El documento describe diferentes especies de micobacterias, incluyendo Mycobacterium tuberculosis, el agente causal de la tuberculosis. Discute su morfología, características de crecimiento y factores epidemiológicos. También resume los principales métodos de diagnóstico como pruebas cutáneas, microscopía, cultivos y pruebas bioquímicas para identificar micobacterias.
musculos y partes del tronco clase de medicina.pdf
Micobacterias: Características y diagnóstico
1.
2. Mycobacterium tuberculosis
Mycobacterium bovis (99,95 %)
Bacilo de Calmette-Guerin o BCG
Mycobacterium africanum (subtipos I y II)
Mycobacterium microti. (roedores)
Homogeneidad en la secuencia de nucleótidos
Variaciones en cuanto a poder patógeno,
distribución geográficas, epidemiología, hospedador
preferente, características fenotípicas.
3. Morfología variable (bacilar o cocoide)
Bacterias
Inmóviles, no poseen flagelos ni cápsula
No forman esporas
En algunos casos forman filamentos ramificados
Poseen una pared celular gruesa con alto contenido lipídico
Requieren de una fuente de carbono (glicerol) y nitrógeno
(amonio o aminoácidos) y sales minerales
Temperatura óptima de crecimiento 35-37°C
Resistentes a ácidos, álcalis, desinfectantes químicos, desecación y congelación
Sensibles a la luz solar, pasteurización, formaldehído, glutaraldehído, fenol, etanol
al 70%
4. Epidemiología
Agente causal de la tuberculosis
El ser humano es el único reservorio natural
Segunda causa de muerte después del HIV.
Se transmite por contacto directo con una
persona infectada mediante aerosoles, micro
lesiones cutáneas, vía gastrointestinal.
Según la OMS una tercera parte de la población
mundial presenta infección por M. tuberculosis
Distribución mundial, especial importancia en
países no desarrollados
Mayor incidencia en África, Sudeste Asiático y
Europa del Este
5. Epidemiología
Factores que influye en el contagio con un paciente bacilífero:
a) La capacidad contagiante del paciente, relacionada con la cantidad de
bacilos presentes en el esputo, la intensidad y la frecuencia de la tos, la
existencia de cavitación en la radiografía del tórax.
b) Grado de intimidad y duración de la exposición. Hacinamiento
6. Epidemiología
Población de riesgo:
Personas sin viviendas
Alcohólicos
Drogadictos
Reclusos
Individuos infectados por HIV
Profesionales sanitarios
12. Manifestaciones clínicas
La tuberculosis tiene un comienzo insidioso.
Síntomas inespecíficos como malestar general,
adelgazamiento, tos y sudoración nocturna
El esputo puede ser escaso o
hemoptísico y purulento
Tuberculosis extrapulmonar por resultado de la diseminación hematógena
13. Manifestaciones clínicas
Tuberculosis pulmonar y torácica
Síntomas: tos, expectoración, en ocasiones
hemoptoica, dolor torácico, fiebre, sudoración,
astenia, anorexia y pérdida de peso, disnea.
TB pleural: Dolor torácico, disnea, fiebre. Derrame pleural
TB ganglionar: Más frecuente en niños
TB endobronquial: Lesiones localizadas, perforación bronquial
TB pericárdico: Derrame pericárdico. Insidiosa
14. Manifestaciones clínicas
Tuberculosis extratorácica
Menos frecuente
Pérdida de peso más habitual
Mayor predisposición en pacientes HIV,
inmunosuprimidos, mujeres raza no caucásica
Puede coexistir con TB pulmonar
15. TB del sistema nervioso central
Por diseminación hematógena
Meningitis tuberculosa
Fatal sin tratamiento
Síntomas de inicio inespecífico (astenia, anorexia, cefalea)
Otras formas de TB en el sistema nervioso central: Los
tuberculomas, abscesos cerebrales, la hidrocefalia con
hipertensión intracraneal y los infartos isquémicos
TB osteoarticular
La localización vertebral es la más frecuente
De evolución lenta, sintomatología inespecífica
Artritis tuberculosa
Manifestaciones clínicas
Tuberculosis extratorácica
16. TB urinaria
Por diseminación hematógena
Síntomas: polaquiuria, disuria y hematuria
Fibrosis, hidronefrosis
TB genital
Se asocia con TB del tracto urinario
En el hombre la localización prostática se manifiesta
en forma de molestias locales, polaquiuria, urgencia
miccional o hematospermia. Fístula escrotal
En las mujeres se localiza en las trompas de falopio y
endometrio. Causa infertilidad
Manifestaciones clínicas
Tuberculosis extratorácica
17. TB ganglionar
Por diseminación hemática o linfática
Ganglios linfáticos cervicales y supraclavicular
TB miliar
Diseminación hematógena a
múltiples órganos
Cuadro clínico variable
Puede asociarse con meningitis
tuberculosa
Aguda y crónica
Anomalías hematológicas
TB laríngea
Es altamente contagiosa, se asocia a TB pulmonar
TB cutánea
TB gastrointestinal
Manifestaciones clínicas
Tuberculosis extratorácica
18. Diagnóstico
1. Indicios radiológicos de enfermedad pulmonar
2. Resultados positivos de la prueba de reactividad cutánea
3. Detección en el laboratorio de micobacterias al
microscopio o en el cultivo
19. En adulto las 3 características mas importantes son:
Anormalidad en el vértice
posterior de un lóbulo
pulmonar
Infiltrado homogéneo en el
vértice posterior de un lóbulo
pulmonar
Diseminación
broncógena
Diagnóstico
Signos radiológicos
20. Método estándar utilizado para determinar si una persona esta
infectada por Mycobacterium tuberculosis
Koch obtuvo por filtración durante 6 semanas un liquido negruzco
y espeso o ( tuberculina vieja )
Derivado proteico purificado de Seibert (PPD-S) material
preferido para la prueba cutánea. Técnica de Mantoux
Prueba de la Tuberculina (PPD)
21. Se inyecta 0,1 ml de
tuberculina en el
antebrazo
La reacción debe revisarse
entre las 48-72 horas
Resultados
6 a 10 mm +
5 mm (dudosa)
4 mm negativo
Si forma induración de 10
mm o mas de diámetro es
positivo
Prueba de la Tuberculina (PPD)
Falsos positivos:
Vacunación previa con BCG
Infección por micobacterias no tuberculosa
Interpretación incorrecta de la reacción
La utilización de un antígeno equivocado
Falsos negativos:
Anergia cutánea
Infección de tuberculosis reciente
Vacunación reciente con un virus vivo
Tratamiento con drogas inmunodepresoras
22. Una induración de 6 mm o mas se considera positiva:
Personas infectadas por VIH
Contacto reciente con otra persona enferma de tuberculosis
Personas inmunodeprimidas
Una induración de 10 mm o mas se considera positiva:
Usuarios de drogas inyectable
Bebes, niños y adolecentes expuestos a adultos que
pertenezcan a grupo de alto riesgo
Personal de salud
Prueba de la Tuberculina (PPD)
23. Prueba de la Tuberculina (PPD)
Se debe tener en cuenta:
Se hace positiva a las 4 a 6 semanas del comienzo
de la infección, es positiva para toda la vida
Puede transmitirse de una persona tuberculina
positiva a tuberculina negativa
La vacuna BCG produce el viraje tuberculínico y esta
positividad se mantiene entre 4 a 8 años
26. • Evitar el uso de las torundas o hisopos
• La muestra debe enviarse sin fijadores ni conservantes
• Las muestras se deben recoger en contenedores estériles
• Procesamiento inmediato, de lo contrario refrigerar
• Utilización de medios de descontaminación ( si la muestra lo requiere)
• Utilización de cabinas de bioseguridad
Muestra
27. Muestras respiratorias
Esputo
Debe recogerse en la mañana
En ayunas
3 días consecutivos (5-10 ml)
Muestras por técnicas
broncoscópicas
Enviar 5ml para su estudio
Procesar lo antes posible
Biopsias respiratorias 1 gr. De tejido
Recolección de muestras
28. Líquidos estériles Recoger el mayor volumen posible (10-15 ml)
Líquido articular debe recogerse en tubo con
anticoagulante
No necesitan ser descontaminadas antes del cultivo
Tejidos
Enviar al laboratorio con suero fisológico o medio
líquido 7H9 de Middlebrook
Nunca utilizar formol
Recolección de muestras
29. Orina
Primera hora de la mañana
Micción espontánea, sonda, punción suprapúbica
3 a 5 muestras de orina en días consecutivos
Mismas precauciones que en cualquier urocultivo
Recolección de muestras
31. Examinar el frotis en objetivo de inmersión e informar:
Observación microscópica Informe
No se observaron BAR en 100 campos observados Negativo
Menos de 1 BAR x C. en 100 campos observados +
De 1 a 10 BAR x C. en 50 campos observados ++
Más de 10 BAR x C. en 20 campos observados +++
Al examinar el extendido, si se consiguen de 1 a 4 bacilos
en 100 campos, leer otros 100. si persiste este número,
informar y solicitar otra muestra
32. Los microorganismos ácido-alcohol resistentes emiten una
fluorescencia amarilla brillante cuando se activan con luz ultravioleta
de onda corta. La coloración de contraste con permanganato de
potasio hace que el fondo de detritos inespecíficos emitan
fluorescencia de color amarillo pálido, que contrasta con el aspecto
amarillo brillante de los bacilos ácido-alcohol resistentes.
33. Número de bacilos Informe
Cero No se observan BAR
1-2 en todo el frotis Informar la cantidad observada y solicitar la
repetición
1-9 cada 10 campos Escasos o 1 +
1-9 por campo Pocos o 2+
10-90 por campo Abundantes o 3+
>90 por campo 4+
La American Lung Association recomienda el siguiente método para las coloraciones con fucsina,
aplicables también a las coloraciones fluorescentes:
34. Cultivo de muestras
Medios de Cohen y de Middlebrook
Permite la detección del crecimiento luego de 10 a 12 días
Incluye biotina y catalasa para estimular el aislamiento de los bacilos
Contiene albúmina, verde de malaquita, base de huevo
36. • LOWENSTEIN –JENSEN
COLONIAS DE MICOBACTERIUM TUBERCULOSIS DESPUÉS
DE 8 SEMANAS DE INCUBACIÓN
COLONIAS RUGOSAS
COLOR CREMA SECAS IRREGULARES
Cultivo de muestras
37. Identificación mediante métodos convencionales
Temperatura óptima para el crecimiento y velocidad de
crecimiento
Producción de pigmento
Acumulación de niacina
Reducción de nitratos a nitritos
Hidrólisis de Tween 80°
Actividad de catalasa
Actividad de arilsulatasa
Actividad de ureasa
Pirazinamidasa
Captación de hierro
Inhibición del crecimiento por la hidrazida del ácido
tiofeno-2-carboxílico
Crecimiento en cloruro de sodio al 5 %
Crecimiento en agar MacConkey
Cultivo de muestras
38. MICROORGANISMO NIACINA NITRATO CATALASA TWEEN-80 CAPTACIÓN DE HIERRO ARILSULFATASA UREA
M . TUBERCULOSIS
+ + - V - V
M. KANSASII
- + + + - +
M. AVIUM
- - V - - -
M. FORTUITUM
- + + V + + +
M. CHELONAE V
- V V - + +
V =VARIABLE
Pruebas bioquímicas
39. • SONDA GENÉTICAS (PCR)
• CULTIVOS RADIOMÉTRICO BACTED TB
MÉTODO ESPECIFICO RÁPIDO SENSIBLE PARA
IDENTIFICAR MICOBACTERIAS
Contiene Middlebrook 7H12
Con antibiótico , las micobacterias metabolizan
el sustrato (acido palmítico) y liberan CO2
Avances en la identificación de micobacterias
Notas del editor
Simc, Murray, paper micobacteria texto
Murray y Mandell, paper micobacteria texto
Seimc m tuberculosis. Leer Mandell
Los convivientes con pacientes bacilíferos tienen un mayor riesgo a infectarse que las personas con relación esporádica o casual.
Murray y mandell
Paper microbiología texto
Paper microbiología texto
Seimc tuberculosis
Seimc m tuberculosis
Luego leer tuberculosis miliar del mandell
3186.
Mandell TB miliar 3187
PPD derivado proteico purificado(Purified Protein Derivate) se obtiene al precipitar proteínas de M. tuberculosis con ácido tricloroacético o con sulfato de amonio de un filtrado de cultivo en medio sintético esterilizado y concentrado.
Coloración fluorescente: Auramina O; Auramina-rodamina.
Principio.
Los microorganismos ácido-alcohol resistentes emiten una fluorescencia amarilla brillante cuando se activan con luz ultravioleta de onda corta. La coloración de contraste con permanganato de potasio hace que el fondo de detritos inespecíficos emitan fluorescencia de color amarillo pálido, que contrasta con el aspecto amarillo brillante de los bacilos ácido-alcohol resistentes.
Muestra.
Los frotis se preparan directamente del material clínico o de una suspensión de microorganismos provenientes de colonias desarrolladas en un medio de cultivo primario.
En cada serie de coloraciones se incluye un frotis control positivo y uno negativo para micobacterias. Los frotis control se observan antes de leer el frotis del paciente, para confirmar que el control positivo contiene micobacterias fluorescentes y que el negativo no tiene células fluorescentes.
Limitaciones del procedimiento.
Otros microorganismos distintos de las micobacterias, como las especies de Rhodococcus y de Nocardia, Legionella micdadei y los quistes de Cryptosporidium y de especies de Isospora pueden tener grados variables de ácido-alcohol resistencia. A menudo esto puede ser sugerido por diferencias en la morfología.
La mayoría de las especies no emiten fluorescencia en los frotis coloreados con fluorocromos y se recomienda un procedimiento con carbolfucsina.
La American Lung Association recomienda el siguiente método para las coloraciones con fucsina, aplicables también a las coloraciones fluorescentes:
Número de bacilos.
1. 0
2. 1-2 en todo el frotis
3. 1-9 cada 10 campos
4. 1-9 por campo
5. 10-90 por campo
6. >90 por campo
Informe.
1. No se observan BAAR
2. Informar la cantidad observada y solicitar la repetición.
3. Escasos o 1 +
4. Pocos o 2+
5. Abundantes o 3+
6. 4+