pasado el tiempo, lo apagamos y esperamos que se enfría para sacar el material.
Atención: NO abrir la puerta estando caliente el aparato. El cambio brusco de temperatura
podría romper el vidrio.
AUTOCLAVE
Fundamento:
Se basa en que cada líquido tiene una temperatura de ebullición constante y
característica y depende de la presión. Así el agua hierve a 100 ºC a 1 atmósfera y a 180 ºC a
10 atmósferas.
Una aplicación de esta influencia de la presión en la temperatura está en el autoclave.
Lo que consigue este aparato, en definitiva, es un retardo en el punto de ebullición a medida
que aumentamos la presión controladamente.

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Descripción:
Consiste en un recipiente que se puede cerrar herméticamente. Su interior está
dividido por un diafragma que separa la parte reservada al agua destilada de la cámara de
vapor, y posee una resistencia eléctrica para calentar el agua.
Emplea calor húmedo (vapor de agua a presión). Para una esterilización segura, hay
que alcanzar una temperatura de 120 ºC, lo cual se consigue mediante un aumento de la
presión. 1at. = 120 ºC
Se basa en la inactivación de componentes proteicos esenciales o de enzimas.
Podemos esterilizar: Agua, Medios de cultivo, Instrumental, Objetos de goma, tela, etc.
Manejo: Se tratará en el módulo de Microbiología.
AGITADORES
Homogeinizan liquidos o mezclas de liquidos por agitacion.
Hay agitadores: - Magneticos. - De tubos. - De bandeja.
CRISTALIZADORES
Son recipientes de vidrio con fondo plano y una gran boca del mismo tamaño que el
fondo del recipiente, teniendo sus paredes una altura no muy acusada. Se utilizan para el
proceso de cristalización y para recoger restos de colorantes en las tinciones en
microbiología.
La cristalización consiste en disolver una sustancia en un disolvente formando una
disolución lo más concentrada posible, saturada o casi saturada, cambiar las condiciones para
que disminuya su solubilidad, pero de forma que las impurezas que la acompañan sigan
siendo solubles, con lo cuál cristaliza únicamente el sólido que deseamos purificar. Una forma
de cambiar las condiciones es enfriar, pero no la única.
Se llama solubilidad de un soluto en un disolvente a la concentración de la disolución
saturada a una temperatura dada. Depende del soluto y del disolvente y varía con la
temperatura.
La cristalización es un fenómeno inverso a la disolución de un sólido en un líquido.
MEDIDORES DE PH O PH-METROS
Aparatos de medida del ph basados en medir la fuerza electromotriz de una pila
electrolítica que depende de los potenciales de óxido-reducción de los electrodos que la
forman y de la composición de la disolución en que éstos están sumergidos. Los phmetros
miden el potencial presentándolo en unidades de pH.
Constan básicamente de los elementos siguientes:
 Electrodo indicador cuyo potencial varía con la concentración de protones
 Electrodo de referencia de potencial conocido e invariable
 Panel con escala en unidades de pH y mV y mandos para la calibración del pH y la
temperatura
Como electrodo indicador se emplea el electrodo de vidrio y como electrodo de referencia
el de calomelanos (Hg, Hg2Cl2, KCl saturado) o de plata/cloruro de plata.
Para la medida del pH se sumerge el electrodo de vidrio en la solución a investigar y se
establece un contacto mediante puente salino con el electrodo de referencia formándose la
pila cuya fuerza electromotriz está en relación directa con el pH de la solución estudiada.
Hay que tener en cuenta que el potencial de una pila varía con la temperatura por lo
que habrá que efectuar la corrección, ya que el valor del pH variará también. Existen ph-
metros que realizan la corrección de forma automática al ir equipados con sondas de
temperatura.
El electrodo indicador y el de referencia pueden encontrarse combinados en una
misma unidad denominada electrodo combinado.

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LA CENTRIFUGA
La centrífuga es un aparato que nos proporciona una técnica de separación que está
basada en el movimiento de partículas, de modo que estas son desplazadas hacia el
extremo distal del eje de rotación según sus diferentes masas y formas,
Descripción
La centrífuga es un aparato que necesariamente debe de constar de:
 Rotor o cabezal: Es el lugar donde se colocan las muestras: Existen dos tipos de
rotores.
Cabezal horizontal u oscilante: Es el diseño típico permite el uso de cuatro
contenedores que oscilan libremente entre las ramas del rotor; en su interior
pueden situarse adaptadores para los distintos tipos de portamuestras. En este
tipo de cabezal las muestras, dentro de los contenedores, oscilan hasta ponerse
en posición horizontal, en ángulo recto con el eje de rotación, cuando está
actuando la fuerza centrífuga, y adopta la posición vertical o de reposo cuando la
centrífuga esta parada.
Cabezal angular o de ángulo fijo: En este tipo los tubos están fijos formando un
ángulo entre 25 y 40 ° con el eje de rotación, o bien 90° en la centrífuga especial
diseñada para el estudio del hematocrito sanguíneo.
 Eje de la centrífuga: Es el vástago que soporta el rotor y actúa como eje de rotación.
 Motor : Acciona el vástago con el rotor o cabezal que contiene las muestras sobre
las que se va a realizar la fuerza centrífuga.
 Accesorios: El rotor se encuentra incluido en el interior de una cámara que
generalmente lleva tapadera, con una cerradura de seguridad que no permite su apertura
hasta que haya terminado de centrifugar y esté en posición de reposo.
Dependiendo de las centrífugas pueden llevar, interruptor de puesta en marcha,
temporizador, control de velocidad, freno, protector para minimizar la producción de
aerosoles, refrigerador para reducir la temperatura de la cámara y el calor que se produce
por la fricción del rotor con el aire.
Fundamento
La fuerza centrífuga relativa (FCR): es la fuerza requerida para que se produzca la
separación. Las unidades de fuerza se expresan como el número de veces mayor que la
gravedad (g).
La FCR se calcula mediante la fórmula:
FCR = 1,118· 105
·r·n2
siendo 1,118 .105
una constante.
r = distancia horizontal del radio en centímetros desde en el centro de rotación hasta el
fondo del tubo durante la centrifugación.
n = Velocidad de rotación del motor; viene dado como revoluciones por minuto.
La FCR de una centrífuga, como vemos, depende de la velocidad del motor y del radio de
giro, que van a ser las variables según el modelo y tipo de centrífuga. Por todo ello, para
poder reproducir con exactitud unas condiciones de centrifugación en cualquier tipo de
centrífugas, es necesario definir la FCR para cada tipo de separación. Existe un
normograma en el que, sabiendo la FCR necesaria y el radio de giro de la centrífuga a
emplear, se obtiene el no de r.p.m. sin necesidad de usar las fórmulas.
Lo anterior indica, que la FCR aplicada a un tubo en un cabezal con ángulo fijo, puede ser
mucho más baja que la aplicada a otro tubo igual en un rotor de cabezal horizontal, aplicando
igual número de r.p.m., ya que el radio de giro es igual en este tipo que en el anterior, porque
el tubo de ángulo fijo es incapaz de oscilar hacia afuera.
Una vez definida la FCR: vamos a ver como actúa esta sobre el tubo. La acción difiere según
el tipo de rotor empleado.

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• Cabezal oscilante: Durante la centrifugación las partículas se desplazan de forma
constante a lo largo del tubo, de modo que el sedimento es distribuido uniformemente
contra el fondo del mismo; por ello la superficie del sedimento es plana (paralela al eje
de la centrifuga). El sobrenadante puede quitarse con una pipeta o por decantación,
según lo compacto que quede.
• Cabezal angular: Al actuar la F.C.R., las partículas son dirigidas hacia afuera
horizontalmente pero chocan en el lado del tubo, por lo que el sedimento impacta
contra el borde y el fondo de este, con la superficie del sedimento paralela al eje de la
centrífuga, al desacelerar y parar, el sedimento se deposita en le borde inferior del tubo
a causa de la gravedad, formándose un sedimento menos compacto.
Utilidad
La centrífuga es hoy un aparato imprescindible en cualquier laboratorio, como veremos las
actividades en las que la centrífuga se nos ofrece como técnica de separación.
• Separación del suero o plasma: Este se separa de todo el paquete celular.
Es una actividad primordial del laboratorio; para ello emplearemos una FCR entre 850 y 1000
g durante 10 minutos, o bien entre 1000 y 1300 g cuando utilicemos tubos con separación de
gel.
• Concentración de células: Estos componentes de los líquidos biológicos se concentran para
facilitar, por una parte, el diagnóstico microscópico del sedimento (por ejemplo, sedimento
urinario) y por otra, el estudio químico del sobrenadante o sedimento. Para ello se utiliza una
FCR de 450 g durante 5 minutos.
• Separación de sustancias. Previamente podemos precipitarlas químicamente. Se usa, por
ejemplo, en la técnica de determinación de la HDL-colesterol en la que se hace precipitar el
LDL-Colesterol y el VDL-Colesterol. O bien en la separación de proteínas o anticuerpos
marcados, ligados a otras sustancias, de las formas libres.
• Aclarar líquidos orgánicos. La centrífuga actúa separando las fases líquidas de diferente
densidad.
Existen las ultracentrífugas, que son centrífugas de cabezal angular que actúan a gran
velocidad y llevan una cámara refrigerada para evitar el calor que se produce en su interior
por rozamiento.
Control y mantenimiento
Para un adecuado funcionamiento de la centrífuga, es necesario seguir algunas
recomendaciones:
1. Utilizar tubos resistentes a la fuerza centrífuga. Poner un amortiguador en el fondo del adaptador como
antichoque y para evitar que el sobrenadante pueda ser movido. Tener cuidado de que no sobresalga el tubo del
portatubos, ya que puede impedir la oscilación de la las centrífugas de cabezal oscilante.
2. Equilibrar correctamente la centrífuga colocando los tubos, cubetas, etc. de igual peso forma y tamaño en
posiciones opuestas en el interior de los contenedores, manteniendo una disposición geométrica simétrica; se
pueden utilizar tubos con agua cuando falte alguno. Esto es necesario, pues la descompensación del rotor puede
causar vibraciones que si son pequeñas pueden no notarse, produciendo poco a poco un desgaste de la centrífuga
que aumentará la frecuencia de las roturas de los tubos y llevará una peor sedimentación, que puede
resuspenderse cuando la centrífuga desacelera para parar.
3. Tapar los recipientes: Para evitar la evaporación que se produce por el aumento de la temperatura, por
rozamiento, en el interior de la cámara, así como para impedir la formación de aerosoles que pueden ser
contaminantes.
4. No forzar el paro de la centrífuga con el freno de mano o con alguna maniobra manual, evitando de este modo la
posible mezcla de las dos partes ya separadas, y además el peligro de accidente.
5. Chequeo de la velocidad de centrifugación
6. Limpieza periódica, o tras rotura de algún tubo, de la cámara y de los contenedores para impedir la propagación
de agentes infecciosos.
7. El temporizador de la centrífuga debe ser chequeado cada semana frente a un temporizador de referencia.
8. La temperatura de una centrifuga refrigerada, cada mes.
9. Los conmutadores, cepillos y escobillas del motor, cada tres meses y reemplazarlos cuando sea necesario.

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