Este documento presenta dos casos clínicos de infecciones asociadas a catéteres y heridas quirúrgicas. Describe los agentes etiológicos comunes, métodos de diagnóstico y tratamiento de estas infecciones. En particular, señala a Candida parapsilosis y Staphylococcus aureus resistente a meticilina como posibles causantes de las infecciones descritas en cada caso.
definición de respuesta inflamatoria sistemática, criterios, sepsis, choque séptico,infecciones importantes en pacientes quirúrgicos. bibliografía schwartz
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Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo III, Tema 9: Parásitos Oportunistas y Parasitosis Emergentes.
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IA, la clave de la genomica (May 2024).pdfPaul Agapow
A.k.a. AI, the key to genomics. Presented at 1er Congreso Español de Medicina Genómica. Spanish language.
On the failure of applied genomics. On the complexity of genomics, biology, medicine. The need for AI. Barriers.
1. LICENCIATURA DE OBSTETRICIA. UNLP
Taller:infecciones endovasculares y de piel y partes blandas
Alumna: Funes Débora Ruth
Materia: microbiología y Parasitologia.
Comisión: 8
Nº de legajo: 52926/7
Objetivos del aprendizaje
- Conocer el concepto de infecciones asociadas a catéteres (IAC) y de piel y de partes
blandas (PPB)
- Reconocer los microorganismos asociados a infecciones de IAC y PPB
- Relacionar la patogenia con los sucesos clínicos de las infecciones de IAC y PPB
- Conocer los métodos de diagnóstico microbiológico de las infecciones de IAC y PPB
- Describir los métodos de profilaxis para el control de infecciones de IAC y PPB.
CASO CLÍNICO A:
Paciente de 27 años, cursa internación en UTI por traumatismo de cráneo. Al ingreso se
colocó catéter venoso central. El día 9 de internación, el paciente comienza con fiebre y
la radiografía de tórax es normal. El enfermero a cargo del paciente informa mal
funcionamiento del catéter y supuración en el sitio de salida. Diagnóstico presuntivo:
infección asociada al catéter (IAC).
En base a los estudiado responda:
1- Enumere los agentes etiológicos que puedan producir IAC
Infección asociada a catéteres vasculares por:
Bacterias gram positiva:
Staphylococcus aureus.
Staphylococcus coagulasa negativo (s. epidermidis) más relacionado a inf. Por
catéteres.
Enterococos.
Bacilos gram negativos:
Pseudomonas aeruginosa.
Enterobacterias (Klebsiella pneumoniae, escherichia coli, enterobacter cloacae).
2. Hongos:
Candida spp.
2- Mencione las vías de ingreso de los microorganismos al catéter.
Microbiota de la piel (principal ingreso de microorganismo de la piel y las manos del
personal de salud)
Manos del personal sanitario
Contaminación de la inserción
Siembra hematógena
Contaminación de la infusión
Colonización de la conexión.
3- ¿Cómo se realiza el diagnóstico microbiológico? ¿Qué muestras se deben tomar?
¿Cómo debe efectuarse la recolección? ¿Es importante el orden de recolección de
las muestras para diagnóstico? Justifique
Se realiza por método directo se buscara a los microorganismo en cultivo.
Toma de muestra punta de catéter, hemocultivo periférico si se remueve el catéter,
si no se puede retirar el catéter se toma una muestra retro cultivo y hemocultivo
periférico.
Si se observa secreción en el sitio de inserción del catéter: se toma muestra de
hemocultivo periférico e hisopado secreción periférica.
Hemocultivo periférico toma de muestra:
Lavado de manos con antiséptico.
Retirar la tapa del frascode hemocultivo y desinfectar el tapón del frascocon alcohol
al 70% o clorhexidina.
Lavado de mano con antiséptico.
Colocarse guantes estériles.
Colocar torniquete o lazo y elegir el sitio de punción.
Antisepsia de la piel en zona donde se realizara la extracción.
Tomar una muestra de sangre (10ml en adultos, 3-4ml en pediátricos).
Inocular la sangre en frasco de hemocultivo.
Descartar aguja en descartador y jeringa en bolsa roja.
No cambiar la aguja para inoculación en el frasco.
Agitador suavemente.
Rotular la muestra con los datos del paciente.
IMPORTANCIA DEL ORDENDE MUESTRA:
Tomar la muestra previamente previa al inicio del antibiótico o en base a la
concentración antibiótica, primero se toma hemocultivo periférico (muestra de
sangre) antes de retrocultivo (muestra del catéter).
Deben tomarse retrocultivos de todas la luces/lúmenes del catéter.
El volumen de retrocultivo y hemocultivo periférico debe ser el mismo.Remitirjuntos
al laboratorio. Incubar al mismo tiempo.
4- El informe de laboratorio indica: Examen directo: Se observan elementos
levaduriformes. Cultivo: desarrolla Candida parapsilosis en las muestras remitidas.
Investigue si este hongo pudiera ser el responsable de esta infección.
Las (levaduras) candida parapsilosis es uno de los agentes causales se encuentran en
infecciones de piel, uñas, mucosas oral o vaginal infectan el tracto genito urinario
infecciones relacionadas a catéteres vasculares.
CASO CLÍNICO B:
3. Consulta al servicio de guardia una puérpera por fiebre (38,2°C), dolor abdominal y
malestar general. Tuvo una cesárea realizada hace 9 días. A la fecha, la herida
quirúrgica presenta eritema, dolor a la palpación y secreción purulenta. La paciente tuvo
infecciones recurrentes de piel (forunculosis).Diagnóstico presuntivo: infección de herida
quirúrgica.
En base a los estudiado responda:
1- Indique las muestras biológicas para el diagnóstico de infección de herida quirúrgica
Diagnóstico de la infección de la herida quirúrgica, Muestra va a ser atra ves de método
directo para aislar el microorganismo que está produciendo la infección.
Se va a realizar cultivando la muestra tomada el tipo de muestra toma de punción y
aspiración.
Con técnica asepsia se realiza punción con aguja y jeringa del material de la lesión,
entrando por piel o tejidos sanos.
No se recomienda el hisopado de la lesión.
Las muestras se recolectan en frasco estéril y se remiten al laboratorio inmediatamente.
De no ser posible, conservar en heladera 4-8ºC.
Cuando se sospeche la presencia de anaerobios se colocaran en medios de transporte
adecuados (ej.: TAB).
Otras tipos de toma de muestra: infecciones más seberas
Biopsia o punch.
Toilette o desbridamiento quirúrgico.
2- El informe de laboratorio indica: Staphylococcus aureus resistente a Meticilina en las
muestras remitidas. Investigue si esta bacteria pudiera ser responsable de este
cuadro clínico. Mencione otras infecciones producidas por S. aureus
Ataphylococcus aureus es resistente a la meticilina puede ser responsable del cuadro
clínico por una invasión o innovación directa por forunculosis de infecciones de partes
blandas por staphylococcus aureus puede ser que la paciente este colonizada.
La infección de herida quirúrgica es por el staphylococcus aureus que estaba en su
propia piel.
El ataphylococcus aureus es coco gram positivo agrupado en racimos es anaerobio
facultativo es inmóvil. Forma parte de la microbiota normal (nasofaringe, pliegues
inguinales, axilas) en un tercio de la población general.
Es un patógeno oportunista el tipo de infección que produce:
Infecciones endógenas y exógenas.
Infección de piel y partes blandas.
Infección de herida quirúrgica.
4. Infecciones osteoarticulares.
Endocarditis.
Bacteriemia.
Infección asociada a catéter.
Neumonía.
3- Explique el La infección por Staphylococcus aureus resistente a la meticilina se
produce a causa de un tipo de estafilococo que se volvió resistente a muchos de los
antibióticos utilizados para tratar las infecciones comunes por esta bacteria. en las
infecciones causadas por S. aureus.
Significa que la infección por Staphylococcus aureus resistente a la meticilina se
produce a causa de un tipo de estafilococo que se volvió resistente a muchos de los
antibióticos utilizados para tratar las infecciones comunes por esta bacteria.
La infección se propaga y muchas veces pone en riesgo la vida su capacidad de
infectar a personas jóvenes previamente sanas.
Su producción de diferentes toxinas entre ellas la leucocidina panton- Valentine
responsable de las lesiones necrotizantes. En la comunidad, SAMR se ha convertido
en el principal agente causal de infecciones de piel y partes blandas.
Bibliografía
• EMA Infecciones endovasculares, piel y partes blandas
• EMA Bioseguridad en el ámbito de la salud
• Murray PR, Rosenthal KS, Pfaller MA. Microbiología Médica. 8va.ed. Barcelona.
Elsevier, 2017.
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a meticilina en Panamá. Pediatr (Barc). 2011;75(2):103-109.
https://analesdepediatria.org/es-pdf-S1695403311001068
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Castellanos I, Montoto Mayor V. Infección del sitio quirúrgico en puérperas con
cesárea.
Rev Cubana Obstet Ginecol, 2016, 42(1): 1-14.
https://www.medigraphic.com/pdfs/revcubobsgin/cog-2016/cog161e.pdf
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