Descripción de las caracteristicas microbiológicas de dos virus causantes de infecciones respiratorias agudas, asi como la respuesta inmunológica montada contra elos
4. HISTORIA
Los 4 serotipos del virus
parainfluenza humano
(HPIV) se describieron
entre 1956 y 1960
HPIV 1, HPIV2, HPIV3 se
aislaron de niños con
infecciones respiratorias bajas
mientras que HPIV4 se aisló
en infecciones respiratorias
altas
Se identificaron con agentes etiológicos de
Croup (HPIV 1, 2, y 4)
Neumonía y bronquilitis
(HPIV3)
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
5. VIROLOGÍA
Grupo: V (ARNss (-))
Orden: Mononegavirales
Familia: Paramyxovirudae
Genero: Respirovirus y Rubulavirus
Especies: HPIV1 – 4
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
6. VIROLOGÍA
Virus RNA monocatenarios con envoltura
Pertenecientes a la familia Paramixoviridae
• HPIV 1 al HPIV4
4 serotipos de importancia
• HPIV4a y HPIV4b
HPIV4 dividido en dos
HPIV1 y HIPV3 pertenecen al género Respivirus
HPIV2 y HPIV4 pertenecen al género Rubulavirus
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
7. VIROLOGÍA
Virión polimórfico
Diámetros variables
desde 150 – 200 μm
Contienen hebra única de RNA de
14.9 a 17.3 kb
• Codifica 6 proteínas esenciales
• Proteína nucleocápside (NP)
• Fosfoproteína (P)
• Proteína de matriz (M)
• Glicoproteína de fusión (F)
• Hemaglutinina/neuroaminidasa (HN)
• Glucoproteína de la polimerasa de RNA (L)
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
9. VIROLOGÍA
Hemaglutinina/Neuroamindasa (HN) y la glucoproteína de
fusión (F)
• Proteínas de superficie
• Regulan la unión con los residuos de ácido siálico de la célula huésped (HN)
• Y la fusión de la envoltura viral con la membrana del huésped (F)
HN facilita la salida de nuevos viriones al escindir los
residuos de ácido siálico
Proteínas son el principal objetivo de los anticuerpos
neutralizantes
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
10. VIROLOGÍA
Proteína de matriz (M)
Recubre la superficie
interna de la envoltura.
La proteína de la
nucelocápside (NP) une y
envuelve al ARN creando el
patrón para la ARN
polimerasa
Formadas por la
fosfoproteína (P) y la
glucoproteína de la
polimerasa (L)
El gen de la fosfoproteína también codifica proteínas adicionales
variables en cada serotipo
HPIV1 y 3 codifican proteína
C
HPIV2 codifica proteína V
Ambas reducen la actividad
de interferón 1
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
11. Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554Palmenberg A, Parainfluenza viruses. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
REPLICACIÓN
Proteína nucleocápside (NP)
Fosfoproteína (P)
Proteína de matriz (M)
Glicoproteína de fusión (F)
Hemaglutinina/neuroaminidasa (HN)
Glucoproteína de la polimerasa de RNA (L)
12. PATOGÉNESIS
HPIV se une y replica en el epitelio ciliado del tracto
respiratorio superior e inferior
La infección inicia en la nariz y
orofaringe y se disemina al tracto
inferior
Pico de replicación de los 2 – 5
días después de la primoinfección
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
13. PATOGÉNESIS
• Tracto respiratorio superior cuadro gripal
• Laringe y traquea Croup y bronquolitis
• Tracto respiratorio inferior neumonía
La magnitud de la infección correlaciona con la localización
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
14. PATOGÉNESIS
HPIV3 es altamente específico del epitelio ciliado en
la región apical del tracto respiratorio superior
La liberación viral ocurre en el mismo polo celular
No hay transmisión directa entre células
HPIV no son citopáticos
Las respuestas citopáticas observadas secundarias al
daño inmunológico mas que la acción directa viral
Palmenberg A, Parainfluenza viruses. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
20. RESPUESTA INMUNE
IgA secretora se produce al inicio de la infección
• Neutralizante
• Disminuye la gravedad de la infección
Anticuerpos neutralizantes
• Reactividad cruzada entre los serotipos HPIV1 y HPIV4
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
21. RESPUESTA INMUNE
Linfocitos T citotóxicos
• La infección intranasal resulta en un aumento rápido de linfocitos TCD8+ a
nivel pulmonar
Linfocitos T cooperadores
• La actividad de linfocitos TCD4+ no ha sido completamente probada
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–55
22. DIAGNÓSTICO
Cultivo viral
• Estándar de oro
• Se basa en la identificación del efecto
citopático o detección de la
hemadsoción
• Acompañado del uso de anticuerpos
monoclnales fluorecentes
Ensayos de
inmunofluoresencia
• ELISA
• Par antígenos específicos para
HPIV 1 – 3
• Sensibilidad del 63 – 95%
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
23. DIAGNÓSTICO
PCR
•Alta sensibilidad y
especificidad
Serología
• Poco utilizado en la práctica clínica
• Mediante fijación de anticuerpos
• Se requiere 2 muestras,
• fase aguda y en la de convalecencia
• Aumento en los títulos x4
Branche AR; Semin Respir Crit Care Med 2016;37:538–554
25. HISTORIA
Virus RNA distribuidos en humanos, otros mamíferos y aves
Miembros de esta familia se aislaron desde 1930
• Bronquitis en pollos
• Gastroenteritis en cerdos
• Hepatitis y encefalitis en roedores
En los 60’s agrupados por su característica morfológica
• Franja de espiculas, ampliamente distribuidas a lo largo del virión, morfológicamente distintos a otros paramixovirus
• Corona solar coronavirus
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
26. HISTORIA
Hasta el siglo XX se consideraron causantes de causantes
de infecciones gastrointestinales y respiratorios en
animales domésticos y cuadros gripales en humanos
2002
• Surgimiento del SARS provocado por un coronavirus previamente
desconocido
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
29. VIROLOGÍA
Todos los α y β coronavirus tienen huésped
mamífero
δ se ha aislado en aves
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
34. VIROLOGÍA
Proteína S
Las espículas están formadas por trímeros de proteína S
Proteína de fusión clase I
Se une con la célula huésped en las etapas iniciales de la
infección
El monómero de proteína S es una proteína
transmembrana de 128 – 160 kDa
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
35. VIROLOGÍA
Proteína M
Proteína mas abundante
Da la forma al virión
Monómero de 25 – 30 kDa
Proteína embebida en la membrana y formado 3
dominios transmembrana
Funciona como señal de inserción y unión
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
36. VIROLOGÍA
Proteína E
Polipéptido pequeño de 80 – 120 kDa
Poca cantidad en la superficie viral
Indispensable en la virulencia
Proteína de membrana integral
No tiene péptido de señalización
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
37. VIROLOGÍA
Proteína N
En el interior del virión
Constituye por si misma la nucleocápside
Monómero de 43 – 50 kDa
No protege al genoma contra ribonucleasas
2 dominios N y C terminal
Se encuentra flanqueada por segmentos
separadores, el central rico en Serina y Arginina
(SR)
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
38. VIROLOGÍA
Esterasa de hemaglutinina
Solo se encuentra en algunos β – coronavirus
Monómero de 48 kDa
Ectodominio N terminal grande y un endodominio
C terminal pequeño
Forma una serie de proyecciones secundarias de 5
– 10 nm debajo del dosel formado por las espículas
de la proteína S
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
39. VIROLOGÍA
Genoma
De 26 – 32 kb
De 1 – 8 ORF
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
47. PATOGÉNESIS
La mayoría de los coronavirus se transmiten a huéspedes susceptibles
• Respiratorio
• Fecal – Oral
Con las primeras replicaciones en las células epiteliales
Los coronavirus con tropismo del epitelio respiratorio (SARS – CoV) se expanden del epitelio respiratorio
superior al inferior
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
Nat Rev Microbiol. 2016 Aug;14(8):523-34
54. DIAGNÓSTICO
La mayoría de los coronavirus no se diagnostican
• Cuadros leves autolimitados
Puede ser aislados en cultivos virales en células Vero
RT – PCR es de elección
Visión por microscopia electrónica
Nat Rev Microbiol. 2016 Aug;14(8):523-34
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
55. DIAGNÓSTICO
SARS
ELISA de la proteína N
Positiva del 40 – 80% durante la primera semana de la enfermedad
en muestras respiratorias
50% durante la segunda semana en muestras respiratorias y heces
Anticuerpos específicos se detectan
a partir de 14 días de la infección,
Algunos pueden tomar hasta 4
semanas
Nat Rev Microbiol. 2016 Aug;14(8):523-34
Karron RA, Coronaviridae. In Knipe DM, Howley PM (ed), Fields virology, 6th ed,
Notas del editor
Paramixovirus inclyen a sarampión y paperas
La primera etapa en la replicación es la fusión con la membrana de la célula huésped
Expulsión de la nucleocápside al citoplasma
En el citoplasma inicia la trascripción mediante la polimerasa dependiente de ARN
Ribosomas del huésped traducen el ARN viral , a las proteínas virales necesarias para la replicación del RNA viral
Una vez replicado, el RNA se encapsula y puede ser utilizado en una nueva secuencia de transcripción o ser expulsado
Infection of an in vitro model of human airway epithelium by HPIV3. Primary cultures of human airway epithelium,
consisting of pseudostratified mucociliary tissue that closely resembles authentic airway epithelium, were infected with
approximately 3 plaque-forming units (PFU) per cell of recombinant HPIV3 expressing green fluorescent protein (GFP) from an added
gene and were viewed 48 hours postinfection. A and B: GFP expression in cultures that were infected on the (A) apical or (B) basolateral
surface, viewed en face (i.e., from the top) by fluorescence microscopy at low magnification. C and D: Cross sectional images
of infected cultures at higher magnification. C: Fluorescence microscopy reveals GFP-expressing parainfluenza virus 3 (PIV3)–infected
cells, with counterstaining by antibodies against b-tubulin to identify cilia (red). D: Infected cells stained with hematoxylin and eosin,
illustrating the lack of syncytia and cytopathic effects.411 Bar, 20 mm.
Induction of interferon (IFN) and its antagonism by viral proteins. The
Severe acute respiratory síndrome causado por el SARS coronavirus un betacoronavirus
Los nidovirus están envueltos en membrana, no segmentados virus de ARN de cadena positiva que se diferencian de otros ARN virus por ciertas características distintivas. Sus más significativos
las características comunes son (a) una genómica general invariante organización, con un gen de replicasa muy grande aguas arriba del genes de proteínas estructurales; (b) la expresión de la replicasetranscriptasa poliproteína por medio de desplazamiento de marco ribosomal; (c) una colección de actividades enzimáticas únicas contenidas dentro de los productos proteicos de replicasa-transcriptasa; y (d) la expresión de genes aguas abajo a través de la transcripción de múltiples 3’ Anidado ARN mensajeros subgenómicos (ARNm). Éste último propiedad ha proporcionado el nombre de la orden, que viene
del latín nido.
Los coronavirus ahora se clasifican como una de las dos subfamilias (Coronavirinae) en la familia Coronaviridae. La otra subfamilia, Torovirinae, incluye los torovirus, que son patógenos de ganado, caballos y cerdos, y el bainivirus, cuyo único miembro es el único nidovirus actualmente
sabido para infectar peces
Gran ectodominio N – terminal y un pequeño endodominio C – terminal
S1 es muy variable entre los diferentes generos
S2 esta altamente consevado
La estructura que separa el vulvo de la superfice viral es una estuctura enrollada formada por la asociación de las regiones repeditas de heptad (HR1 y HR2, y unidos por el péptido de fusión
Se inserta en el retículo endoplásmico
Proteína moderamente conservada entre los generos de coronavirus
La parte mas variable es el ectodominio
El 3er dominio transmebrana presenta la región mas conservada
La proteína N es una fosfoproteína
La fosforilación generan cambios conformacionales en la proteína que mejoran la afinidad de la proteína por el RNA viral contra el no viral
La función principal de la proteína N es la unción con el RNA viral y se han identificado sitios específicos de unión, que incluyen la secuencia de regulación de transcripción TRS y la señal de empaquetamiento de RNA
Se inserta en el retículo endoplásmico
La hemaglutinina tiene la capacidad de unir residuos de ácido siálico de glucoproteínas y glucolipidos
Tiene actividad acetilesterasa con especificidad sobre 9 – O u 4 – O acetil ácido sialico
Actua como cofactor de la proteína S en la adhesión del virus a la célula huésped
De los genomas mas grandes entre los RNA virus
El orden es invariable 5´ - S – E – M – N – 3 ‘
El gen de la replicasa abarca gran parte del genoma y es la unica transcrita directamente del genoma, las otras proteínas sonproductos de mRNA sub genómico
Los demás genes accesorios, con función no completamente entendida, la mayoría son no estructurales, sin embargo, algunos genes (3ª, 6, 7, 7b, 9b, son componentes del virión en el SARS Cov
1.- inicia la infección con la unión de virión con el receptor celular don de se llevan a carg procesos que concluyen en la entrada de la nucleocapside al citoplasma donde el genoma viral se traducirá
Cada coronavirus solo infecta un limitado y relacionado grupo de huéspedes, determinado por el tropismo de la proteína S
S1 es la parte que se une al receptor, esta unión lleva a cambios conformacionales que concluyen con la fusión de la membrana viral y la celular medida por la porción S2
Los receptores celulares conocidos
ACE2 es una carboxipeptidasa de unión a zinc de superficie celular implicada en la regulación de la función cardíaca y la presión sanguínea. Se expresa en las células epiteliales del pulmón y el intestino delgado, que son los objetivos principales del SARS-CoV, así como en el corazón, el riñón y otros tejidos.209 Al igual que con APN, el papel receptor de ACE2 parece ser independiente de su actividad enzimática. Aunque la proteína S del SARS-CoV se une al dominio catalítico de ACE2, la mutación en el sitio activo o la inhibición química no afecta de manera detectable la capacidad del ACE2 para asociarse con la proteína S o para promover la formación de sincitios
2.- entrada y denudación
Rearreglo de la proteína S y fusión de las membranas viral y celular desencadenado por la interacción con el receptor, escicion proteolítica dela proteína S, exposición al pH ácido
3.- Expresión del complejo de replicación – transcripción
El siguiente paso es la trascripción de los genes de la replicasa desde el ARN, formado por dos ORF (1a y 1b) que se solapan en una pequeña región
Como finalidad la generación de compartmientos membranosos para la replicación del RNA
4.- Síntesis de RNA
La expresión y ensamblaje del complejo de replicación y transcripción inicia la etapa de síntesis de RNA que culmina en la replicación de RNAm subgenómico
5.- Ensamblaje y liberación viral
Las proteínas estructurales, M, S, E se insertan al retículo endoplásmico, y trasnportadas al compartimiento intermedio retculo – Golgi (ERGIC) donse se une con l proteína N
La respuesta inmune innata se activa mediante la detección de patrones moleculares asociados a patógenos virales (PAMP), como el ARN bicatenario (dsRNA) o el mRNA no protegido.
Esto ocurre a través de receptores de reconocimiento de patrón de huésped (PRR), como la proteína del gen I inducible por ácido retinoico (RIG-I) y la proteína asociada a la diferenciación de melanoma 5 (MDA5), potencialmente a través de parejas de unión a dsRNA como dependiente de dsRNA inducible por IFN activador de proteína quinasa A (PRKRA).
Siguiendo a PRR-mediado detección de un PAMP, la interacción resultante de los PRR con la proteína de señalización antiviral mitocondrial (MAVS) activa el factor nuclear-κB (NF-κB) a través de una cascada de señalización que implica varias quinasas.
El NF-κB activado se transloca al núcleo, donde induce la transcripción de citoquinas proinflamatorias. Las quinasas también fosforilan (P) el factor regulador de IFN 3 (IRF3) e IRF7, que forman homodímeros y heterodímeros y entran en el núcleo para iniciar la transcripción de los interferones de tipo I (IFN de tipo I).
Tanto el síndrome respiratorio agudo severo coronavirus (SARS-CoV) y El coronavirus del síndrome respiratorio de Medio Oriente (MERS-CoV) ha desarrollado mecanismos para interferir con estas vías de señalización, como se muestra;
Estas estrategias de subversión involucran proteínas estructurales (membrana (M) y nucleocápside (N)) y proteínas no estructurales (nsp1, nsp3b, nsp4a, nsp4b, nsp5, nsp6 y proteasa de tipo papaína (PLpro);
b | La unión de IFN tipo I a su receptor dimérico, el receptor IFNα / β (IFNAR), activa el transductor de señal de la quinasa Janus (JAK) y el activador de la señalización de transcripción (STAT) vía, en la que las quinasas JAK1 y TYK2 fosforilan STAT1 y STAT2, que forman complejos con IRF9.
Estos complejos se mueven al núcleo para iniciar la transcripción de genes estimulados con IFN (ISG) bajo el control de promotores que contienen un elemento de respuesta estimulado por IFN (ISRE). Colectivamente, la expresión de citocinas, IFN e ISG establece una respuesta inmune innata antiviral que limita la replicación viral en células infectadas y vecinas. De nuevo, se ha demostrado que las proteínas virales inhiben estas vías de señalización del huésped para evadir esta respuesta inmune. IκBα, NF-κB inhibidor-α.