Las bacterias intracelulares son organismos que invaden y se replican dentro de las células del huésped para evadir la respuesta inmune. Algunas bacterias intracelulares comunes son Mycobacterium tuberculosis, Salmonella enterica, Brucella spp., Legionella pneumophila, Listeria monocytogenes, Rickettsia spp., Francisella tularensis, Chlamydia trachomatis y Chlamydophila pneumoniae. Estas bacterias pueden causar enfermedades persistentes y de larga incubación debido a su habilidad para ocultarse dentro de las

1. BACTERIAS INTRACELULARES
Brenda Damaris Delgado Cortez
Minerva Estrada Nieves
Sofía Estrada Nieves

2. BACTERIAS INTRACELULARES
 La infección persiste frente a la respuesta inmune.
 Son poco toxicas las células infectadas sobreviven.
 La patogénesis es fuertemente dependiente de la respuesta
inmune
 Son inaccesibles a los anticuerpos y buscan la fagocitosis.
 Incubación larga y enfermedad persistente.

3. VÍAS DE ENTRADA
 Aire
 Sangre
 Alimentos
Entrada
 Mordiscos de insectos Ritketsia

4. FACULTATIVAS Y OBLIGADAS
Intracelulares facultativas (células de la estirpe
macrofágica )
 Mycobacterium, Salmonella, Brucella,
Legionella, Listeria, Francisella
Intracelulares obligadas: (células endoteliales)
 Rickettsia y Chlamidiae.

5. RESPUESTA INMUNE VS BACTERIAS
INTRACELULARES Inmunidad natural: Fagocitosis por neutrófilos y macrófagos.
Algunas resisten degradación por macrófagos.
 Su eliminación depende de mecanismos de inmunidad celular
dependiente de células T
 Detectadas por células T que reconocen antígenos
presentados en MHC II a células T CD4 que activan fagocitos
y en MHC I y CD1 a CTL CD8+ y células T dobles negativas
gamma/delta.

6. PATOGÉNESIS GENERAL: CICLO
INTRACELULAR

7. MYCOBACTERIUM
La capacidad para eliminar la bacteria dependerá
de factores relacionados con el sistema inmune
de la persona y de factores de virulencia propios
de la bacteria.

8. MEDIOS DE CULTIVO
 Tincion Zhiel – Neelsen
 Medio selectivo 7H11 Contiene Mycobactosel
 Base de huevo Lowesten Jensen: verde de malquita que
inhibe el crecimiento de otras bacterias
 Medios de cultivo radiometricos: fuente de carbono
marcada radiactivamente. Se mide con radiometro.
P. Bioquimica Fundamento
A. nicotinico + Producción de niacina
Reduccion de nitratos + Presencia de la nitrato redactase
Catalasa + Hidrolisis de peroxido de hidrogeno
Reduccion de telurito +
Hidrolisis del Tween80 + si es capaz de hidrolizar con este detergente

9. SALMONELLA
• Bacilos gramnegativos
• Intracelulares
• Fiebre tifoidea causada
por Salmonella typhi.
La salmonelosis es una intoxicación alimentaria causada por la bacteria
Salmonella. Los síntomas son dolor abdominal, náuseas, fiebre y diarrea.
Células intestinales se hallan
cubiertas por microvellosidades

10. PRUEBAS BIOQUÍMICAS
EMB Bacterias enteropatogenas y fermentacion de lactosa y glucosa.
MacConkey Inhibicion a Gam + salmonella colonias incoloras
Medios selectivos
Hektoen enterico Colonia negras con produccion de H2S
Agar salmonella – Shigella inhibicion de Gram + salmonella colonias traslucidas
Verde Brillante

11. BRUCELLA
• Enfermedad de Malta
• Cocobacilos de 0,5 a
0,7 µm de diámetro por
0.6-1.5 µm de largo,
• Intracelulares facultativo
s

12. DIAGNOSTICO
 HEMO-BACTER RUIZ-CASTAÑEDA: La fase sólida está compuesta por
Agar Tripticasa de Soya y Agar- Agar. La fase liquida está compuesta por
caldo de Tripticasa de Soya, Adicionado de Sulfonato Sódico de Polianetol
(SPS). 2-4 días, es posible observar en la fase sólida pequeñas colonias que
se deslizan por el agar en forma que recuerdan las lágrimas de cera
resbalando por la vela.
 Tinción de Gram es peculiar: por la exposición al alcohol Se
observan cocobacilos con decoloración irregular se observa
la coexistencia de Gram + y -
Catalasa +
Oxidasa +
Ureasa +

13. LISTERIA
Ciclo intracelular

14. DIAGNOSTICO
Voges Proskauer +
CALDO BASE FRASER: Todas las especies de Listeria hidrolizan
esculina a esculitina que, junto con los iones férricos, forman un
complejo marrón oscuro a negro
CALDO LISTERIA UVM: Esta prueba determina la capacidad de un
microorganismo de reducir nitrato a nitrito y/o nitrógeno gas

15. RICKETTSIA
 Parásitos intracelulares obligados
 Gram-negativas
Patogénesis:
1. Union a macrofagos por Ku70
2. ligando: proteínas de membrana externa
OmpA, OmpB, péptido B, Adr1 o Adr2
1. re-arreglo en el citoesqueleto
2. Entrada
3. Multiplicacion por fision binaria
4. Lisis de M. fagosomal

16. MEDIOS DE CULTIVO PARA SU DIAGNOSTICO
 Medio MEM (Minimum Esencial Medium) sin antibiótico:
suplementado con suero bovino fetal (SBF) al 10% (concentración final, CF) 2
mM de glutamina CF y 0,2% (CF) de aminoácidos no esenciales. Incubación 33-
35ºC en ausencia de CO2.
 5-7 días para su desarrollo
 Cultivo Shell via: celulas fibroblastos
 Cultivo Vero: El linaje Vero fue aislado a partir de las células epiteliales del riñón
de un mono verde africano. Con linaje continuo y aneuploidico
 Tinción de Giemsa
 frotis sanguíneos, cortes histologicos y otro tipo de
muestras biológicas.
 coloración diferencial y se ven dentro del citoplasma de
la célula huésped
 PCR
 Tincion de gram: Se tieñen muy poco o nada

17. MYCOBACTERIUM LEPRAE
 Intracelular obligado
 Bacilo acido-alcohol resistente
 Gram positivo
 No se ha logrado cultivar in vitro/ratones, ratas y hámsters (12
días)
 Afecta principalmente: piel, mucosas, vías respiratorias
superiores
 Aislamiento de BAAR:

18. LEGIONELLA PNEUMOPHILA
 Bacilo o cocobacilo
 Gram negativo
 Móvil
 Bacteria intracelular facultativa
 Infecciones frecuentes en verano y otoño
 Neumonía aguda
Cultivos: Legionella agar, BCYE agar, medios
adicionados con sales de hierro y L-cisteina
Confirmación bioquímica: Oxidasa y ureasa negativa,
catalasa positiva.

19. FRANCISELLA TULARENSIS
 Intracelular facultativa
 Participación de artrópodos para su
transmisión
 Cocos o bacilos cortos
 Carecen de organelos de locomocion
 Provocan tuleremia (enfermedad zoonotica)
Medios para cultivo:
 Agar sangre chocolate cisteína
 Agar sangre cisteína
 Agar glucosa cisteína
Pruebas bioquímicas:
Bacteria intra. Catalasa Oxidasa
F. Tulariensis + +

20. CHLAMYDIA TRACHOMATIS
 Intracelular obligado
 Gram negativos
 Cocoides
 Inmóviles
 Tinción con Giemsa, Castañeda o Machiavello
 Cultivo en células McCoy
 Cultivo en huevos embrionados en cultivos de células de
McCoy
 Antibiogramas
 Pruebas serológicas

21. CHLAMYDOPHILA PNEUMONIAE
 Cocos Gram negativo
 Inmóviles
 Intracelular obligado
 Infecciones respiratorias
 Cultivos: células de McCoy y sacos
vitelinos de huevos embrionarios
 Diagnóstico serológico
 Microinmunofluorescencia
 Pruebas de amplificación de ácidos
nucleicos