Este documento describe las distintas áreas y equipos encontrados en un laboratorio de anatomía patológica. Identifica el área de microscopía, donde se reciben las muestras, y el área de procesamiento de tejidos, que incluye fijación, deshidratación, aclaramiento e inclusión. También describe equipos como la estación de inclusión, el micrótomo, el baño de flotación, las estufas y la batería de tinción. El documento concluye resaltando la importancia de conocer cada área y
La histoquímica utiliza reacciones químicas y bioquímicas para localizar sustancias y actividades celulares. Existen numerosas técnicas histoquímicas que permiten visualizar específicamente sustancias como colágeno, mucinas, glucosas, pigmentos, microorganismos como hongos y parásitos. Estas técnicas se basan en el uso de colorantes que se unen selectivamente a los componentes celulares para ser observados al microscopio.
Este documento describe diferentes técnicas de tinción para hongos de interés clínico, incluyendo tinciones simples como la safranina y el azul de algodón de lactofenol, y tinciones diferenciales como la tinción de Gram y Ziehl-Neelsen. Explica que el examen microscópico es importante para la identificación de especies fúngicas y requiere tinciones que preserven las estructuras.
El documento describe los fijadores de tejidos utilizados en anatomía patológica, con un enfoque en el formol. Explica que el formol fija los tejidos al unirse a proteínas celulares, evitando la autólisis. También discute cómo preparar soluciones de formol bufferado, los tiempos y temperaturas de fijación, y el poder de penetración de diferentes fijadores.
La técnica histológica implica 8 pasos: 1) obtención de la muestra, 2) fijación, 3) deshidratación, 4) aclaramiento, 5) inclusión, 6) corte, 7) baño de flotación, y 8) tinción. Estos pasos preservan la morfología de los tejidos y permiten estudiar sus características a nivel microscópico usando colorantes y un microscopio óptico.
El documento proporciona información sobre el proceso de fijación histológica. La fijación tiene como objetivo interrumpir los procesos de degradación que ocurren después de la muerte celular y conservar la arquitectura y composición de los tejidos lo más similar posible a como se encontraban en el organismo vivo. Existen diferentes métodos y soluciones químicas de fijación que cumplen funciones como evitar la autólisis, proteger de bacterias, e insolubilizar componentes celulares.
Este documento describe el proceso de inclusión de tejidos en parafina para su posterior corte e histopatología. Explica los pasos de impregnación e inclusión de las muestras en bloques de parafina, incluyendo la orientación adecuada de diferentes tipos de tejidos. También cubre métodos de inclusión rápida y automática, así como la desparafinación posterior de los cortes histológicos.
La histoquímica utiliza reacciones químicas y bioquímicas para localizar sustancias y actividades celulares. Existen numerosas técnicas histoquímicas que permiten visualizar específicamente sustancias como colágeno, mucinas, glucosas, pigmentos, microorganismos como hongos y parásitos. Estas técnicas se basan en el uso de colorantes que se unen selectivamente a los componentes celulares para ser observados al microscopio.
Este documento describe diferentes técnicas de tinción para hongos de interés clínico, incluyendo tinciones simples como la safranina y el azul de algodón de lactofenol, y tinciones diferenciales como la tinción de Gram y Ziehl-Neelsen. Explica que el examen microscópico es importante para la identificación de especies fúngicas y requiere tinciones que preserven las estructuras.
El documento describe los fijadores de tejidos utilizados en anatomía patológica, con un enfoque en el formol. Explica que el formol fija los tejidos al unirse a proteínas celulares, evitando la autólisis. También discute cómo preparar soluciones de formol bufferado, los tiempos y temperaturas de fijación, y el poder de penetración de diferentes fijadores.
La técnica histológica implica 8 pasos: 1) obtención de la muestra, 2) fijación, 3) deshidratación, 4) aclaramiento, 5) inclusión, 6) corte, 7) baño de flotación, y 8) tinción. Estos pasos preservan la morfología de los tejidos y permiten estudiar sus características a nivel microscópico usando colorantes y un microscopio óptico.
El documento proporciona información sobre el proceso de fijación histológica. La fijación tiene como objetivo interrumpir los procesos de degradación que ocurren después de la muerte celular y conservar la arquitectura y composición de los tejidos lo más similar posible a como se encontraban en el organismo vivo. Existen diferentes métodos y soluciones químicas de fijación que cumplen funciones como evitar la autólisis, proteger de bacterias, e insolubilizar componentes celulares.
Este documento describe el proceso de inclusión de tejidos en parafina para su posterior corte e histopatología. Explica los pasos de impregnación e inclusión de las muestras en bloques de parafina, incluyendo la orientación adecuada de diferentes tipos de tejidos. También cubre métodos de inclusión rápida y automática, así como la desparafinación posterior de los cortes histológicos.
Este documento describe los pasos básicos de la técnica histológica, incluyendo la obtención de la muestra, fijación, deshidratación, aclarado, inclusión, corte, tinción y montaje. Explica cada uno de estos pasos en detalle, así como los diferentes métodos de fijación, colorantes empleados y técnicas especiales como la congelación y tinción histológica y citoquímica. El documento provee una guía completa del proceso de preparación de muestras para su exam
Resumen con las principales características morfológicas de los leucocitos.Manuel García Galvez
Este documento describe las principales características morfológicas de los diferentes tipos de leucocitos, incluyendo el tamaño y forma del núcleo y citoplasma, así como la presencia y color de los gránulos para neutrófilos, eosinófilos, basófilos, linfocitos y monocitos.
Este documento presenta información sobre diferentes técnicas inmunológicas de precipitación como la inmunodifusión doble, la inmunodifusión radial y la electroforesis. También describe los pasos para preparar una suspensión de glóbulos rojos al 2% y las normas de seguridad de un laboratorio de inmunología.
Este documento describe diferentes técnicas de tinción de material citológico, incluyendo la tinción de Papanicolaou, tinción de Shorr y tinción de May-Grünwald-Giemsa. Explica los objetivos de la tinción de material citológico y proporciona detalles sobre los principios y aplicaciones de cada técnica de tinción. También menciona el uso de coloraciones rápidas como azul de metileno.
Trabajo en grupo de tec.histologías grupo 6Marco Rojas
Este documento describe las diferentes áreas que componen un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo el área de recepción, archivo, almacén, laboratorio, áreas de diagnóstico, histotecnología, inclusión de tejidos en parafina, microtomía y tinción. Explica las funciones de cada área y los equipos e insumos necesarios para realizar los procesos histopatológicos y el diagnóstico de muestras.
Clasificación de-fijadores-con-formol-y-sin-formol grupo 6Marco Rojas
El documento describe los diferentes tipos de fijadores histológicos, incluyendo su clasificación, características y objetivos. Los fijadores químicos se clasifican en cuatro grupos: fijadores por deshidratación tisular como el alcohol etílico y la acetona, fijadores que actúan por cambios en el estado coloidal de las proteínas como el ácido acético, fijadores que forman sales con los tejidos como el cloruro de mercurio, y fijadores que actúan por otros mecanismos como el formol
El documento presenta una descripción de diferentes técnicas de tinción utilizadas en el estudio de muestras biológicas por microscopía para identificar hongos. Se explican los fundamentos, utilidad y ejemplos de aplicación de tinción de Hematoxilina-Eosina, Gomori-Grocott, Ácido Periódico de Schiff, Fontana-Masson y Mucicarmina. Además, se detallan los pasos para la preparación de muestras de biopsia que serán analizadas por microscopía.
El documento describe los procesos de inclusión de tejidos para microscopía óptica e histopatología, incluyendo deshidratación, aclaramiento e infiltración con parafina. Explica los pasos del proceso de inclusión, los agentes químicos utilizados en cada etapa, y los procedimientos para la preparación y orientación de muestras en bloques de parafina antes del corte. También cubre la limpieza y mantenimiento de equipos como procesadores de tejidos y estaciones de inclusión.
Este documento describe varias técnicas de tinción citológica y tisular, comenzando con los fundamentos y mecanismos generales de la coloración. Luego se detalla la técnica de tinción con hematoxilina-eosina, que es la más comúnmente utilizada. Finalmente, se explican otras técnicas de tinción no histoquímicas para identificar sustancias como lípidos, glucógeno, mucina, fibrina y tejido conjuntivo.
Procesamiento de Muestras para Anatomía patológicaMorfocitos asd
Este documento describe el proceso de procesamiento de muestras para anatomía patológica, incluyendo la obtención del tejido a través de biopsia o autopsia, la fijación del tejido en formol para prevenir cambios, la inclusión del tejido en parafina para formar bloques, el corte de secciones delgadas del bloque usando un micrótomo, la tinción de las secciones y su observación al microscopio por un patólogo para realizar un diagnóstico.
Cambios morfologicos celulares en la necrosis full version1.2Diego Duran
Este documento describe los cambios morfológicos celulares que ocurren durante la necrosis. La necrosis es la muerte celular irreversible asociada con daño mitocondrial y ruptura de membranas. Ocurre en dos etapas: la necrobiosis, donde no hay cambios visibles, y la necrofanerosis, donde se ven signos como picnosis y ruptura nuclear. La necrosis se caracteriza por aumento de tamaño celular y nuclear, ruptura de membranas y digestión del contenido celular. Puede presentarse en varios tipos dependiendo del tejido a
Este documento describe varias técnicas histoquímicas y enzimohistoquímicas utilizadas para identificar sustancias a nivel celular y tisular. Explica técnicas para hidratos de carbono como PAS, azul alcián y azul de toluidina; para proteínas como rojo Congo y Fontana-Masson; y para grasas como Oil Red O y Sudán. También cubre técnicas para colágeno, ácidos nucleicos y otros componentes, proporcionando detalles sobre sus protocolos y usos diagnósticos.
El documento describe el medio de cultivo MIO (Movilidad, Indol y Ornitina), el cual se utiliza para identificar bacterias mediante tres pruebas: 1) la movilidad bacteriana que se detecta por turbidez alrededor del punto de inoculación, 2) la producción de indol que se identifica por un anillo rojo al añadir el reactivo de Kovacs, y 3) la descarboxilación de la ornitina que cambia el color del medio de amarillo a púrpura. El medio MIO permite caracterizar bacterias observando
El documento describe las técnicas de tinción utilizadas en microscopía para mejorar el contraste en las imágenes microscópicas. Las tinciones permiten resaltar estructuras celulares y tejidos utilizando colorantes que se unen selectivamente a biomoléculas como ADN, proteínas, lípidos o carbohidratos. Se mencionan diferentes tipos de tinciones como in vivo, in vitro, directas e indirectas así como los colorantes más comunes como hematoxilina, eosina y azul de metileno.
Reporte de práctica 3. Pruebas bioquímicasAlan Hernandez
El documento describe un experimento de identificación de bacterias mediante pruebas bioquímicas. Se prepararon medios de cultivo como McConkey, Nutritivo y VBB en placas de Petri e inocularon con muestras. Tras incubar, se aplicó tinción de Gram a las colonias y se identificaron colonias Gram negativas. Posteriormente, se realizaron pruebas bioquímicas en tubos de ensayo inoculados con las colonias Gram negativas. Los resultados de las pruebas bioquímicas permitieron identificar las bacterias presentes
El documento describe diferentes tipos de micrótomos, sus orígenes y usos. Los micrótomos son instrumentos que permiten cortes finos de tejidos endurecidos para su observación microscópica. Existen micrótomos de deslizamiento, rotación, congelación y ultrafinos. El origen del micrótomo se atribuye a Wilhelm His en 1866 para estudiar embriones humanos mediante secciones histológicas. Los micrótomos se usan comúnmente en histología, anatomía y otras aplicaciones biomédicas que requieren cortes delg
áReas de un laboratorio de anatomía patológicaBrandon Caiza
El documento describe las diferentes áreas necesarias en un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo áreas de recepción, laboratorio, análisis y diagnóstico, archivo, almacenamiento. También detalla el equipamiento necesario como microscopios, procesadores de tejidos, reactivos, y las medidas de seguridad requeridas.
Este documento describe un laboratorio de histología sobre la tinción hematoxilina y eosina realizado por estudiantes de medicina. Explica que la hematoxilina se usa para teñir componentes aniónicos de los tejidos de morado y la eosina se usa después para contrastar. Detalla los pasos del procedimiento, incluyendo diferentes tiempos de inmersión en hematoxilina y eosina y el uso de ácido acético. Los estudiantes observaron las muestras bajo el microscopio a diferentes aumentos y concluyeron que el laboratorio cu
Este documento presenta las instrucciones para un laboratorio sobre epitelios. Los estudiantes observarán muestras de diversos tipos de epitelio bajo el microscopio e identificarán sus características. Deberán dibujar lo que observan y describir la función de cada tipo de epitelio. También responderán preguntas relacionadas con las adaptaciones de los epitelios, sus funciones, y crearán un mapa conceptual sobre los diferentes tipos de epitelio.
Este documento describe los pasos básicos de la técnica histológica, incluyendo la obtención de la muestra, fijación, deshidratación, aclarado, inclusión, corte, tinción y montaje. Explica cada uno de estos pasos en detalle, así como los diferentes métodos de fijación, colorantes empleados y técnicas especiales como la congelación y tinción histológica y citoquímica. El documento provee una guía completa del proceso de preparación de muestras para su exam
Resumen con las principales características morfológicas de los leucocitos.Manuel García Galvez
Este documento describe las principales características morfológicas de los diferentes tipos de leucocitos, incluyendo el tamaño y forma del núcleo y citoplasma, así como la presencia y color de los gránulos para neutrófilos, eosinófilos, basófilos, linfocitos y monocitos.
Este documento presenta información sobre diferentes técnicas inmunológicas de precipitación como la inmunodifusión doble, la inmunodifusión radial y la electroforesis. También describe los pasos para preparar una suspensión de glóbulos rojos al 2% y las normas de seguridad de un laboratorio de inmunología.
Este documento describe diferentes técnicas de tinción de material citológico, incluyendo la tinción de Papanicolaou, tinción de Shorr y tinción de May-Grünwald-Giemsa. Explica los objetivos de la tinción de material citológico y proporciona detalles sobre los principios y aplicaciones de cada técnica de tinción. También menciona el uso de coloraciones rápidas como azul de metileno.
Trabajo en grupo de tec.histologías grupo 6Marco Rojas
Este documento describe las diferentes áreas que componen un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo el área de recepción, archivo, almacén, laboratorio, áreas de diagnóstico, histotecnología, inclusión de tejidos en parafina, microtomía y tinción. Explica las funciones de cada área y los equipos e insumos necesarios para realizar los procesos histopatológicos y el diagnóstico de muestras.
Clasificación de-fijadores-con-formol-y-sin-formol grupo 6Marco Rojas
El documento describe los diferentes tipos de fijadores histológicos, incluyendo su clasificación, características y objetivos. Los fijadores químicos se clasifican en cuatro grupos: fijadores por deshidratación tisular como el alcohol etílico y la acetona, fijadores que actúan por cambios en el estado coloidal de las proteínas como el ácido acético, fijadores que forman sales con los tejidos como el cloruro de mercurio, y fijadores que actúan por otros mecanismos como el formol
El documento presenta una descripción de diferentes técnicas de tinción utilizadas en el estudio de muestras biológicas por microscopía para identificar hongos. Se explican los fundamentos, utilidad y ejemplos de aplicación de tinción de Hematoxilina-Eosina, Gomori-Grocott, Ácido Periódico de Schiff, Fontana-Masson y Mucicarmina. Además, se detallan los pasos para la preparación de muestras de biopsia que serán analizadas por microscopía.
El documento describe los procesos de inclusión de tejidos para microscopía óptica e histopatología, incluyendo deshidratación, aclaramiento e infiltración con parafina. Explica los pasos del proceso de inclusión, los agentes químicos utilizados en cada etapa, y los procedimientos para la preparación y orientación de muestras en bloques de parafina antes del corte. También cubre la limpieza y mantenimiento de equipos como procesadores de tejidos y estaciones de inclusión.
Este documento describe varias técnicas de tinción citológica y tisular, comenzando con los fundamentos y mecanismos generales de la coloración. Luego se detalla la técnica de tinción con hematoxilina-eosina, que es la más comúnmente utilizada. Finalmente, se explican otras técnicas de tinción no histoquímicas para identificar sustancias como lípidos, glucógeno, mucina, fibrina y tejido conjuntivo.
Procesamiento de Muestras para Anatomía patológicaMorfocitos asd
Este documento describe el proceso de procesamiento de muestras para anatomía patológica, incluyendo la obtención del tejido a través de biopsia o autopsia, la fijación del tejido en formol para prevenir cambios, la inclusión del tejido en parafina para formar bloques, el corte de secciones delgadas del bloque usando un micrótomo, la tinción de las secciones y su observación al microscopio por un patólogo para realizar un diagnóstico.
Cambios morfologicos celulares en la necrosis full version1.2Diego Duran
Este documento describe los cambios morfológicos celulares que ocurren durante la necrosis. La necrosis es la muerte celular irreversible asociada con daño mitocondrial y ruptura de membranas. Ocurre en dos etapas: la necrobiosis, donde no hay cambios visibles, y la necrofanerosis, donde se ven signos como picnosis y ruptura nuclear. La necrosis se caracteriza por aumento de tamaño celular y nuclear, ruptura de membranas y digestión del contenido celular. Puede presentarse en varios tipos dependiendo del tejido a
Este documento describe varias técnicas histoquímicas y enzimohistoquímicas utilizadas para identificar sustancias a nivel celular y tisular. Explica técnicas para hidratos de carbono como PAS, azul alcián y azul de toluidina; para proteínas como rojo Congo y Fontana-Masson; y para grasas como Oil Red O y Sudán. También cubre técnicas para colágeno, ácidos nucleicos y otros componentes, proporcionando detalles sobre sus protocolos y usos diagnósticos.
El documento describe el medio de cultivo MIO (Movilidad, Indol y Ornitina), el cual se utiliza para identificar bacterias mediante tres pruebas: 1) la movilidad bacteriana que se detecta por turbidez alrededor del punto de inoculación, 2) la producción de indol que se identifica por un anillo rojo al añadir el reactivo de Kovacs, y 3) la descarboxilación de la ornitina que cambia el color del medio de amarillo a púrpura. El medio MIO permite caracterizar bacterias observando
El documento describe las técnicas de tinción utilizadas en microscopía para mejorar el contraste en las imágenes microscópicas. Las tinciones permiten resaltar estructuras celulares y tejidos utilizando colorantes que se unen selectivamente a biomoléculas como ADN, proteínas, lípidos o carbohidratos. Se mencionan diferentes tipos de tinciones como in vivo, in vitro, directas e indirectas así como los colorantes más comunes como hematoxilina, eosina y azul de metileno.
Reporte de práctica 3. Pruebas bioquímicasAlan Hernandez
El documento describe un experimento de identificación de bacterias mediante pruebas bioquímicas. Se prepararon medios de cultivo como McConkey, Nutritivo y VBB en placas de Petri e inocularon con muestras. Tras incubar, se aplicó tinción de Gram a las colonias y se identificaron colonias Gram negativas. Posteriormente, se realizaron pruebas bioquímicas en tubos de ensayo inoculados con las colonias Gram negativas. Los resultados de las pruebas bioquímicas permitieron identificar las bacterias presentes
El documento describe diferentes tipos de micrótomos, sus orígenes y usos. Los micrótomos son instrumentos que permiten cortes finos de tejidos endurecidos para su observación microscópica. Existen micrótomos de deslizamiento, rotación, congelación y ultrafinos. El origen del micrótomo se atribuye a Wilhelm His en 1866 para estudiar embriones humanos mediante secciones histológicas. Los micrótomos se usan comúnmente en histología, anatomía y otras aplicaciones biomédicas que requieren cortes delg
áReas de un laboratorio de anatomía patológicaBrandon Caiza
El documento describe las diferentes áreas necesarias en un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo áreas de recepción, laboratorio, análisis y diagnóstico, archivo, almacenamiento. También detalla el equipamiento necesario como microscopios, procesadores de tejidos, reactivos, y las medidas de seguridad requeridas.
Este documento describe un laboratorio de histología sobre la tinción hematoxilina y eosina realizado por estudiantes de medicina. Explica que la hematoxilina se usa para teñir componentes aniónicos de los tejidos de morado y la eosina se usa después para contrastar. Detalla los pasos del procedimiento, incluyendo diferentes tiempos de inmersión en hematoxilina y eosina y el uso de ácido acético. Los estudiantes observaron las muestras bajo el microscopio a diferentes aumentos y concluyeron que el laboratorio cu
Este documento presenta las instrucciones para un laboratorio sobre epitelios. Los estudiantes observarán muestras de diversos tipos de epitelio bajo el microscopio e identificarán sus características. Deberán dibujar lo que observan y describir la función de cada tipo de epitelio. También responderán preguntas relacionadas con las adaptaciones de los epitelios, sus funciones, y crearán un mapa conceptual sobre los diferentes tipos de epitelio.
Este documento describe los diferentes tipos de fijación utilizados para preservar tejidos biológicos, incluyendo fijación química y física. Explica que la fijación tiene como objetivo mantener la estructura celular intacta para preservar las muestras. También discute factores como la concentración del fijador, la temperatura y el tiempo de fijación que afectan la efectividad del proceso. Finalmente, resume dos métodos comunes de fijación - por inmersión y por perfusión.
Este documento describe los pasos básicos de la técnica histológica, incluyendo la toma de muestras biológicas, la fijación, deshidratación, inclusión en parafina, corte en secciones delgadas, tinción y montaje para su observación microscópica. Los principales métodos descritos son la biopsia, necropsia e improntas para obtener las muestras, y la tinción con hematoxilina y eosina para colorear las secciones y visualizar las estructuras celulares y t
El documento presenta 4 informes de biología realizados por Jessica Duran sobre diferentes temas: 1) pigmentación de seres vivos usando pigmentos naturales, 2) observación de células vegetales de cebolla usando microscopio, 3) observación de la estructura vegetal del corcho, y 4) observación de microorganismos animales (hormigas). Cada informe incluye objetivos, materiales, procedimientos, observaciones, conclusiones y bibliografía.
Checklist para elaborar informe de laboratorio de biologíasachybv
Este documento proporciona un formato detallado para elaborar informes de laboratorio de biología. Incluye secciones para la portada, introducción, diseño del experimento, obtención y procesamiento de datos, resultados, conclusión y evaluación. Se especifican aspectos como el tipo y tamaño de letra, variables a medir, controles, materiales, procedimientos, tablas y gráficas de resultados, y sugerencias para mejorar el método experimental.
Este documento describe una práctica de laboratorio sobre el reconocimiento de las áreas y equipos dentro de un laboratorio de técnicas histológicas. Explica los objetivos, materiales, procesos como la fijación, deshidratación, aclaramiento e inclusión de tejidos, uso del micrótomo y técnicas de tinción para preparar muestras y hacer cortes que puedan observarse microscópicamente.
Este documento describe los materiales y equipos utilizados en un laboratorio de genética. Identifica y explica el uso de instrumentos comunes de vidrio y plástico como vasos precipitados, matraces Erlenmeyer, probetas y tubos de ensayo. También describe equipos mayores como incubadoras, centrifugadoras, espectrofotómetros y cámaras de electroforesis, y explica sus funciones respectivas. El documento concluye que estos materiales e instrumentos cumplen un papel fundamental en las investigaciones de un laboratorio de genética
INFORME DE LABORATORIO 1 - BIOTECNOLOGIA.pdfCinthiaSamanda
El documento describe los equipos de tecnología molecular disponibles en el laboratorio de la Universidad Nacional de Moquegua. Estos incluyen centrifugadoras, termocicladores, espectrofotómetros, concentradores al vacío y otros equipos necesarios para investigaciones a nivel molecular como la amplificación de ADN y electroforesis. El documento explica las características y usos de cada equipo para apoyar las investigaciones de los estudiantes.
Este documento resume un taller sobre el reconocimiento y uso de materiales básicos de laboratorio de ciencias. El taller cubrió la identificación y función de materiales comunes como tubos de ensayo, probetas, matraces Erlenmeyer, vasos de precipitados, mecheros y balanzas. También incluyó demostraciones prácticas de reacciones químicas elementales para ilustrar el uso correcto de este equipamiento. Los asistentes concluyeron que el conocimiento de los materiales de laboratorio es fundamental para trabajar de forma segura y efect
Este documento presenta 12 equipos de laboratorio importantes para el procesamiento de ADN y realización de estudios, incluyendo una incubadora con agitación, mini centrífuga, NanoDrop One C, centrifugadora 5425 R, termociclador en tiempo real PCR, Qubit 4 Fluorometro, termociclador convencional T100 BioRad, cámara de flujo laminar vertical de PCR, sistema de electroforesis, ultracongelador, centrífuga refrigerada y concentrador de ADN. El documento explica brevemente la función de cada equipo.
Este documento presenta una guía de prácticas de micología general. Introduce los grupos principales de hongos y describe el material y equipos de un laboratorio de micología, incluyendo vidrio, metal, autoclave, horno, estufa e incubadora y microscopio. La primera práctica se enfoca en el reconocimiento de este equipamiento.
Este documento describe la elaboración de una maqueta de autoclave utilizando materiales reciclados. Explica las funciones y componentes principales de un autoclave, el proceso de esterilización y sus aplicaciones en ingeniería ambiental. Luego detalla los materiales, procedimiento y resultados de la maqueta, la cual logró replicar de manera satisfactoria un autoclave a pequeña escala para fines educativos.
Práctica n° 2 reconocimiento de material deYamilee Farro
Este documento proporciona recomendaciones para estudiantes que realizan prácticas de microbiología. Describe los procedimientos de limpieza y esterilización requeridos para el material de laboratorio como tubos, placas, matraces y pipetas antes y después de su uso. También explica el manejo adecuado de equipos como el autoclave, destilador, estufa de incubación y microscopio para garantizar la esterilidad del ambiente de trabajo.
DESCRIPCIÓN DE EQUIPOS DE LABORATORIO - CUELA CAMACHO AGUSTÍN JUNIOR.pdfAgustnJuniorCuelaCam
Este documento describe los equipos de laboratorio utilizados en el laboratorio de biotecnología de la Universidad Nacional de Moquegua. Describe 8 equipos principales: 1) incubadora con agitación, 2) mini centrífuga, 3) NanoDrop One C, 4) micropipeta, 5) centrifugadora refrigerada, 6) termociclador en tiempo real PCR, 7) termociclador convencional, 8) electroforesis. Cada equipo se describe detallando sus características, especificaciones y usos. El documento concluye que estos equipos son
Yamunaque cruz jose luis equipos y materiales de laboratorio clinicoluiggii
El documento describe los equipos y materiales utilizados en un laboratorio clínico. Explica que estos son necesarios para realizar experimentos y observaciones que permitan estudiar la vida a nivel celular y de órganos/sistemas. Entre los equipos se encuentran microscopios, estufas, autoclaves, neveras, centrífugas, balanzas, baños maría y contadores de colonias. También se describen varios materiales como vidrio, porcelana y metal utilizados en instrumentos de medición, separación, mezcla y soporte.
Este documento describe el procedimiento para preparar medios de cultivo microbiológico. Se elaboraron 16 medios de cultivo usando agar nutriente esterilizado en autoclave. Cada medio fue expuesto en diferentes ambientes por 24 horas y luego analizado, mostrando mayor crecimiento microbiano en áreas con más contaminación como baños versus dormitorios.
Este documento describe diferentes técnicas de asepsia y esterilización utilizadas en un laboratorio de biotecnología. Explica métodos como la antisepsia, esterilización por calor húmedo usando autoclaves, esterilización por llama y filtración. También describe el uso de campanas o cabinas de flujo laminar para proveer un ambiente limpio y libre de partículas durante procedimientos que requieren asepsia.
La esterilización de instrumentos médicos es un proceso vital en cualquier entorno de atención médica para prevenir la propagación de infecciones y garantizar la seguridad de los pacientes y del personal. Consiste en la eliminación de todos los microorganismos patógenos, incluidos bacterias, virus, hongos y esporas, de los instrumentos médicos y equipo quirúrgico.
Existen varios métodos de esterilización, cada uno con sus propias ventajas y desventajas. Algunos de los métodos más comunes incluyen:
Calor húmedo (autoclave): Este método utiliza vapor de agua a alta presión y temperatura para destruir los microorganismos. Es uno de los métodos más efectivos y rápidos para la esterilización de una amplia variedad de instrumentos médicos y materiales.
Calor seco: En este proceso, los instrumentos se exponen a altas temperaturas en ausencia de agua. Aunque es efectivo para algunos materiales, puede dañar instrumentos sensibles al calor o al vapor.
Radiación: La radiación ionizante, como los rayos gamma o los electrones acelerados, se utiliza para destruir los microorganismos. Es un método efectivo para materiales sensibles al calor, pero puede ser costoso y requiere instalaciones especializadas.
Productos químicos: Algunos productos químicos, como el óxido de etileno y el peróxido de hidrógeno, se utilizan para esterilizar instrumentos sensibles al calor o al vapor. Sin embargo, estos procesos pueden ser largos y pueden dejar residuos químicos en los instrumentos.
Independientemente del método utilizado, es crucial seguir estrictos protocolos de esterilización para garantizar la eficacia y la seguridad. Esto incluye la limpieza y desinfección previa de los instrumentos, el empaquetado adecuado para evitar la recontaminación y el seguimiento de los parámetros de esterilización, como la temperatura, el tiempo y la presión, para cada ciclo de esterilización. La validación regular de los procesos de esterilización también es fundamental para garantizar su eficacia continua. La esterilización de instrumentos médicos es esencial para prevenir infecciones. Se realiza mediante métodos como calor húmedo, calor seco, radiación o productos químicos. Es importante seguir protocolos estrictos de limpieza, empaquetado y validación para garantizar la eficacia y seguridad del proceso. En conclusión, la esterilización de instrumentos médicos es un proceso crucial para prevenir la propagación de infecciones en entornos de atención médica. Se realizan mediante métodos como calor húmedo, calor seco, radiación o productos químicos, cada uno con sus propias ventajas y desventajas. Es fundamental seguir protocolos estrictos de limpieza, empaquetado y validación para garantizar la eficacia y seguridad del proceso.
La finalidad última de la esterilización de instrumentos médicos es garantizar la seguridad de los pacientes y del personal médico al eliminar cualquier riesgo de infección asociado con el uso de instrumentos y equipo médico. Al eliminar todos los micro
El documento proporciona información sobre la esterilización de material de laboratorio. Explica que la limpieza elimina la suciedad, la desinfección destruye la mayoría de los gérmenes y la esterilización elimina todos los gérmenes. Describe los métodos físicos de esterilización como el calor seco mediante estufas y el calor húmedo mediante autoclaves. Detalla el funcionamiento y uso correcto de estufas y autoclaves para esterilizar de forma segura diferentes tipos de material de laboratorio.
El documento presenta los requisitos funcionales y espaciales para el diseño de un centro de investigación. Describe las diferentes áreas requeridas como laboratorios, aulas, auditorios, oficinas y áreas de apoyo. Explica los estándares de diseño para laboratorios en términos de condiciones ambientales controladas, equipamiento e instalaciones necesarias. También enumera el equipo y material personal requerido en los laboratorios.
Este documento describe varios equipos e instrumentos utilizados en un laboratorio petrolero. Entre ellos se encuentran el extractor Soxhlet que se usa para extracción continua, el plato calentador que sirve para calentar líquidos, y la balanza electrónica que realiza pesajes mediante sensores. También menciona equipos como la balanza de lodos, el set de contenido de arena y la mezcladora de lodos, entre otros instrumentos usados para análisis de muestras.
11. Teoría Control F y Q de los MOs. Teoría. 2022.pdfSolBelen2
El documento describe los métodos físicos y químicos para controlar el crecimiento de microorganismos, incluyendo la esterilización, desinfección y descontaminación. Explica que el calor es el método más común, ya sea calor seco o húmedo usando vapor. El vapor bajo presión en un autoclave es el método más efectivo para esterilizar usando calor húmedo. También cubre otros métodos físicos como radiación y filtración.
Este documento describe varios métodos de esterilización, incluyendo métodos físicos (calor, radiaciones, filtración), químicos (agentes como óxido de etileno y aldehídos) y factores que afectan la eficacia de los desinfectantes. Los métodos físicos más comunes son el calor húmedo usando vapor a presión y el calor seco usando hornos. Los métodos químicos matan microbios alterando sus proteínas y ácidos nucleicos. La concentración, tiempo de exposición
El documento describe los protocolos y procedimientos para la descripción macroscópica de órganos y tejidos quirúrgicos. Explica cómo obtener y preparar las muestras, incluyendo el útero y las trompas de Falopio. Detalla los pasos para describir las características macroscópicas como el tamaño, color, textura y cualquier hallazgo anormal. También provee información sobre la anatomía normal y posibles patologías de estos órganos.
Este documento describe los protocolos y materiales necesarios para la descripción macroscópica de órganos y tejidos, incluyendo la placenta, el cordón umbilical, las glándulas mamarias y sus patologías. Explica cómo obtener y examinar las muestras, tomar medidas y fotografías, e identificar características como el color, forma, tamaño y superficie. Además, detalla las funciones de estos órganos y algunas anomalías que pueden ocurrir.
La información proporcionada en el documento incluye: 1) El nombre del estudiante Brandon Caiza y el semestre en el que se encuentra, que es tercero, 2) El nombre del docente Iván Peñafiel Méndez y la fecha de presentación del documento, que es el 08/06/16, 3) Los detalles de la universidad, facultad, carrera y ciclo semestral al que pertenece el estudiante.
El documento presenta un organigrama de los diferentes tipos de fijadores con formol utilizados en técnicas histológicas. El estudiante Brandon Caiza de la Universidad Nacional de Chimborazo en Ecuador elabora el organigrama como parte de un trabajo para su asignatura de Técnicas Histológicas en el tercer semestre bajo la supervisión del profesor Iván Peñafiel Méndez.
El documento presenta información sobre las técnicas histológicas de un curso de laboratorio clínico e histopatología en la Universidad Nacional de Chimborazo. El estudiante Brandon Caiza entrega un trabajo sobre el procesamiento de tejidos para su asignatura de técnicas histológicas, impartida por el profesor Iván Peñafiel Méndez durante el período académico de abril a agosto del 2016.
La tarea trata sobre los tipos de fijadores utilizados en técnicas histológicas. Fue elaborada por Brandon Caiza, un estudiante de tercer semestre de la carrera de Laboratorio Clínico e Histopatologico de la Facultad de Ciencias de la Salud de la Universidad Nacional de Chimborazo en Riobamba, Ecuador, para la asignatura Técnicas Histológicas y fue entregada el 1 de junio de 2016.
Este documento describe las diferentes áreas y subáreas de un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo el área de macroscopía, donde se reciben y examinan los órganos; el área de tinción, donde se preparan las placas con tinción; y el área de microtomía, donde se realizan los cortes de tejidos. También describe las diferentes clasificaciones de desechos generados, como desechos comunes, especiales, cortopunzantes y anatomopatológicos.
Este documento presenta un proyecto de tarea para la asignatura de Técnicas Histológicas en la Facultad de Ciencias de la Salud de la Universidad Nacional de Chimborazo. El estudiante Brandon Caiza elaboró organizadores gráficos de la macroscopía de órganos como parte de un proyecto para ser entregado el 26 de mayo de 2016 bajo la guía del profesor Lic. Iván Peñafiel Méndez durante el período de abril a agosto de 2016 en Riobamba, Ecuador.
Este documento presenta un resumen de las normativas de salud y pictogramas de bioseguridad para la asignatura de Técnicas Histológicas en la Facultad de Ciencias de la Salud de la Universidad Nacional de Chimborazo. Fue elaborado por Brandon Caiza para el tercer semestre y entregado al docente Lic. Ivan Peñafiel Méndez el 9 de mayo de 2016 como parte del periodo académico de abril a agosto de ese año.
Este documento presenta un resumen de un proyecto de tarea para la asignatura de Técnicas Histológicas en la Facultad de Ciencias de la Salud de la Universidad Nacional de Chimborazo. El proyecto incluye organizadores gráficos de la macroscopía de órganos y fue elaborado por Brandon Caiza para su tercer semestre bajo la supervisión del profesor Lic. Ivan Peñafiel Méndez.
El documento describe las normas de bioseguridad y clasificación de desechos en un laboratorio de anatomía patológica. Explica los principios de bioseguridad, los niveles de bioseguridad, las normas generales del laboratorio y la clasificación de desechos en comunes, cortopunzantes, infecciosos y especiales. También detalla cómo se deben eliminar los diferentes tipos de desechos y residuos según el área donde se generan en el laboratorio.
El documento habla sobre el virus H1N1, también conocido como gripe porcina. Este virus se detectó por primera vez en humanos en 2009 en Estados Unidos, México y Canadá. Los síntomas incluyen fiebre, tos, dolor de garganta y muscular. El virus se propaga de persona a persona a través de gotas de saliva. Aunque causa brotes en cerdos, puede mutar y transmitirse entre humanos. Ha causado una pandemia global con casos reportados en varios países y algunas muertes.
Este documento presenta el caso de una paciente de 29 años con un teratoma quístico maduro de ovario derecho. Los teratomas constituyen casi el 20% de los tumores de ovario y son benignos en un 95% de los casos. Se originan a partir de células embrionarias y con frecuencia contienen tejidos como pelo, dientes y hueso. La paciente presentaba dolor abdominal y un tumor quístico de 20x12 cm detectado por ecografía y resonancia magnética. Tras la intervención quirúrgica se extrajo un ov
Trabajo en grupo de tec.histologías grupo 6Brandon Caiza
Este documento describe las diferentes áreas que componen un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo el área de recepción, archivo, almacén, laboratorio, áreas de diagnóstico, histotecnología, inclusión de tejidos en parafina, microtomía y tinción. Explica las funciones de cada área y los equipos e insumos necesarios para realizar los procesos histopatológicos y el diagnóstico de muestras.
El documento describe las áreas físicas principales de un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo el área de recepción de muestras, donde son registradas e identificadas, y el área de macroscopía, donde se procesan las muestras. También explica los procedimientos de registro de muestras, modos de envío, y procesos de descripción macroscópica de hallazgos patológicos.
Control de calidad en anatomía patológica 4Brandon Caiza
El documento proporciona información sobre el control de calidad en anatomía patológica. Explica que un programa de control de calidad debe incluir el desarrollo de un manual de procedimientos, la recepción adecuada de muestras, el uso de equipos y productos químicos de calidad, y programas de entrenamiento para el personal. También discute conceptos erróneos sobre la calidad y la importancia de seguir normas como la ISO 15189 para garantizar resultados precisos que mejoren el tratamiento de pacientes.
Este documento presenta las normativas del Ministerio de Salud Pública del Ecuador sobre el manejo de desechos hospitalarios. Define los desechos comunes, infecciosos y especiales, y establece lineamientos para su clasificación, almacenamiento, recolección y transporte interno. Además, describe la responsabilidad de los establecimientos de salud en la gestión adecuada de sus desechos, con el fin de proteger la salud humana y el medio ambiente.
Este documento clasifica y describe los diferentes tipos de desechos generados en un laboratorio de anatomía patológica, incluyendo desechos comunes, potencialmente peligrosos, infecciosos, orgánicos y especiales. Explica cómo deben almacenarse y eliminarse cada tipo de desecho de acuerdo a sus características de peligrosidad para proteger la salud y el medio ambiente.
Este documento describe las normas y agentes de riesgo en un laboratorio de anatomía patológica. Explica que la bioseguridad implica medidas para prevenir daños a la salud de estudiantes, docentes y personal mediante el control de factores de riesgo biológicos, físicos y químicos. En el laboratorio se manipulan muestras que pueden contener agentes patógenos, por lo que se requiere contención primaria a través de buenas técnicas y equipo de seguridad, y contención sec
José Luis Jiménez Rodríguez
Junio 2024.
“La pedagogía es la metodología de la educación. Constituye una problemática de medios y fines, y en esa problemática estudia las situaciones educativas, las selecciona y luego organiza y asegura su explotación situacional”. Louis Not. 1993.
Examen de Selectividad. Geografía junio 2024 (Convocatoria Ordinaria). UCLMJuan Martín Martín
Examen de Selectividad de la EvAU de Geografía de junio de 2023 en Castilla La Mancha. UCLM . (Convocatoria ordinaria)
Más información en el Blog de Geografía de Juan Martín Martín
http://blogdegeografiadejuan.blogspot.com/
Este documento presenta un examen de geografía para el Acceso a la universidad (EVAU). Consta de cuatro secciones. La primera sección ofrece tres ejercicios prácticos sobre paisajes, mapas o hábitats. La segunda sección contiene preguntas teóricas sobre unidades de relieve, transporte o demografía. La tercera sección pide definir conceptos geográficos. La cuarta sección implica identificar elementos geográficos en un mapa. El examen evalúa conocimientos fundamentales de geografía.
1. UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
CARRERA DE LABORATORIO CLINICO E HISTOPATOLOGICO
ASIGNATURA:
TECNICAS HISTOLOGICAS
INFORME INVESTIGATIVO BASADO EN LA PRACTICA DE LABORATORIO
DE TECNICAS HISTOLOGICAS
TEMA:
RECONOCIMIENTO DE LAS DISTINTAS AREAS DENTRO DEL LABORATORIO
DE TECNICAS HISTOLOGICAS
ELABORADO POR:
BRANDON CAIZA
TERCER SEMESTRE
DOCENTE:
LIC.IVAN PEÑAFIEL MENDEZ
FECHA DE LA PRÁCTICA:
20/04/2016
FECHA DE ENTREGA:
27/04/2016
PERIODO:
ABRIL-AGOSTO 2016
RIOBAMBA – ECUADOR
2. TECNICAS HISTOLOGICAS
1.-Tema: Reconocimiento de las distintas áreas dentro del laboratorio de técnicas
histológicas
2.-Objetivo General: Identificar las áreas y equipos que se encuentran formando un
laboratorio de Anatomía Patológica.
3.-Objetivos Específicos:
Identificar cuál es la función que cumple cada área del laboratorio de anatomía
patológica.
Conocer cuáles son los materiales y equipos utilizados en cada área del
laboratorio.
Diferenciar el trabajo que se va a cumplir dentro de cada área, obteniendo un
aprendizaje significativo.
4.-Materiales:
Mandil
Cobertor de cabello
Guantes
Mascarilla
Libreta de apuntes
Esferos
5.-Marco teórico:
En una institución asistencial o docente-asistencial el laboratorio de patología o de
anatomía patológica también denominado servicio o departamento se ocupa del estudio
morfológico de muestras de células, tejidos y órganos obtenidos de pacientes vivos y de las
necropsias.
La distribución de las distintas áreas del laboratorio de anatomía patológica van a ser un
requisito primordial para el correcto procesamiento de las muestras en estudio; para lo cual
se van a dividir en distintas las distintas áreas para facilitar el trabajo y lograr un excelente
resultado.
Área de Microscopia:
3. TECNICAS HISTOLOGICAS
En esta área es necesario hacer énfasis en las condiciones de recepción de muestras para
que posteriormente durante el inicio de la técnica histológica que comprende; el estudio
macroscópico no se cometa errores.
Este estudio normalmente es llevado a cabo en un espacio físico denominado sala de tallado
o área de microscopia es la primera recepción de muestras, biopsias, tejidos que vienen
codificados; deben tener toma de agua que este en constante fluido el agua, para evitar que
los patógenos de la muestra contaminen el área y que no se queden en el mesón.
Plancha de madera y corcho:
Es un instrumento en forma de resbalera que nos va a servir para medir, cortar y manipular
los órganos que llegan a ser examinados, además nos va ayudar a que el bisturí o cualquier
otro objeto utilizado para en corte se dañe y que el fluido de dichos órganos se vaya
directamente a la cañería evitando el posible contagio con muestras contaminadas.
Casetas:
La utilización de las casetas son las de contener las porciones más sospechosas que van
directamente a los procesadores para eliminar fluidos, agua tisular y que de esta forma
queden aptas para su estudio.
PROCESAMIENTO DE TEJIDOS
El Procesamiento de muestras para anatomía patológica se las puede realizar de dos
maneras manuales y automatizadas.
Fijación
Deshidratación
Aclaramiento
Incrustación o inclusión
Corte de tejidos
Tinción
Observación
Fijación (2 horas): en este paso el tejido obtenido se coloca en una sustancia fijadora para
evitar los cambios post-mortem. • Unos de los fijadores más usado es el Formol al 10%
(Formaldehido) formol
Deshidratación (6 horas): se da por la presencia de alcoholes en este caso el etanol 50-90
%, se debe primero diluir el formol de mayor a menor para que no se endure la muestra.
Aclaramiento (2 horas ): se usa Xilol o sustituto de Xilol que es incoloro y rico en plomo el
tejido vuelve a su forma normal aclarándolo y blanqueando el tejido.
Inclusión (2 horas) • Se debe lavar el tejido para quitar exceso de fijador, luego se
deshidrata y se pasa por un líquido intermediario que es miscible con la parafina.
•Infiltración: en este paso la muestra se coloca en parafina liquida, de manera que se
impregne con ella.
4. TECNICAS HISTOLOGICAS
Aquí se forman bloques de parafina y dentro de estos bloques están las muestras a estudiar.
Se deja enfriar para que adquiera dureza.
Corte: tallado Previo al corte, se debe tallar el bloque para el obtener secciones
adecuadas en el micrótomo. El micrótomo es un instrumento que permite obtener cortes
muy delgados de muestra (5μm).
Los cortes se obtienen seriados, uno tras otro, obteniendo una cinta. Luego se echa a un
baño de flotación para que se estiren y se rescatan con un portaobjetos, que luego se
calienta para evaporar el agua y que los cortes queden adheridos.
Tinción: las placas se tiñen con la técnica de hematoxilina/eosina u otra especial. La
muestra debe desparafinarse y pasar por una serie de soluciones. Finalmente, las muestras
se deshidratan y se montan para ser vistas al microscopio.
Observación: el patólogo observa la muestra al microscopio y consigna el diagnóstico.
El estudio de las muestras demora 12 horas en ser procesadas en caso de ser muestras de
emergencia las muestras se procesaran en 3 días y las muestras de rutina de 8 a 15 días.
EQUIPOS UTILIZADOS PARA EL PROCESAMIENTO DE MUESTRAS
Estación de inclusión de tejidos en parafina acompañado de plancha fría
Se trata de una estación modular de inclusión diseñada para el encastramiento del tejido y
la confección de bloques de parafina, figura. Cuenta con un módulo calefactado de
dispensación de parafina con una capacidad de 3 litros y una superficie de trabajo espaciosa
así como zonas de almacenaje tanto para casetes como moldes.
Todas las funciones se controlan a través de una pantalla LED de fácil lectura, incluido el
ajuste de la temperatura para las bandejas de calentamiento derecha e izquierda, el depósito
de parafina y la superficie de trabajo. Cuanta además con un porta-pinzas extraíble y
calentable para 6 pinzas, accesible por los dos lados. La activación del flujo de parafina es
mediante clip de altura ajustable y pivotable, cuya activación manual se hace mediante el
molde de inclusión o con el dedo.
La velocidad de flujo es regulable y los recipientes colectores de parafina extraíbles,
calentados (de forma indirecta a través de la superficie de trabajo). Dicha superficie de
trabajo es grande y de fácil limpieza con zona de enfriamiento integrada también para
casetes extra grandes con sistema de salida de parafina.
5. TECNICAS HISTOLOGICAS
La iluminación de la superficie de trabajo óptima gracias a la lámpara halógena ajustable
individualmente. Y un portapinzas extraíble, calentable para 6 pinzas, accesible por los dos
lados. La temperatura del depósito de casetes/moldes de inclusión, de la superficie de
trabajo y del recipiente de parafina regulable entre 55° C y 70° C. La indicación de
temperatura permanente para todos los rangos de trabajo.
Se pueden programar los días y horas de trabajo para lograr un funcionamiento automático
del equipo. Las bandejas calefactadas de los casetes y de los moldes son intercambiables
para adaptarse a los cambios en el flujo de trabajo.
Accesorios:
Placa fría
Pedalera
Regulador de energía
Micrótomo:
Los micrótomos son instrumentos de corte para la elaboración de preparados que se usan en
la microscopía. Para cumplir con las altas exigencias de tales preparados, los micrótomos
permiten realizar cortes extremadamente finos. Los micrótomos en la elaboración de
preparados para la microscopía Normalmente los micrótomos modernos permiten cortes de
un espesor de 0,1 hasta 100 µm. A modo comparativo: El cabello humano tiene un espesor
entre 50 y 70 µm. La historia de los micrótomos empezó con el inicio de los microscopios
de luz. Para poder analizar objetos, estos debían ser lo suficientemente finos para que la luz
los traspasara. Los primeros micrótomos eran en su inicio simples cuchillas (normalmente
cuchillas de afeitar) con los que se hacían cortes de forma manual. Como las exigencias a
los preparados iban en aumento, fue necesario que los micrótomos se desarrollaran. Los
primeros micrótomos, tal como hoy en día los conocemos, se desarrollaron en 1770. Con
estos se podía fijar la prueba y ajustar el grosor del corte mediante unos tornillos. Hoy en
día, los micrótomos mecánicos se componen de un bloque, un sujeta-muestras y un equipo
técnico para el control del avance. La calidad de los preparados depende del tipo de avance,
de la geometría de la cuchilla y de la declinación (ángulo entre la cuchilla y la dirección de
corte). Adicionalmente se puede influir en el resultado en la preparación de la muestra
(mediante congelación).
6. TECNICAS HISTOLOGICAS
BAÑO DE FLOTACION
El baño de María es un equipo que se utiliza en el laboratorio para realizar pruebas
serológicas y procedimientos de incubación, aglutinación, inactivación, biomédicos,
farmacéuticos y hasta industriales. Por lo general, se utilizan con agua, pero también
permiten trabajar con aceite. Los rangos de temperatura en los cuales normalmente son
utilizados están entre la temperatura ambiente y los 60 °C. También se pueden seleccionar
temperaturas de 100 °C, utilizando una tapa de características especiales. Los baños de
María son fabricados con cámaras cuya capacidad puede seleccionarse entre los 2 y los 30
litros.
ESTUFAS:
La estufa de secado es un equipo que se utiliza para secar y esterilizar recipientes de vidrio
y metal en el laboratorio. Se identifica también con el nombre de Horno de secado. Los
fabricantes han desarrollado básicamente dos tipos de estufa: las que operan mediante
convección natural y las que operan mediante convección forzada. Las estufas operan, por
lo general entre la temperatura ambiente y los 350°C. Se conocen también con el nombre
de pupinel.
La estufa de secado se emplea para esterilizar o secarel material de vidrio y metal
utilizado en los exámenes o prueba, que realiza el laboratorio y que proviene de la sección
de lavado, donde se envía luego de ser usado en algún procedimiento.
La esterilización que se efectúa en la estufa se denomina de calor seco y se realiza a
180°C durante 2 horas; la cristalería, al ser calentada por aire a alta temperatura, absorbe
humedad y elimina la posibilidad de que se mantenga cualquier actividad biológica debido
a las elevadas temperaturas y a los tiempos utilizados.
7. TECNICAS HISTOLOGICAS
BATERIA DE TINCION:
Las baterías de tinción serán única y exclusivas para el área donde se encuentren en este
caso para el área de anatomía patológica; deben tener su respectiva rotulación en todas la
cubetas; los colorantes se deben filtrar inmediatamente antes de llenar las cubetas usando
un embudo y papel filtro además se requiere que la batería de tinción este bajo la campana
de extracción de gases
Se deben dar dos tipos de mantenimiento a los colorantes los cuales son:
Mantenimiento general: el cual consiste en remover cada 8 días cualquier material celular
que haya desprendido después de su respectiva filtración. Además se debe mirar los niveles
de soluciones en las baterías de tinciones.
Mantenimiento específico: en la hematoxilina se debe retirar la capa de aspecto metálico
que se forman sobre los colorantes con papel absorbente o filtración. El etanol es
indispensable mantenerlo bien tapado.
6.-CONCLUSIONES:
Se pudo identificar y conocer las áreas que están dentro del laboratorio de anatomía
patológica
Se logró conocer cuál es la función de cada área y todos los procedimientos que se
realizan dentro de las mismas.
Se adquirió conocimiento en cuanto a al función que desempeña cada equipo dentro
del laboratorio de anatomía patológica.
7.-RECOMENDACIONES:
Se recomienda por parte de los estudiantes contar con todos los materiales de
bioseguridad necesarios para las prácticas ya que son de gran importancia dentro del
laboratorio.
Se requiere tener el conocimiento previo a la práctica mediante la facilitación de la
guía de cada laboratorio por parte del docente.
Se debe mantener la calma dentro del mismo ya que se está conociendo y
manejando equipos sumamente costosos que son de gran ayuda para nuestro
aprendizaje.
8. TECNICAS HISTOLOGICAS
8.-BIBLIOGRAFIA:
Gabriel M. (2006) Micrótomo. Disponible en:
https://laboratorioap.wordpress.com/2015/05/13/el-microtomo/
Luis G. (2015) Importancia del Área de Macroscopia. Disponible en:
http://histoscientifics.blogspot.com/2015/10/importancia-del-area-de-macroscopia-
y.html
García del Moral, R. (1993).Manual de laboratorio de anatomía patológica. Editorial
MacGraw-Hill / Interamericana de España S.A
Stevens, A. (2001).Anatomía patológica .Barcelona: Editorial lsevier España, S.A,
9. TECNICAS HISTOLOGICAS
9.-ANEXOS:
ANEXO N°1
FOTOS DE LOS EQUIPOS UTILIZADOS EN EL LABORATORIODE ANATOMIA
PATOLOGICA.
IMAGENN°1
Estaciónde inclusiónde tejidos
IMAGENN°2
Micrótomo
IMAGENN°3
Equipoutilizadoparael bañode flotación
IMAGENN°4
Batería de tinción