Practicas toxico

“Nada es veneno, todo es veneno: la diferencia está en la dosis” - Paracelso
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD
LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA
NÚMERO DE PRÁCTICA: BF.8.01-3
NOMBRE DE LA PRÁCTICA: INTOXICACIÓN POR MERCURIO
1. DATOS INFORMATIVOS:
CARRERA: Bioquímica y Farmacia
CICLO/NIVEL: Octavo Semestre “A”
DOCENTE RESPONSABLE: Bioq. Carlos García MSc.
ESTUDIANTE: Javier Eduardo Ramón Caraguay
GRUPO N°: 1
2. FUNDAMENTACIÓN:
Es un metal noble, soluble únicamente en solución oxidante. El mercurio
solido es tan suave como el plomo. El metal y sus componentes son muy
tóxicos. El mercurio forma soluciones llamadas amalgamas con algunos
metales (por ejemplo: Au, Ag, Pt, U, Cu, Pb, Na y K).
El mercurio es un elemento que puede ser encontrado de forma natural en el
medio ambiente. Puede ser encontrada en forma de metal, como sales de
mercurio o como mercurio orgánico.
La dosis letal de mercurio inorgánico es de 1 gramo, aunque hay evidencias
de toxicidad con valores de 50 a 100 mg. La dosis letal del mercurio orgánico
es dos a tres veces mayor.
Aparte del estado natural, existe un importante aporte antropogénico
proveniente de su metalurgia, de sus aplicaciones en industrias diversas y de
las aguas residuales de las ciudades. Se calcula que cada año mil toneladas
son liberadas desde redes de alcantarillado a la superficie de la tierra. La
producción de mercurio se cuantifica en unidades llamadas frascos (por el

frasco estándar usado en esta industria, que es de hierro y que sirve de
medida: 2,5 litros y 34,5 kg de peso). (Ramírez , 2014)
3. OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de mercurio
en el destilado de las vísceras de pescado.
4. MATERIALES E INSUMOS:
5. PROCEDIMIENTO:
# ACTIVIDADES OBSERVACIONES
5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo
más finas posibles las vísceras de pescado en un
vaso de precipitación.
 Usar siempre el
equipo de
MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Balanza
 Cloruro de Estaño
 Yoduro de Potasio
 Di Fenil Tio
Carbazona
 Di Fenil Carbazisa
 Amoniaco
 HCl
 Clorato de Potasio
 Pirita
 Viseras de
Pescado
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Papel filtro
 Campana  Nitrato de Mercurio

5.2 Diluir 10g de nitrato de mercurio. Con agua libre
de CO2 (hervir y dejar enfriar hasta 20°C.)
protección mandil
de laboratorio,
gorro, mascarilla,
guantes para
minimizar algún
tipo de accidente
que ponga en
riesgo nuestra
salud.
 Utilizar la campana
de gases.
5.3 Verter las vísceras en un balón de destilación y
agregar 10 mL de HCl. Luego mezclar con la
solución de nitrato de mercurio
5.4 La solución anterior se mezcla con 4g de Clorato
de potasio.
5.5 Filtrar.
5.6 Con aproximadamente 15 mL del destilado
recogido (muestra) realizar las reacciones de
reconocimientos en medios biológicos.
5.7 1.-Con el Cloruro Estañoso: al agregar una
pequeña cantidad del reactivo a una porción de la
muestra, en caso positivo se debe producir un
precipitado blanco de cloruro mercurioso o
calomel o un precipitado negro de Hg metálico.
5.8 2.-Con el Yoduro de Potasio: al reaccionar una
muestra que contenga Hg, frente al KI, se produce
un precipitado rojo, anaranjado o amarillo (de
acuerdo a la concentración del toxico) de yoduro
mercúrico.
5.9 3.-Con la Difenil Tio Carbazona: es una reacción
muy sencilla para reconocer el Hg; (el reactivo se
prepara con 0.012 gr de ditizona disuelta en 1000
ml de Cl4C) se mide un poco demuestra y se
añaden algunas gotas de reactivo con el cual
debe producir un color anaranjado en caso (+), si
es necesario se puede calentar ligeramente la
mezcla.
5.10 4.-Con la Difenil Tio Carbazida: en medio
alcohólico, la difenil carbazida reacciona con el
mercurio un color violeta o rojo violeta.

5.11 5.-Con Amoniaco: si al añadir la solución de NH3
sobre el precipitado este se ennegrece, es señal
suficiente para la existencia del mercurio.
5.12 6.-Con el Sulfuro de Hidrogeno, se mezcla la
pirita con el HCL. en un quitasato se acopla una
manguera y se hace reaccionar hasta que salga el
gas de sulfuro de Hidrogeno que reaccionara con
la solución madre si es positiva produce un
precipitado de color negro mercúrico
de gases.
6. CUADRO DE RESULTADOS:
N REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO
1
Cloruro
Estannoso
Coloración
blanco se
origina
precipitado
Positivo
Característico
2
Yoduro de
Potasio
Rojo, naranja o
amarillo
Positivo
Característico
3
Difenil tio
carbazona
naranja
Positivo no
Característico

4
Difenil
carbazida
Violeta
Positivo no
Característico
5
Con
Amoniaco
Negro
(precipitado)
Negativo
6
Sulfuro de
Hidrogeno
negro
Positivo no
característico
7. CONCLUSIONES:
Se logró determinar mediante diversas reacciones colorimétricas la presencia o
ausencia de mercurio en una muestra de pescado ya que su mayor
concentración contaminante se encuentra en los productos del mar. Durante la
resolución de la práctica se pudo evidenciar cada una de las coloraciones que
poseían las reacciones las cuales eran significativas de presencia de mercurio,
sin embargo en una de ellas encontramos resultados negativos, mismos que
tomaron por sorpresa a toda la audiencia.

8. RECOMENDACIONES:
 Utilizar debidamente los implementos de bioseguridad ya que permiten
preservar la calidad de vida del practicante.
 Se recomienda antes del manejo de reactivos conocer sus propiedades para
poder evitar cualquier tipo de contacto e intoxicaciones posteriores.
9. BIBLIOGRAFÍA:
 Ramírez , A. (2014). Intoxicación ocupacional por mercurio. Revista
Anales, 69(1), 46-51. Recuperado el 28 de Junio de 2019, de
http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1025-
55832008000100010
ANEXOS:

_____________________________
Javier Eduardo Ramón Caraguay
0705675874

NOMBRE DE LA PRÁCTICA: INTOXICACIÓN POR COBRE
10.DATOS INFORMATIVOS:
GRUPO N°: 1
11.FUNDAMENTACIÓN:
El Cobre es una substancia muy común que ocurre naturalmente y se
extiende a través del ambiente a través de fenómenos naturales, la gente que
vive en casas que todavía tiene tuberías de cobre están expuestas a más
altos niveles de Cobre que la mayoría de la gente, porque el Cobre es
liberado en sus aguas a través de la corrosión de las tuberías.
Exposiciones de largo periodo al cobre pueden irritar la nariz, la boca y los
ojos y causar dolor de cabeza, de estómago, mareos, vómitos y diarreas. Una
toma grande de cobre puede causar daño al hígado y los riñones e incluso la
muerte. Si el Cobre es cancerígeno no ha sido determinado aún.
La EPA (Enviromental Protecion Agency), requiere que el agua potable no
contenga más de 1.3 miligramos de cobre por litro de agua (1.3mg/L). El
ministerio de agricultura de los EE.UU recomienda (una dosis diaria de 900
microgramos de cobre (900 ug/dia) para personas mayores de 80 años de
edad.

La administración de Salud y Seguridad Ocupacional (OSHA) ha establecido
un límite para vapores de cobre en el aire de 0.1 miligramo por metro cubico
(0.1mg/m3) y 1 mg/m3 para polvos de cobre.
La concentración de cobre en la corteza terrestre se encuentra entre 20-30mg
de cobre por kg de suelo pero en suelos de diferentes partes del mundo el
nivel de cobre se eleva a más de 50mg·kg‑1 debido a la actividad minera, la
industria petrolera, al uso de aguas residuales sin tratamiento para el riego
de suelos agrícolas y al uso de fungicidas en la agricultura. (Léon &
Sepúlveda , 2014)
12.OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Cobre en
el destilado de las vísceras de pollo.
13.MATERIALES E INSUMOS:
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de
Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Papel filtro
 Cocineta  Ferrocianuro de
potasio
 Ácido acético
 Cuprón
 Amoniaco
 Sales de cobre
 Clorato de Potasio
 HCl
 Sulfato cúprico
 Viseras de
Pollo
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Balanza
 Campana
 Hidróxido de
amonio
 Cianuros Alcalinos
 Hidróxido de sodio
 Yoduro de Potasio

14.PROCEDIMIENTO:
más finas posibles las vísceras de pollo en un
vaso de precipitación.
Usar siempre el
equipo de protección
mandil de laboratorio,
gorro, mascarilla,
guantes para
minimizar algún tipo
de accidente
que ponga en riesgo
nuestra salud.
Utilizar la campana de
gases.
5.2 Disolver 10g de sulfato cúprico en agua
5.3 Verter las vísceras en un vaso de precipitación y
agregar 20mL de HCl, luego mezclar con la
solución de sulfato cúprico
5.4 recoger la mezcla de la sustancia madre en 4g de
Clorato de potasio.
5.5 Filtrar.
5.6 Con aproximadamente 15 mL del filtrado recogido
(muestra) realizar las reacciones de
5.7 1.- Con el Ferrocianuro de Potasio: En un medio
acidificado con ácido acético, el cobre reacciona
dando un precipitado rojo oscuro de ferrocianuro
cúprico, insoluble en ácidos diluidos, soluble en
amoniaco dando color azul.
5.8 2.-Con el Amoniaco: La solución muestra tratada
con amoniaco, forma primero un precipitado verde
claro pulverulento que al agregarle un exceso de
reactivo se disuelve fácilmente dando un hermoso
color azul por formación de un compuesto cupro-
amónico.
5.9
3.-Con el Cuprón: En solución alcohólica al 1 % al
que se le adiciona gotas de amoniaco, las sales de
cobre reaccionan produciendo un precipitado verde
insoluble en agua, amoniaco diluido, alcohol, ácido
alcohólica al 1 %
proporcionado por el
docente.

acético, soluble en ácidos diluidos y poco solubles
en amoniaco concentrado.
5.10
4.-Con el Yoduro de Potasio: Adicionando a la
solución muestra gota a gota, primeramente, se
forma un precipitado blando que luego se
transforma a pardo-verdoso o amarillo.
5.11
5.-Con los cianuros alcalinos: A una pequeña
cantidad de muestra se agregan unos pocos
cristales de cianuro de sodio formando un
precipitado verde de cianuro de cobre, a este
precipitado le agregamos exceso de cianuro de
sodio y observamos que se disuelve por formación
de un complejo de color verde-café.
5.12
6.-Con el Hidróxido de Sodio: A 1ml de solución
muestra, agregamos algunas gotas de NaOH, con
lo cual en caso de ser positivo se debe formar un
precipitado color azul pegajoso por formación de
Cu(OH)2. Este precipitado es soluble en ácidos
minerales y en álcalis concentrados.
15.CUADRO DE RESULTADOS:
1
Ferrocianuro
de Potasio
Precipitado rojo
Positivo
Característico

2 Amoniaco Precipitado azul
Positivo
Característico
3 Cuprón
Precipitado
verde
Positivo
Característico
4
Yoduro de
Potasio
Precipitado
amarillo
Positivo
Característico
5
Cianuros
Alcalinos
Precipitado
verde-cafe
Positivo
Característico

6
Hidróxido de
Sodio
Precipitado
azul-pegajoso
Positivo
característico
16.CONCLUSIONES:
Se logró determinar la presencia de cobre en la muestra problema gracias a las
reacciones de reconocimiento. Este tipo de reacciones utilizan métodos
cualitativas colorimétricos que permiten visualizar por diferencia de colores la
presencia de cobre en una muestra.
17.RECOMENDACIONES:
18.BIBLIOGRAFÍA:
 Léon , J., & Sepúlveda , G. (2014). EL DAÑO POR OXIDACIÓN
CAUSADO POR COBRE Y LA RESPUESTA ANTIOXIDANTE DE LAS
PLANTAS. Interciencia, 37(11), 805 - 811. Recuperado el 05 de Julio de
2019, de https://www.redalyc.org/pdf/339/33925550003.pdf
 Las referencias bibliográficas según las normas de APA:
https://www.um.es/documents/378246/2964900/Normas+APA+Sexta+Ed
ici%C3%B3n.pdf/27f8511d-95b6-4096-8d3e-f8492f61c6dc

ANEXOS:
Con el Ferrocianuro de Potasio Con el Amoniaco
Con el Cuprón Con el Yoduro de Potasio
Con los cianuros alcalinos Con el Hidróxido de Amonio
Con el Hidróxido de Sodio Con el IK

NOMBRE DE LA PRÁCTICA: INTOXICACIÓN POR ZINC
GRUPO N°: 1
20.FUNDAMENTACIÓN:
Una intoxicación aguda por este metal de origen profesional es la llamada
fiebre de los fundidores, que se observa al fundir y verter el zinc y sus
aleaciones, sobre todo del latón (zinc más cobre); el zinc al ser fundido, arde
en el aire y se convierte en óxido de zinc, el cual el ser inhalado en forma de
niebla blanca, produce la enfermedad. En algunos trabajadores produce
hábito, en cambio en otros ocasiona hipersensibilidad creciente hacia esos
vapores.
En medicina el óxido de zinc ha producido intoxicaciones cuando se lo
emplea en polvos, pomadas y pastas cuando son resorbidos en cantidades
toxicas por la superficie de grandes heridas o al través de la piel inflamada,
el sulfato de zinc cuando se lo emplea como astringente contra la conjuntivitis
y la gonorrea; el cloruro de zinc cuando se lo utiliza en ginecología como
caustico en solución concentrada (50%) aplicadas en el útero han producido
intoxicaciones mortales por resorción, caracterizadas por un cuadro de
gastroenteritis y lesiones renales, vasculares y cardiacas.

El zinc abunda en muchos tipos de alimento, particularmente en mariscos,
algunos frutos secos y diversas carnes (res, cerdo, cordero, pato). En cambio
son relativamente pobres los vegetales, algunos peces como el salmón o el
atún, e incluso ciertas carnes como la pechuga o el hígado de pollo. Por eso
es difícil contraer un déficit de zinc si se consume una dieta equilibrada,
aunque es posible lograrlo si se consume una dieta estrictamente vegetariana
o si la única carne que se ingiere es la de pollo. Aun así, las manifestaciones
del déficit de zinc nunca serían completas, aunque pueden afectar al sistema
inmune. La cantidad de calcio en la dieta, y varios productos vegetales como
fibra o fitatos inhiben la absorción de zinc. (Martin, Falcón, Hernández, Reyes,
Jiménez, Martínez, Martin, Romero & Gonzales, 2016)
21.OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Zinc en
el destilado de las vísceras de pollo.
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de
Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Papel filtro
 Balanza  NaOH
 Sales Amoniacales
 Ferrocianuro de
potasio
 Sulfuro de amonio
 HCl
 Clorato de potasio
 Cloruro de Zinc
 Pirita
 Viseras de
Pollo
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Campana  Hidróxido de Sodio

23.PROCEDIMIENTO:
5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más
finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de
precipitación.
 Usar siempre el
equipo de
protección mandil
de laboratorio,
gorro, mascarilla,
guantes para
minimizar algún
tipo de accidente
que ponga en
riesgo nuestra
salud.
de gases.
5.2 Disolver 10g de cloruro de zinc en agua
5.3 Verter las vísceras en un vaso de prescipitación y
agregar 20mL de HCl.
5.4 Mezclar de las soluciones anteriores en 4g de
Clorato de potasio.
5.5 Filtrar.
5.7 1.-Con Hidróxidos Alcalinos: Origina un precipitado
blanco gelatinoso de hidróxido de zinc, soluble en
exceso de reactivo por formación de zincatos.
5.8 2.-Con el Amoniaco: Da al reaccionar un
precipitado blanco de hidróxido de zinc, soluble en
exceso de amoniaco y en las sales amoniacales,
con formación de sales complejas zinc
amoniacales.
5.9 3.-Con el Ferrocianuro de Potasio: El zinc
reacciona dando un precipitado blanco coposo de
ferrocianuro de zinc, soluble en hidróxido de
potasio y en exceso de reactivo, insoluble en los
ácidos y en las sales amoniacales.
5.10 4.-Con el Yoduro de Potasio: Adicionando a la
solución muestra gota a gota, primeramente, se
forma un precipitado blando que luego se
transforma a pardo-verdoso o amarillo.

5.11 5.-Con el sulfuro de amonio: - En solución neutra o
alcalina produce un precipitado blanco de sulfuro
de zinc, soluble en ácidos minerales, en insoluble
en ácido acético.
5.12 6.-Con el sulfuro de Hidrogeno: - En medio alcalino
o adicionando a la muestra solución saturada de
acetato de sodio da un precipitado blanco
pulverulento de sulfuro de zinc
1
Hidróxidos
Alcalinos
Precipitado
blanco
gelatinoso
Positivo
Característico
2 Amoniaco
Precipitado
blanco
Positivo no
Característico
3
Ferrocianuro
de Potasio
Precipitado
blanco coposo
Positivo
Característico

4
Yoduro de
Potasio
Precipitado
verdoso o
amarillo
Positivo
Característico
5
Sulfuro de
Amonio
Precipitado
blanco
negativo
6
Sulfuro de
Hidrogeno
Precipitado
blanco
Positivo
característico
25.CONCLUSIONES:
La práctica a desarrollar tal y como se indica en el apartado de procedimiento se
realiza mediante un destilado previamente preparado con vísceras de pollo, en
donde se toman diferentes alícuotas para cada una de las reacciones. En este
caso se pudo constatar que en comparación a la práctica anterior obtuvimos un
resultado al que se consideró negativo ya que no se evidencia reacción alguna
al mezclar la alícuota del destilado con el reactivo. No obstante, consideramos a
la práctica exitosa ya que fuera de ello se pudo evidenciar cada una de las
coloraciones correspondientes en los reactivos analizados
26.RECOMENDACIONES:

27.BIBLIOGRAFÍA:
 Martin Navarro Loreto, Falcón Roca Rocío, Hernández García María,
Reyes Suárez Paula, Jiménez Cabrera Iballa, Martínez Martínez Daniel,
Martín Gonzáles Candelaria, Romero Acevedo Lucia & Gonzáles Reimers
Emilio. Intoxicación por zinc. Majorensis. 12. 2016. 36-40
ANEXOS:
CON HIDROXIDOS CON AMONIACO CON FERROCIANURO
ALCALINOS DE POTASIO
CON SULFURO DE AMONIO

Procedimiento 1. Reacción de Hidróxidos Alcalinos
_____________________________
0705675874

NOMBRE DE LA PRÁCTICA: INTOXICACIÓN POR ÁCIDO NÍTRICO
GRUPO N°: 1
29.FUNDAMENTACIÓN:
El Ácido Nítrico es uno de los más fuertes desde el punto de vista iónico. Pero lo
que lo caracteriza químicamente es su energía de acción oxidante. La misma se
manifiesta sobre casi todos los metales excepto por el oro y el platino, ciertas
sales, sustancias orgánicas y en general sobre toda sustancia capaz de oxidarse.
Así, una astilla de madera con un punto de ignición, al contacto con este acido,
sigue ardiendo con formación de CO2 y vapores rutilantes. Este acido es toxico,
muy corrosivo, mancha la piel de amarillo y destruye las mucosas.
Su acción oxidante se intensifica cuando tiene disuelto peróxido de nitrógeno
que actúa como catalizador, por eso el ácido más energético es el ácido nítrico
rojo o fumante.
El Ácido Nítrico no es una sustancia de uso doméstico, solo se emplea a nivel
industrial y en laboratorios y por tanto estos son los lugares donde existe mayor
riesgo de exposición en niveles peligrosos para la salud de una manera aguda.
La fuente de exposición al Ácido Nítrico en el aire obedece a que éste desprende
humos tóxicos aun a temperatura ambiente; estos humos corresponden
principalmente a óxido nítrico y Dióxido de Nitrógeno. La contaminación del aire
con los humos del ácido se da de manera rápida y puede alcanzar niveles
peligrosos si la habitación donde se encuentra la sustancia está mal ventilada.

La exposición aguda a humos de Ácido Nítrico provoca de manera inmediata
irritación nasal, inflamación del tracto respiratorio, sensación de ahogo, laringitis
y dolor en el pecho. Junto con estos efectos se puede presentar sangrado de las
encías y de la nariz, ulceración de la mucosa nasal y oral, edema pulmonar,
bronquitis crónica y neumonía. (Gómez, 2014)
30.OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Ácido
Nítrico en el destilado de las vísceras de pollo.
32.PROCEDIMIENTO:
más finas posibles las vísceras de pollo en un
vaso de precipitación, agregar 5 ml de agua y 10
ml de ácido Nítrico poco a poco dejar reposar por
15 minutos.
 Usar siempre el
equipo de
protección mandil
de laboratorio,
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Balanza
 Campana
 Papel rojo congo
 Solución alcohólica
de violeta de metilo
 Reactivo de
Gunzburg
 -Brusina
 Anilina
 Sulfato ferroso
 Fenol
 Ácido Nítrico
 Viseras de
Pollo

5.2 Filtrar. gorro, mascarilla,
guantes para
minimizar algún
tipo de accidente
que ponga en
riesgo nuestra
salud.
reconocimientos en medios biológicos repartir 1
mL. Por cada Rx de reconocimiento la sustancia
Madre
5.4 1.- ROJO CONGO: al hacer reaccionar un papel
embebido con rojo Congo, este se colorea de azul
en caso positivo
5.5 2.- NARANJA DE METILO: Se trata una porción
del líquido con solución alcohólica de Naranja de
metilo 1:100, produciéndose una coloración azul-
gris-verde ante la presencia de ácidos minerales  Utilizar la campana
de gases.
5.6 3.- BRUSINA: Con la brusina disuelta en el ácido
sulfúrico, se produce un color rojo en caso positivo
5.7 4.-ACIDO SULFURICO: Con la anilina en ácido
sulfúrico toma un color azul en presencia de ácido
nítrico.
5.8 5.-SULFATO FERROSO: Con el sulfato ferroso,
al adicionar a la muestra unas gotas del reactivo y
luego ácido sulfúrico puro, debe dar un color
rosado.
5.9 6.-FENOL: Con el fenol al agregar en ácido
sulfúrico a la muestra acidificada en ácido acético
debe formarse un color amarillo en caso de
encontrarse el ácido nítrico, si al principio se los
agregan gotas de amoniaco, el color amarillo
original, se vuelve más intenso.
5.10 7.-SULFATO DE COBRE: A la solución madre
agregar sulfato de cobre debiendo precipitar

1 Rojo Congo
Azul
Positivo no
Característico
2
Naranja de
Metilo
Azul- Gris-
Verde
Positivo no
Característico
3 Brusina Rojo
Positivo
Característico
4
Acido
Sulfurico
Pardo- verdoso-
amarillo
Positivo
Característico

5
Sulfuro
ferroso
azul
Positivo no
caracteristico
6 Fenol
Precipitado
blanco
Positivo no
característico
7
Sulfato de
cobre
precipitado
Positivo
característico
34.CONCLUSIONES:
La práctica desarrollada tuvo como objetivo la identificación del ácido nítrico en
una muestra de vísceras de pollo, esta identificación se logró gracias a las
diversas reacciones de identificación que por procesos colorimétricos nos
permiten conocer a ciencia cierta la presencia o ausencia de este contaminante.
Para esta práctica no se tuvo ningún problema y todas las reacciones arrojaron
resultados satisfactorios
35.RECOMENDACIONES:

36.BIBLIOGRAFÍA:
 Gómez, R. (2014). Guía de Ácido Nítrico. Recuperado el 20 de Julio de
2019, de
https://www.uab.cat/doc/DOC_RiscosLab13_DF_Guia_us_Acid_Nitric
ANEXOS:
ROJO CONGO
RESULTADO: positivo característico
REACCION NEGATIVA REACCION POSITIVA
ANTES: BLANCO DESPUES: ROJO CONGO
SOLUCION ALCOHOLICA: azul - gris - verde

RESULTADO: positivo no característico(+)
ANTES:AMARILO TRANSPARENTE DESPUES: AZUL
REACCION CON BRUSINA Rojo
RESULTADO: Positivo característico
ANTES: AMARILLO TRANSPARENTE DESPUES: ROJO
ANILINA EN H2SO4
RESULTADO: Positivo característico (Azul)

ANTES: AMARILLO TRANSPARENTE DESPUES: AZUL
SULFATO FERROSO
RESULTADO: Positivo NO característico (Rosado)
ANTES: AMARILLO TRANSPARENTE DESPUES: ROSADO
REACCIÓN CON ACIDO FERULICO
RESULTADO: Positivo característico
ANTES: AMARILLO TRANSPARENTE DESPUES: AMARILLO INTENSO

Reacción de Rojo Congo
_____________________________
Javier Eduardo Ramon Caraguay
0705675874

NOMBRE DE LA PRÁCTICA: INTOXICACIÓN POR HIDRÓXIDO DE SODIO
GRUPO N°: 1
38.FUNDAMENTACIÓN:
Para realizar el reconocimiento de los hidróxidos de sodio y potasio,
se trata el material de investigación con alcohol absoluto que disuelve
los álcalis cáusticos y el amoniaco, más no los carbonatos. Se deja
en contacto por algún tiempo y luego se filtra; después de haber comprobado
la alcalinidad de la solución alcohólica, se destila el alcohol. Si estuviera
presente el amoniaco, este se destila en el alcohol y se lo reconoce fácilmente
con el reactivo de Nessler.
El residuo de la destilación, después que se ha eliminado por completo el
amoniaco, se recoge con agua y en la solución acuosa, se practican las
diferentes reacciones de reconocimiento para cada caso si fuere necesario.
Las propiedades causticas están relacionadas con el pH y la viscosidad, pero
la concentración, el volumen ingerido y el tiempo de contacto condicionan
más directamente la acción corrosiva. Los álcalis corroen los tejidos y se
combinan con las albúminas, formando combinaciones solubles en agua y
saponifican las grasas.

Esta acción ha sido llamada necrosis de licuefacción y conduce a la formación
de escaras blandas, untuosas y translúcidas. Estas escaras carecen del
efecto protector que tienen las de los ácidos, por lo que sus efectos se
extienden en profundidad, lesionando diferentes capas de los órganos
afectados y extendiendo la trombosis vascular y la necrosis. (Gómez, 2018)
39.OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Hidróxido
de sodio en el destilado de las vísceras de pollo.
41.PROCEDIMIENTO:
5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más
finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de
 Alcohol Absoluto,
proporcionado por
el docente.
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Balanza  Cloruro de níquel
 Sales férricas
 Soluciones de
Estaño
 Sales de cadmio
 Alcohol absoluto
 Hidróxido de Sodio
 Viseras de
Pollo
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Campana

precipitación, agregar alcohol absoluto y 5 gr. de
NaOH dejar reposar por 15 minutos.
5.2 Filtrar.  Usar siempre el
equipo de
protección mandil
de laboratorio,
gorro, mascarilla,
guantes para
minimizar algún
tipo de accidente
que ponga en
riesgo nuestra
salud.
5.3 Con aproximadamente 15 mL del destilado recogido
(muestra) realizar las reacciones de
5.4 1.- Si a una pequeña cantidad de reactivo se
adicionan unas gotas de muestra, se produce
primero un precipitado azul debido a la formación
de una sal básica. El exceso de la base, puede
producir hidróxido de cobalto color rosa, el cual es
oxidado por el oxígeno del aire tornándose pardo y
finalmente negro.
5.5 2.-El sodio al agregarle una pequeña porción de
cloruro de níquel, produce un precipitado verde
claro de aspecto gelatinoso de hidróxido de níquel.
de gases.
5.6 3.-Frente a las sales férricas de sodio reacciona
formando un precipitado blanco del hidróxido
correspondiente.
5.7 4.-Igualmente reacciona frente a las soluciones de
estaño, dando precipitados blancos de hidróxido de
estaño.
5.8 5.-Con las sales de cadmio, al agregar unas gotas
de la solución muestra, forma un precipitado blanco
de hidróxido de cadmio.
5.9 6.-Ensayo a la llama, al acercar una cantidad de
muestra contenida en la punta de un lápiz, arde con
llama color amarilla intensa, en caso positivo.

1
Peróxido de
hidrogeno +
Sulfato de
magnesio
Precipitado
marrón
Positivo
Característico
2
Cloruro de
níquel
Precipitado
verde claro
Positivo
Característico
3 Sales ferricas
Precipitado
blanco
Positivo no
Característico
4
Sales de
Estaño
Precipitado
blanco
Positivo
Característico
5
Sales de
Cadmio
Precipitado
blanco
Positivo
caracteristico

6
Ensayo a la
llama
Llama color
amarillo intenso
Positivo
característico
43.CONCLUSIONES:
Se somete una muestra de vísceras de pollo a la exposición a sosa caustica,
luego de ello mediante las reacciones de identificación se logra corroborar
mediante métodos colorimétricos la presencia del mismo. Las reacciones van
desde el uso de compuestos oxigenados, férricos, de estaño, de niquel y
ensayos a llama. Este tipo de pruebas permiten determinar falsos positivos,
positivos característicos y no característicos según corresponda el análisis
observado
44.RECOMENDACIONES:
 Usar obligatoriamente todo el equipo de bioseguridad como la bata de
laboratorio, guantes y mascarilla.
 Conocer cada uno de los procedimientos a realizar antes de ejecutarlos para
evitar accidentes.
 Tener siempre encendida la campana de extracción de gases sobre todo
cuando se trabaje con sustancias volátiles y tóxicas.
 El área de trabajo debe estar siempre despejada para así trabajar con gran
facilidad y evitar accidentes posteriores.
 Al finalizar la práctica se debe dejar lavando y limpiando todos los materiales
utilizados en el desarrollo de la práctica.
45.BIBLIOGRAFÍA:

 Gómez, J. (2018). Intoxicación por Hidróxido de Sodio. 1 - 4. Recuperado
el 27 de Julio de 2019, de
https://issuu.com/joseluisgomezcoello6/docs/clase_n__11__hidroxido_d
e_potasio-_
ANEXOS:
REACTIVO + GOTA DE MUESTRA CLORURO DE NÍQUEL
SALES FÉRRICA SOLUCIONES DE ESTAÑO
SALES DE CADMIO ENSAYO A LA LLAMA

___________________________
0705675874

NOMBRE DE LA PRÁCTICA: DETERMINACIÓN CUALITATIVA DE
GLUCÓSIDOS CIANOGÉNICOS (CN) EN PLANTAS
GRUPO N°: 1
47.FUNDAMENTACIÓN:
El cianuro es una sustancia química de uso industrial, minero como agente
acomplejante de iones metálicos, en la galvanoplastia de electrodeposición de
zinc, oro, cobre y especialmente plata, y de uso en la producción de plásticos de
base acrílica.
El cianuro como especie química como tal, es un anión de representación CN- y
bien puede ser un gas incoloro como el cianuro de hidrógeno (HCN), o el cloruro
de cianógeno (CNCl), o encontrarse en forma de cristales como el cianuro de
sodio (NaCN) o el cianuro de potasio (KCN).
Es potencialmente letal, actuando como tóxico a través de la inhibición del
complejo citocromo oxidasa, y por ende, bloqueando la cadena transportadora
de electrones, sistema central del proceso de respiración celular.
La toxicidad potencial de los glucósidos cianogénicos surge de la degradación
enzimática para producir cianuro de hidrógeno. La información sobre el
metabolismo de los glucósidos cianogénicos está disponible en estudios in vitro,
animales y humanos. En ausencia de enzimas β-glucosidasa del material vegetal
de origen, dos procesos parecen contribuir a la producción de cianuro a partir de
glucósidos cianogénicos; la proporción de la dosis de glucósido que llega al

intestino grueso, donde ocurre la mayor parte de la hidrólisis bacteriana, y la tasa
de hidrólisis de glucósidos cianogénicos a cianohidrina y cianuro. (Cressey &
Reeve, 2019)
48.OBJETIVOS:
Determinar el cianuro presente en una muestra vegetal como en este caso
es la yuca.
50.PROCEDIMIENTO:
5.1 Formar un Electrolito para lo cual colocamos la yuca
cortada en agua
● Alcohol Absoluto,
proporcionado por
el docente.
5.2 Armamos un circuito eléctrico de 110 voltios
conectado a un foco y un polo unir a los extremos
de yuca
● Usar siempre el
equipo de
protección mandil
de laboratorio,
gorro, mascarilla,
5.3 Colocar un pedazo de yuca en un recipiente de
vidrio (cuba hidráulica) para la determinación
● Vasos de
precipitación
● Tubos de
ensayo.
● Agitador
● Cable de
electricidad.
● Foco
● Interruptor
● Aparato
de carga
iónica
● Cloruro de sodio
● Agua destilada
● Alimento de
experimentación
(yuca).

cualitativa de CN en la planta mediante reacción
con la corriente se prendera o no el foco
guantes para
minimizar algún
tipo de accidente
que ponga en
riesgo nuestra
salud.
● Tener precaución
con dejar cables
suelos para evitar
la cogida de
corriente.
DETERMINACION DE CIANURO
CARACTERISTICA PRINCIPAL:
Encendido de luz
GRÁFICO:
RESULTADO: positivo característico
52.CONCLUSIONES:

Se logra determinar la presencia de cianuro en un vegetal mediante técnicas
cualitativas que indican presencia o ausencia del toxico. Esta técnica consistió
en la formación de un circuito eléctrico conectado a una yuca cuyo valor positivo
era característico cuando el circuito conectado a un foco LED encendía. La
práctica se realizó con éxito debido a que al conectar el circuito a la yuca el foco
encendía perfectamente.
53.RECOMENDACIONES:
54.BIBLIOGRAFÍA:
 Cressey, P. & Reeve, J. (2019). Metabolismo de los glucósidos
cianogénicos: una revisión. Toxicología alimentaria y química. 125 (3).
225-232. Recuperado el 08 de Agosto de 2019, de
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S027869151930002X?v
ia%3Dihub

ANEXOS:
1. RESULTADOS OBTENIDOS.
Detección cualitativa de cianuro de hidrogeno
Limpieza de los materiales

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