PRUEBAS MOLECULARES EN APOYO
A DIAGNÓSTICO DE
Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus,
Salmonella spp, E. coli.
QFB. OSCAR URIEL ALVAREZ NERI
Lab. Microbiología Epidemiológica
Febrero 2016
V. cholerae
V. parahaemolyticusPUNTO FINAL
E. coli
PCR Bacillus anthracis
Bordetella
RicketsiasTIEMPO REAL
Leptospiras
Salmonella
E. coli
V. cholerae
PFGE
V. parahaemolyticus
Enterobacter
Klebsiella
Neisserias
PCR
La reacción en cadena de la polimerasa, (polymerase
chain reaction), es una técnica de biología molecular
desarrollada en 1986 por Kary Mullis, cuyo objetivo es
obtener un gran número de copias de un fragmento de ADN
particular
Componentes de la reacción
* Cuatro desoxirribonucleótidos-trifosfato (dNTP)
* Dos iniciadores (en inglés primers)
* ADN polimerasa, la más común es la polimerasa Taq
* ADN molde, que contiene la región de ADN que se va a amplificar.
Etapas de la PCR:
* Desnaturalización
* Alineamiento
* Alargamiento (polimerización)
Detección del producto de la PCR
* Electroforésis
**agarosa
**poliacrilamida
La posterior visualización se puede realizar con
bromuro de etidio, gel star (lámpara de luz UV),
tinción de plata.
Concentración recomendada de gel de agarosa para
separar moléculas de ADN lineales.
Porcentaje Gramos de agarosa Gramos de agarosa Fragmentos de
del gel (30mL de TBE 1X) (100mL de TBE 1X) ADN
(%) (7 X 10 cm) (15 X 10 cm) (pb)
1
2
2.5
0.300 1,00 500 – 10 000
0.600 2,00 100 – 2 500
0.750 2,50 50 – 1 000
2 µL de Buffer de
Carga (naranja G)
PARAFILM
8 µL de muestra
Muestra
Laboratorio de
Recepción de muestras
Laboratorio de
Cólera-Enterobacterias
Identifica bioquímicamente
V. cholerae, Escherichia coli o V. parahaemolyticus
Envía cepa a Laboratorio
de Bacteriología Molecular
Realiza
PCR punto final
Resultado se entrega a
Lab. de Cólera-Enterobacterias
CEPA
Vibrio cholerae, Escherichia coli o
Vibrio parahaemolyticus
Resuspender 1- 3 colonias en
200 µL de agua destilada
Hervir 15 min
GENES DE E. coli
gen Pares de bases (pb) Codifica para
LT 322 Toxina Termolábil
ST 185 Toxina Termoestable
ial 320 Locus asociado a la invasividad
bfp 324 Subunidad A del pili BFP
Hly A 1551 Hemolisina
eae 384 Fracción de A/E
stx1 150 Toxina similar a Shiga (stx1)
stx2 255 Toxina similar a Shiga (stx2)
aat 630 Factor de adherencia
484 T+ 484 T+ 484 T+Bco T- 482 483 Bco T- 482 483 Bco T- 482 483
aat
bfp
LT
ial
ST
484 T+Bco T- 482 483 T+Bco T- 482 483 484
Hly A
eae
stx2
stx1
Escherichia coli
7
enterohermorrágica
81 2 3 4 5 6
hlyA
eaeA
Stx2
Stx1
Banda hlyAde 1551 bp,
Banda eaeAde 384 bp,
Banda Stx1 de 255 bp,
Banda Stx2 de 150 bp.
CARRIL MUESTRA
1 ΦX 174/Hae III
2 BLANCO
3 Escherichia hermanii
4 Escherichia coli ATCC 25922
5 Cepa H. Gea González Agar Sangre
6 Cepa H. Gea González Base de Agar
Sangre
7 Testigo Positivo
Escherichia coli O157 H7
8 ΦX 174/Hae III
EPIDEMIOLOGÍA MOLECULAR
Utiliza técnicas de biología molecular con el fin de
evidenciar relaciones entre aislamientos de una misma
especie, como herramienta para la vigilancia e
investigación de brotes.
PFGE (pulsed field gel electrophoresis)
Schwartz y Cantor desarrollaron en 1984 un
sistema denominado electroforesis en gel de
campo pulsante (PFGE) con el que consiguieron
separar cromosomas de levadura de varios
cientos de kpb
Es una técnica usada para la separación de
moléculas de DNA muy largas en un gel de
agarosa por la aplicación cambios periódicos
dirección de un campo eléctrico.
de
PFGE
a 610 nm
Buffer
1mm +Buffer
* 4 veces con TE 1X
con BrEt
RevelarAnalizar
Bionumerics
Preparar gel 1%
incluyendo el
plug
Realizar
corrimiento
18-22h
Cortar Plug
Lavar
* 2 veces con H2O
Restricción
37°c o 50°C
2 a 4 h
Eliminar
Verter en
Moldes
(PLUG)
Plug
+BLC
+Prot K
Incubar a 54°C
1.5-2h con
Agitación
Ajustar DO 0.8-1Suspender en
BSC
Cepa pura
18-24h
Suspensión
+agarosa 1%
+ Prot. K
Somos miembros de la Red de PulseNet América Latina
y el Caribe desde el año de 2004.
Existe interacción entre Latinoamérica cuando existen
brotes de interés internacional.
Certificado para realizar geles de Salmonella spp., y
Vibrio cholerae.
Certificado para realizar análisis de Salmonella spp.,
y Vibrio cholerae.
Instituto de Diagnóstico y Referencia Epidemiológicos.
México Departamento de Bacteriología
Laboratorio de Bacteriología Molecular.
Comparación de huellas enviadas, de corrimientos de cepas de Salmonella Agona asociadas a un
brote del 2011 en USA de alimento (papaya), enviadas por el CDC para detección de casos en
nuestro país.
No se encuentran huella similares en las cepas de nuestro país.
04 Cepas aisladas de Salmonella Braenderup obtenidas de coprocultivo del
estado de Sinaloa, comparadas contra la cepa asociada a un brote por
mangos en Canadá, aislada de humano.
31agosto2012
Corrimiento de 21 cepas de 24 de Salmonella Enteritidis del estado de
Michoacán observándose un 100% de similitud en 15 de ellas. 04sept14
Herramienta “Show bands”
11 cepas de Salmonella Schwarzengrund digeridas con la primer enzima XbaI , brote Michoacán
25-mayo-2012
11 cepas de Salmonella Schwarzengrund digeridas con la segunda enzima BlnI , brote Michoacán
Evidencia de bandas por sistema Bionumerics, 3 cepas (1482,1483 y 1486) pierden la novena banda,
sin embargo se observa un 95.2% de similitud con las demás, y recordando que con la primer enzima
obtenemos un 100%, podemos concluir que se trata de la misma clona.
05-junio-2012
Corrimiento de 9 cepas de Salmonella ser. Oranienburg y comparadas contra la
cepa reportada en un brote en USA aislada de semillas de Chia. No tenemos
aislamientos reportados en nuestro país de estas semillas. Concluimos que las
cepas circulantes en nuestro país son diferentes a las reportadas.01julio2014
CASO E.coli EN HOSPITAL INFANTIL
Enterobacter cloacae en jardín de niños
Klebsiella pneumoniae y Enterobacter cloacae
Pcr enterobacterias
Pcr enterobacterias

Pcr enterobacterias

  • 1.
    PRUEBAS MOLECULARES ENAPOYO A DIAGNÓSTICO DE Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus, Salmonella spp, E. coli. QFB. OSCAR URIEL ALVAREZ NERI Lab. Microbiología Epidemiológica Febrero 2016
  • 2.
    V. cholerae V. parahaemolyticusPUNTOFINAL E. coli PCR Bacillus anthracis Bordetella RicketsiasTIEMPO REAL Leptospiras
  • 3.
    Salmonella E. coli V. cholerae PFGE V.parahaemolyticus Enterobacter Klebsiella Neisserias
  • 4.
    PCR La reacción encadena de la polimerasa, (polymerase chain reaction), es una técnica de biología molecular desarrollada en 1986 por Kary Mullis, cuyo objetivo es obtener un gran número de copias de un fragmento de ADN particular
  • 5.
    Componentes de lareacción * Cuatro desoxirribonucleótidos-trifosfato (dNTP) * Dos iniciadores (en inglés primers) * ADN polimerasa, la más común es la polimerasa Taq * ADN molde, que contiene la región de ADN que se va a amplificar.
  • 6.
    Etapas de laPCR: * Desnaturalización * Alineamiento * Alargamiento (polimerización)
  • 10.
    Detección del productode la PCR * Electroforésis **agarosa **poliacrilamida La posterior visualización se puede realizar con bromuro de etidio, gel star (lámpara de luz UV), tinción de plata.
  • 12.
    Concentración recomendada degel de agarosa para separar moléculas de ADN lineales. Porcentaje Gramos de agarosa Gramos de agarosa Fragmentos de del gel (30mL de TBE 1X) (100mL de TBE 1X) ADN (%) (7 X 10 cm) (15 X 10 cm) (pb) 1 2 2.5 0.300 1,00 500 – 10 000 0.600 2,00 100 – 2 500 0.750 2,50 50 – 1 000
  • 14.
    2 µL deBuffer de Carga (naranja G) PARAFILM 8 µL de muestra
  • 18.
    Muestra Laboratorio de Recepción demuestras Laboratorio de Cólera-Enterobacterias Identifica bioquímicamente V. cholerae, Escherichia coli o V. parahaemolyticus Envía cepa a Laboratorio de Bacteriología Molecular Realiza PCR punto final Resultado se entrega a Lab. de Cólera-Enterobacterias
  • 19.
    CEPA Vibrio cholerae, Escherichiacoli o Vibrio parahaemolyticus Resuspender 1- 3 colonias en 200 µL de agua destilada Hervir 15 min
  • 23.
    GENES DE E.coli gen Pares de bases (pb) Codifica para LT 322 Toxina Termolábil ST 185 Toxina Termoestable ial 320 Locus asociado a la invasividad bfp 324 Subunidad A del pili BFP Hly A 1551 Hemolisina eae 384 Fracción de A/E stx1 150 Toxina similar a Shiga (stx1) stx2 255 Toxina similar a Shiga (stx2) aat 630 Factor de adherencia
  • 24.
    484 T+ 484T+ 484 T+Bco T- 482 483 Bco T- 482 483 Bco T- 482 483 aat bfp LT ial ST 484 T+Bco T- 482 483 T+Bco T- 482 483 484 Hly A eae stx2 stx1
  • 26.
    Escherichia coli 7 enterohermorrágica 81 23 4 5 6 hlyA eaeA Stx2 Stx1 Banda hlyAde 1551 bp, Banda eaeAde 384 bp, Banda Stx1 de 255 bp, Banda Stx2 de 150 bp. CARRIL MUESTRA 1 ΦX 174/Hae III 2 BLANCO 3 Escherichia hermanii 4 Escherichia coli ATCC 25922 5 Cepa H. Gea González Agar Sangre 6 Cepa H. Gea González Base de Agar Sangre 7 Testigo Positivo Escherichia coli O157 H7 8 ΦX 174/Hae III
  • 27.
    EPIDEMIOLOGÍA MOLECULAR Utiliza técnicasde biología molecular con el fin de evidenciar relaciones entre aislamientos de una misma especie, como herramienta para la vigilancia e investigación de brotes.
  • 29.
    PFGE (pulsed fieldgel electrophoresis) Schwartz y Cantor desarrollaron en 1984 un sistema denominado electroforesis en gel de campo pulsante (PFGE) con el que consiguieron separar cromosomas de levadura de varios cientos de kpb Es una técnica usada para la separación de moléculas de DNA muy largas en un gel de agarosa por la aplicación cambios periódicos dirección de un campo eléctrico. de
  • 30.
    PFGE a 610 nm Buffer 1mm+Buffer * 4 veces con TE 1X con BrEt RevelarAnalizar Bionumerics Preparar gel 1% incluyendo el plug Realizar corrimiento 18-22h Cortar Plug Lavar * 2 veces con H2O Restricción 37°c o 50°C 2 a 4 h Eliminar Verter en Moldes (PLUG) Plug +BLC +Prot K Incubar a 54°C 1.5-2h con Agitación Ajustar DO 0.8-1Suspender en BSC Cepa pura 18-24h Suspensión +agarosa 1% + Prot. K
  • 37.
    Somos miembros dela Red de PulseNet América Latina y el Caribe desde el año de 2004. Existe interacción entre Latinoamérica cuando existen brotes de interés internacional.
  • 38.
    Certificado para realizargeles de Salmonella spp., y Vibrio cholerae. Certificado para realizar análisis de Salmonella spp., y Vibrio cholerae.
  • 39.
    Instituto de Diagnósticoy Referencia Epidemiológicos. México Departamento de Bacteriología Laboratorio de Bacteriología Molecular. Comparación de huellas enviadas, de corrimientos de cepas de Salmonella Agona asociadas a un brote del 2011 en USA de alimento (papaya), enviadas por el CDC para detección de casos en nuestro país. No se encuentran huella similares en las cepas de nuestro país.
  • 40.
    04 Cepas aisladasde Salmonella Braenderup obtenidas de coprocultivo del estado de Sinaloa, comparadas contra la cepa asociada a un brote por mangos en Canadá, aislada de humano. 31agosto2012
  • 41.
    Corrimiento de 21cepas de 24 de Salmonella Enteritidis del estado de Michoacán observándose un 100% de similitud en 15 de ellas. 04sept14 Herramienta “Show bands”
  • 42.
    11 cepas deSalmonella Schwarzengrund digeridas con la primer enzima XbaI , brote Michoacán 25-mayo-2012
  • 43.
    11 cepas deSalmonella Schwarzengrund digeridas con la segunda enzima BlnI , brote Michoacán Evidencia de bandas por sistema Bionumerics, 3 cepas (1482,1483 y 1486) pierden la novena banda, sin embargo se observa un 95.2% de similitud con las demás, y recordando que con la primer enzima obtenemos un 100%, podemos concluir que se trata de la misma clona. 05-junio-2012
  • 44.
    Corrimiento de 9cepas de Salmonella ser. Oranienburg y comparadas contra la cepa reportada en un brote en USA aislada de semillas de Chia. No tenemos aislamientos reportados en nuestro país de estas semillas. Concluimos que las cepas circulantes en nuestro país son diferentes a las reportadas.01julio2014
  • 46.
    CASO E.coli ENHOSPITAL INFANTIL
  • 47.
    Enterobacter cloacae enjardín de niños
  • 48.
    Klebsiella pneumoniae yEnterobacter cloacae