El documento resume la rabia como una zoonosis viral endémica en el Perú que causa una encefalitis aguda letal. Describe los ciclos de transmisión entre animales silvestres y domésticos como perros, y la transmisión a humanos principalmente por mordeduras. Explica la epidemiología, etiología, patogenia, signos clínicos y diagnóstico de laboratorio de la rabia. Se enfoca en la rabia urbana transmitida por perros y la rabia silvestre transmitida por murciélagos hematófagos

1. RABIA
Erik D. Cuyo Gonzales
R1 Medicina Familiar y
Comunitaria

2. Generalidades
 La rabia es una zoonosis viral, es endémica en el
Perú, constituyendo un grave problema de salud
pública
 Se caracteriza por una encefalitis progresiva
aguda de carácter letal

3. Ciclos De Transmisión De La Rabia
CARNIVOROS
SILVESTRES
ZORROS
MAPACHES
COYOTES
QUIROPTEROS
M. HEMATOFAGOS
M. INSECTIVOROS
BOVINOS
OVINOS
CAPRINOS
RABIA
ANIMAL
1.- RABIA
SILVESTRE
2.- RABIA
URBANA
RABIA
HUMANA
CARNIVOROS
DOMESTICOS
HERBIVOROS
DOMESTICOS
PERROS
GATOS
HOMBRE
HOMBRE
ZORRILLOS

4. HistorianaturaldelaRabia

5. ETIOLOGIAETIOLOGIA
Forma de bala de fusil y es
NEUROTRÓPICO
 Familia: Rhabdoviridae
 Genero: Lyssavirus
 Especies 11
 Genotipo 1: Virus rábico
propiamente dicho (CVS).
Variantes Antigénicas (1 y 2:perro, 3
y 5 M. hematófago, hasta 11
 Virus calle: Ciclo de transmisión natural
 Virus fijo: Variante de laboratorio
 Genotipo 2, 3, 4, ………7.

6. Estructura del virus de la Rabia
 El virus de la rabia
presenta 2 estructuras
antigénicas principales
1. Interno de naturaleza
Nucleoproteíca que es
especifico
2. Externo de naturaleza
glicoproteica –
responsable de la
produccion de
anticuerpos.

7. PROPIEDADES FISICO-QUIMICAS DEL VIRUS
DE LA RABIA
1. Muy Sensible: Bicloruro de Mercurio, Acidos
Fuertes (Ac. Nítrico), Bases Fuertes
(Hidróxido de Sodio).
2. Sensible: Luz solar, L.U.V., Calor, Éter
Sulfúrico, Formalina, Alcohol Etílico,
Detergentes Aniónicos (Jabones), Bases de
Amonio Cuaternario (Cloruro de
Benzalconio), Agua Jabonosa al 20%.

8. EPIDEMIOLOGÍA
RESERVORIOS
•Aunque todas las especies de mamíferos son
susceptibles a la infección del virus rábico,
solamente unas pocas especies son reservorios
importantes para el mantenimiento de la
enfermedad en la naturaleza.
•Son los animales pertenecientes a dos órdenes de
mamíferos:
Carnívora (domésticos y silvestres) y Quiróptera

9. ANIMALES DE BAJO RIESGO
EPIDEMIOLOGICO
o Roedores y lagomorfos (áreas urbanas y de
crianza), son considerados de bajo riesgo
para transmisión de rabia, no se indica
tratamiento en caso de accidentes.
 Rata de alcantarilla (Rattus norvegicus)
 Rata techera (Rattus rattus)
 Ratón (Mus musculus)
 Cuy o cobayo o conejillo de indias
 Hamster
 Conejo

11. Epidemiología……
Registrándose dos ciclos de transmisión,
cuyos reservorios principales, son:
 el perro en rabia urbana y
 el murciélago hematófago en rabia silvestre.
Siendo el ciclo urbano posible de su
eliminación:
 Medidas eficientes de prevención, tanto en
relación al ser humano como en la fuente de
infección

12. Moquegua
Arequipa
Ancash
La Libertad
Lambayeque
Cajamarca
Ica
Junin
Lima
PIURA
Tumbes
Amazonas
MADRE DE
DIOS
PUNO
RABIA CANINA PERÚ 2006-2012RABIA CANINA PERÚ 2006-2012RABIA CANINA PERÚ 1992-2005RABIA CANINA PERÚ 1992-2005
 En el Perú, la rabia urbana es endémica y su principal
reservorio es el perro responsable de cerca del 99 % de los
casos mortales en los humanos, la transmisión de la rabia
urbana se encuentra focalizada en los departamentos de
Piura, Puno y Madre de Dios (15 casos de rabia- 2012)

13. 9 0 9 1 9 2 9 3 9 4 9 5 9 6 9 7 9 8 9 9 0 0 0 1 0 2 0 3 0 4 0 5 0 6 0 7 0 8 0 9 10 11 12
8 3 2 4 3 1 3 4 8 772 4 9 4 4 0 6 3 15 3 0 2 150 76 53 3 6 17 8 19 14 8 12 8 7 18 16 15
Campañas antirrábicas masivas en cortos periodos de tiempo con vacunas de
producción nacional tipo BHK.
“SITUACIÓN DE LA RABIA CANINASITUACIÓN DE LA RABIA CANINA
PERÚ 1990-2012PERÚ 1990-2012

14. Año Población Canina
Casos Rabia
Canina
Tasa Rabia
Canina(cada
100,000 canes)
2002 2,824,034 17 0.60
2003 3,244,402 8 0.25
2004 3,137,102 19 0.61
2005 3,248,658 14 0.43
2006 3,302,741 8 0.24
2007 3,066,149 14 0.46
2008 3,111,056 8 0.26
2009 3,097,437 7 0.23
2010 3,245,329 19 0.59
2011 3,200,512 13 0.41
2012 3,165,607 15 0.47
RABIA CANINA
PERIODO 2002-2012
F.I.: DIGESA,INS

15. F.I: INS
CASOS DE RABIA 2012
POR DEPARTAMENTO Y ESPECIE

16. DPTO.
ESPECIE
HUM
ANO CAN
BOVI
NO
EQUI
NO
MURCIE
LAGO
PORCI
NO
CAPRI
NO
CHOZ
NA ASNO TOTAL
AMAZONAS 1 1
APURIMAC
AYACUCHO 1 1
CUSCO
HUANUCO 1 1
MADRE DE
DIOS
PASCO
PIURA
PUNO
SAN
MARTIN 1 1
TOTAL 1 3 4
CASOS DE RABIA POR DEPARTAMENTO Y ESPECIE
2013
F.I.: INS

17. SITUACIÓN GENERAL DE LA RABIA
EN HUMANOS PERÚ 1990-2013*
Fuente: ESNZ-DGSP--MINSA
0
5
10
15
20
25
30
35
R-Urbana 33 28 22 32 19 6 8 8 3 2 2 0 0 0 0 1 1 0 0 0 1 1 2 0
R.Silvestre 29 9 0 2 22 15 11 4 6 7 2 2 1 2 8 7 2 24 0 17 13 22 10 1
90 91 92 93 94 95 96 97 98 99 00 01 02 03 04 05 06 7 8 9 10 11 12 13
Recrudecimiento de brotes de rabia humana silvestre en áreas de selva del Perú
“0 casos de rabia humana transmitida por perros en el Perú”

18. Mecanismo de transmisión
 Penetración del virus contenido en la saliva de
un animal infectado principalmente por:
 Mordedura (97% de casos)
 Mas raramente por arañazo o lamedura
 Infrecuente: transplante órganos, otros

19. PATOGENIA DE LA INFECCION
Inoculación (Puerta de Entrada):
Transcutánea (Mordedura, arañazo)
Epidérmica (contacto de saliva con
excoriaciones)
Digestiva (Animales Carnívoros, vac. de adm.
oral)
Respiratoria (Inhalación de aerosoles)
Por Transplante de Órganos (T. de Córnea)
Replicación Viral:
Primero: Músculo Estriado (>Carga Viral).
Segundo: Ganglio Espinal Posterior

20. …PATOGENIA DE LA INFECCION
Traslación Centrípeta
(Invasión de las Neuronas Centrales):
Huso Neuromuscular (3 mm/h)
Nervios periféricos.
Ganglio Espinal Posterior (+).
Metámera Medular.
Encéfalo.
Traslación Centrífuga
(Invasión de las Neuronas Periféricas):
A través del axón o por contigüidad.
El virus se localiza en las neuronas de: cornea,
piel, páncreas, miocardio, glándulas salivales,
etc.

21. Etiopatogenia de la rabia en el hombreEtiopatogenia de la rabia en el hombre

22. 1. Período de INCUBACION1. Período de INCUBACION
Varía inversamente con:
 Tamaño del inóculo
 Grado de inervación de la zona infectada
Y directamente con:
 Proximidad de la mordedura o contacto con el
SNC
En el Perú: 10 – 312 días.(Prom 50 días)
En el mundo: 4 días a 19 años (95 % de los
casos es < 1 año)
Ventana para el tratamiento

23. PERIODO DE INCUBACION SEGÚN LOCALIZACION
DE LA MORDEDURA (PERU)
Localización de laLocalización de la
mordeduramordedura
DefuncionesDefunciones Periodo dePeriodo de
Incubación (días)Incubación (días)
TOTALTOTAL 163 29
Cabeza cara cuelloCabeza cara cuello 27 18
Tronco Ext. superioresTronco Ext. superiores 51 29
Ext. inferioresExt. inferiores 85 36

24. 2. Periodo del PRODROMO2. Periodo del PRODROMO
 Pródromo – cuando el virus ingresa al SNC
 Inespecífico: fatiga, malestar, anorexia, cefalea,
irritabilidad, depresión, cambios de conducta,
náuseas / vómitos, dolor abdominal.
 50% tienen dolor/parestesias en lugar de la
mordedura

25. 3. Periodo DE ESTADO:3. Periodo DE ESTADO:
3.13.1 Fase de excitaciónFase de excitación
Incluye:
 Agitación generalizada o hiperexcitabilidad con
periodos intermitentes de lucidez, incluyendo
periodos de confusión, alucinaciones, agitación o
comportamiento agresivo.
 Disfunción autonómica, sialorrea, lagrimeo,
transpiración, pilo erección y dilatación pupilar.
 Disfunción de pares craneales, dificultad para
deglutir, paresia facial o de la lengua.
 Espasmos hidrofóbicos y aerofóbicos.
 Complicaciones e inestabilidad
cardiorrespiratoria – paro cardiaco y muerte.

26. Rabia Humana: Hiperexitabilidad,
irritabilidad

27. Rabia humana: Hidrofobia

28. Rabia Humana: Hidrofobia y sialorrea

29. 3. Periodo de ESTADO3. Periodo de ESTADO
3.23.2 Fase ParalíticaFase Paralítica
Incluye:
 Parálisis flácida frecuentemente ascendente.
 Paresia laríngea (rabia muda)
 Paresia facial – sordera bilateral.
 Formas variadas de parálisis:
 De la extremidad mordida.
 Parálisis difusa y simétrica.
 Parálisis ascendente similar a un Guillain-Barré.
 Compromiso de esfínteres (incontinencia
urinaria)
 Hidrofobia menos común, espasmos inspiratorios
moderados.
 Complicaciones e inestabilidad
cardiorrespiratoria – paro cardiaco y muerte

30. Mordeduras por Murciélagos
Hematófagos

31. Las mordeduras de murciélagos insectívoros

32. Mordedura por can

34. Diagnóstico De Laboratorio
 El diagnostico de rabia se realiza mediante la
detección del antígeno vírico en el SNC o la piel,
el aislamiento del virus, la detección del genoma
y los resultados serológicos.
 El diagnostico distintivo son los cuerpos de
inclusión intracitoplasmaticos consistentes en
agregados de nucleocapsides víricas Corpúsculos
de Negri.
 Pero sólo se observan en el 70% a 90% del tejido
cerebral de individuos aquejados.

35. Diagnóstico De Laboratorio

36. Diagnóstico De Laboratorio
 La detección del antigeno
utilizando técnicas de
inmunoflouresencia directa o la
detección del genoma mediante
PCR-TI es un prueba rápida y
sensible, constituyendo los
métodos de elección para el
diagnostico de rabia.
 Las muestras son: saliva, suero,
líquido raquídeo, material de
biopsia cutánea de la nuca,
material de biopsia cerebral o
autopsia y frotis de impresión de
células epiteliales cornéales.

37. Diagnóstico De Laboratorio
 El virus también se puede cultivar en cultivos celulares o en
ratones lactantes en los que se inocula en el cerebro,
examinándose posteriormente por inmunoflourescencia
directa.
 Los títulos de anticuerpos de rabia en el suero y en el liquido
cefalorraquídeo se determina mediante un ELISA o un
análisis rápido de inhibición de fluorescencia. Pero sólo se
detectan en una etapa avanzada de la enfermedad.

38. TIPO DE MUESTRAS
 El diagnóstico de rabia POST MORTEM
- CEREBRO (ASTA DE AMÓN)
- CEREBELO
- MEDULA
 El diagnóstico de rabia IN VIVO- HUMANOS
- SUERO
- SALIVA (líquido y torunda)
- LIQUIDO CEFALORAQUIDEO
- BIOPSIA DE PIEL DE NUCA

39. Obtención de muestras de cerebro,
cerebelo y médula

40. Obtención de muestras de
cerebro, cerebelo y médula

41. DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO
TÉCNICAS DE RUTINA:
 Inmunofluorescencia directa: 3 días
 Prueba biológica: 28 días
RESULTADOS
 A través del NETLAB: enviar solicitud de
acceso obtenida de pagina web.

42. Flujograma de Atención de la Persona mordida
y del animal mordedor
PERSONA
MORDIDA
DENUNCIA Y REGISTRO
DE LA MORDEDURA
(*libro naranja)
SERVICIO
MEDICO
REGISTRO VACUNACION Y
CONTROL DE TRATAMIENTO
(**libro naranja)
ATENCION DE LESION EN
EMERGENCIA SI REQUIERE
PROCESAMIENTO E INFORMACION
BIDIRECCIONAL SEGÚN NIVELES DE
ATENCION EN LOS EE. SS.
ANIMAL
MORDEDOR
DENUNCIA Y
REGISTRO
(*libro naranja)
HUIDO CONOCIDO
CONTROL EN EE SS O DOMICILIO:
• CONTROL DEL ANIMAL POR 10 DIAS Y ALTA
• SI MUERE, ENVIAR MUESTRA AL LAB. REF.
• NO ELIMINAR (MATAR) AL ANIMAL

43. A. TRATAMIENTO DE HERIDA(s)
B. CLASIFICACIÓN DE LA EXPOSICIÓN
C. TRATAMIENTO ANTIRRÁBICO ESPECIFICO
ATENCIÓN DE PERSONAATENCIÓN DE PERSONA
EXPUESTA AL VIRUS RABICOEXPUESTA AL VIRUS RABICO

44. Tratamiento médico de las heridas
 Lavado de la herida:
 Con agua jabonosa al 20% (jabón de ropa).
 Aplicación abundante por espacio de 15 minutos
(a presión en heridas profundas).
 Enjuagar con agua hervida fría o solución salina
fisiológica.
 Secado con gasas.
 Limpieza del campo con solución de yodopovidona.
 Oclusión de la herida, apósito con gasa, vendaje o
sutura.
 Antibióticos (según Norma Técnica)
 Vacunación Antitetánica.

45. ANTIBIÓTICOS DE USO COMÚN EN MORDEDURAS POR
ANIMALES
DOSIS EN ADULTOS
Medicamento Concentració
n
Vía Forma
farmacéu
tica
Dosis Frecuencia
Ciprofloxacino
(como clorhidrato).
Amoxicilina + Ac.
clavulánico.
Dicloxacilina
Eritromicina
500 mg.
500 mg/125 mg
.500 mg.
500 mg.
Oral
Oral
Oral
Oral
Tab
Tab
.
Tab.
Tab.
500 mg.
500 mg de
amoxicilin
500 mg.
500 mg.
c/12 hs x 7 días
c/8 hs x 7 días
c/6 hs x 7 días
c/6 hs x 7 días

46. DOSIS EN NIÑOS
Medicamento Concentración Vía Forma
farmaceútica
Dosis Frecuencia
Dicloxacilina
Amoxicilina +
Ac. Clavulánico.
Amoxicilina
Eritromicina
Sulfametoxazol
+trimetoprima
250 mg./5ml
250 mg./62.5
mg
250 mg./5ml
250 mg./5ml
200/40mg/5ml
Oral
Oral
Oral
Oral
Oral
Susp.
Susp.
Susp.
Susp.
Susp.
40-50
mg/Kg/día
40-50
mg/Kg/día
40-50
mg/Kg/día
40-50
mg/Kg/día
8mg/kg/dia
trimetoprim
c/6 hrs x 7
días
c/8 hrs x 7
días
c/8 hrs x 7
días
c/6 hrs x 7
días
c/12 hrs x 7
días

47. DOSIS EN GESTANTES
Medicamento Concentra
ción
Vía Forma
farma
céutica
Dosis Frecuencia
Amoxicilina
Amoxicilina +
Ac. Clavulánico
Dicloxacilina
500 mg
500 mg /
125 mg
500 mg
Oral
Oral
Oral
Tab.
Tab.
Tab.
500 mg
500 mg
Amoxicilin
125 mg
Ac.Clavulá
500 mg
c/8 hrs x
7 días
c/8 hrs x
7 días
c/6 hrs x
7 días

48. Clasificación de las exposiciones
al virus rábico
Leves Graves
1.- Localización Tronco y Extremidades
(excepto yema de dedos)
Cara, Cabeza, Cuello y
Yema de dedos
2.- Profundidad Superficiale
s
Profundas
3.- Número Única
s
Múltiples
Perro o Gato conocido y
aparentemente sano
- Perro o Gato
desconocido
Animal Silvestre
- Animal Sospechoso
de Rabia o Rabioso
- Animal Muerto
I.- Características
de la Mordedura
II.- Condición del
Animal Mordedor
- Animal de producción

49. Tratamiento antirrábico específico
 Consiste en la administración de suero y vacunas
antirrábicas o sólo de vacunas
 La indicación depende del tipo de exposición
 Sólo existe dos tipos de Exposición al Virus Rábico:
 Leves y
 Graves

50. Tratamiento Antirrábico
específico
 Vacuna CRL
 Vacuna de Cultivos Celulares
 Suero Antirrábico

51. Exposición leve

52. En el caso de contacto de
saliva del animal con piel
sana independientemente
de la condición del
animal no requieren
vacunación
EXPOSICION
LEVE
ANIMAL
LOCALIZADO
OBSERVACION
DEL ANIMAL
(10 DIAS)
PERRO O GATO
ANIMAL VIVO ANIMAL HUIDO
ANIMAL
MUERTO
ALTA DEL
PACIENTE
INICIAR
ESQUEMA
REDUCIDO
** Muestra
**LABORATORIO
PARA VIGILANCIA
EPIDEMIOLOGICA

53. Exposición grave

54. Exposición grave

55. Tratamiento
antirrábico
EXPOSICION
GRAVE
PERRO O GATO
CONOCIDO Y
APARENT. SANO
ANIMAL
SOSPECHOSO
DE RABIA o RABIOSO
VACUNACION
HASTA EL 5º DIA
Muestra
(*)(*)Evaluar situación epidemiológica de la zonaEvaluar situación epidemiológica de la zona (*)Los animales silvestres deben ser(*)Los animales silvestres deben ser
sacrificados- obtener muestra para enviar al laboratoriosacrificados- obtener muestra para enviar al laboratorio
ANIMAL NO
LOCALIZADO(*)
O SILVESTRE (*)
OBSERVACION DEL
ANIMAL (10 DIAS)
PERRO O GATO
ANIMAL VIVO ANIMAL HUIDO
O MUERTO
ALTA DEL
PACIENTE
CONTINUAR
ESQ. REDUCIDO
LABORATORIO
PARA VIGILANCIA
EPIDEMIOLOGICA
MORDEDURAS
EN ZONAS ALTAS
(C.C.C.PD) y/o MULT
MORDEDURAS
EN OTRAS ZONAS
O CONTACTO
SUERO ANTIRR.
+ ESQ. CLASICO
ESQUEMA
REDUCIDO

56. Signos y síntomas de la rabia canina
 Fase Prodrómica (1 – 3 días):
 Cambio de Temperamento:
 Más afectuoso
 Otros se aíslan
 Escarban
 Falta de apetito
 Cambio de lugar de reposo
 No acuden a las llamadas
 Hipersensibilidad refleja:
 A ruidos
 A movimiento
 A luz intensa
 Intranquilidad:
 Actitud de cazar moscas
 Ladra constantemente
 Aúlla
 Presenta claustrofobia
 Se muerde el lugar de la herida
 Dilatación desigual de las pupilas.
 Fiebre
 Dificultad para deglutir
 Estreñimiento
 Aumento del apetito sexual
 Fase de Excitación (3 días):
 Depravación del apetito
 Propensión a morder
 Aumenta disfagia
 Sialorrea
 Inicio de la parálisis:
 Laringe
 Faringe
 Ocular (estrabismo uni o
bilateral)
 Tendencia a vagar
 Fase de Parálisis (4 días):
 Parálisis total del maxilar
inferior
 Parálisis del tren posterior
 Disminución de la
temperatura corporal
 Muerte por parálisis de los
músculos respiratorios.

57. VACUNA C.R.L.

58. Esquemas de tratamiento
para PRE EXPOSICION con C.R.L.
VARIABLES TRATAMIENTO REFUERZOS
Volumen de dosis 2 cc 2 cc
Número de dosis 3 1
Días de aplicación 0, 7, 21 ó 0, 2, 4 90 ó 30
Vía S.C. S.C.

59. ESQUEMA CLASICO **Siempre y cuando se indique
con suero antirrábico
ESQUEMA REDUCIDO
Esquemas de tratamiento Antirrábico Humano
POST EXPOSICION con C.R.L.
VARIABLES TRATAMIENTO REFUERZOS
Volumen de dosis 2 cc 2 cc
Número de dosis 7 3
Día de Aplicación 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 10, 20, 60
VARIABLES TRATAMIENTO REFUERZOS
Volumen de dosis 2 cc 2 cc
Número de dosis 14 2
Día de Aplicación 1, 2, 3, 4, ...14 10, 20

62. VACUNA DE CULTIVOS
CELULARES

63. VACUNA ANTIRRABICA DE USO HUMANO
CULTIVOS CELULARES
COMPOSICION
 Suspensión de virus rábico cepa PV producidas en
células VERO ( Vervet monkey) o
 Suspensión que contiene el virus de la rabia
obtenida a partir del cultivos celulares de origen
humano (vacuna de células diploides)
 Inactivadas con betapropiolactona
 Purificada y concentrada por ultrafiltración
 Preservantes fenol 0.1% y merthiolate 0.001%
 VIA ADMINISTRACION : I.M.

64. VACUNA ANTIRRABICA DE USO HUMANO
CULTIVOS CELULARES
 Dosis Pre – exposición : 1ml
3 dosis ( 0, 7 y 28 )
 DOSIS Post – exposición : 1ml
5 dosis ( 0,3,7,14 y 21 ó 28)
 VIA ADMINISTRACION : I.M.

65. Técnica de aplicación: ADULTOS Y
NIÑOS MAYORES DE 2 años
 REGION DELTOIDEA

66. Técnica de aplicación: NIÑOS
MENORES de 2 años
 Área antero lateral del muslo, perpendicular a la
zona a aplicar

69. SUERO
ANTIRRABICO

70. Suero Heterólogo: SUERO ANTIRRÁBICO 1000 UI
- Hiperinmune de origen equino
- Dosis : 40 UI-Kg. de peso
- Prueba de sensibilidad
Suero Homólogo:
- Inmunoglobulinas antirrábicas de origen
humano
- Dosis : 20 UI Kg. de peso
Aplicar solo por única vez - control médico
estricto
SUERO ANTIRRABICO DE USO HUMANO

71. CALCULO DE SUERO ANTIRRABICO
HUMANO
• Nombre comercial FAVIRAB
• Tipo de Suero HETEROLOGO
• Concentración De 1000 a 2000 UI en 5 ml (200 a 400 UI/ml)
1500 UI en promedio ( 300 UI/ml)
• Dosis 40 UI/Kg. de peso
Ejemplo de Conversión:
Peso del paciente ........... X 40 = .......... UI
Dosis requerida por el paciente = ............ UI
Cálculo del Volumen:
1500 UI ......5 ml ..... 1 frasco
...................... 9.3 ml
X = .................. ml = ..... frascos
70 2800
*2800
*2800UI
9.3 2

72. Uso del suero antirrábico
heterólogo (origen equino)
 Aplicación lo más pronto posible después de la exposición
(primeras 72 horas). “Daría mayor seguridad de efectividad”
 Administrarse sin tener en cuenta el intervalo entre la
exposición y el inicio del tratamiento (OMS).
 Se puede aplicar hasta el día 7 después de iniciada la
vacunación, ya que puede interferir con la producción de
anticuerpos.
 La persona que ha recibido vacuna antirrábica ante una nueva
exposición no debe recibir suero antirrábico.
 Puede causar reacciones adversas, que son raras, aun se hayan
efectuado pruebas de sensibilidad.

73. REACCIONES ADVERSAS AL SUERO
ANTIRRABICO HETEROLOGO
 REACCION INMEDIATA:
- Shock Anafiláctico (Hormigueo-palidez-disnea-
edema-exantema-hipotensión)
 REACIONES TARDIAS:
- Enfermedad del suero (Fiebre-exantema-
artralgias - adenopatías)
- Fenómeno de Arthus (dolor-tumefacción-
rubor) (escaras, necrosis)

74. Manejo de las Reacciones Adversas por
Suero Heterólogo
 SHOCK ANAFILACTICO:
Permeabilizar vía aérea / Adrenalina SC 0.5mg / ml
- repetir c/5-10min hasta 3 veces/ Adrenalina
EV… / Corticoides/ Antihistamínicos / Soporte
 ENFERMEDAD DEL SUERO: Antihistamícos,
antipiréticos, analgésicos
 FENOMENO DE ARTHUS: Antihistamínicos,
analgésicos

75. Curvas de anticuerpos con la vacuna
CRL y suero antirrábico heterólogo
TT
AcAc
2- 32- 3
Sem.Sem.
1 Año
SueroSuero
7+37+3
14+214+2
Vacuna C.R.L.
-A virus inactivado
-Dosis única: 2 cc
-Conservación: 4 - 8 ºC
-Homogenizar
-No contraindicaciones
0.5UI/m0.5UI/m
ll

76. RECOMENDACIONES DURANTE LA
VACUNACION ANTIRRABICA DE USO
HUMANO
 No abandonar el tratamiento indicado
 No realizar deportes u otra actividad que
demande esfuerzo físico
 Evitar la ingestión de alimentos condimentados
 Evitar ingestión de bebidas alcohólicas
 No fumar
 No someterse a cambios bruscos de temperatura
 No usar corticoides.

77.  No tiene contra indicaciones.
 Se indica independientemente de:
 Edad y peso del paciente.
 Enfermedades agudas o crónicas.
 Pacientes gestantes.
 Tratamiento antibiótico y/o antinflamatorio
 Tarjeta de Vacunación antirrábica del animal.
 Causa de muerte del animal mordedor.
 Resultados de Laboratorio del animal agresor.
VACUNACIÓN ANTIRRÁBICA HUMANA :VACUNACIÓN ANTIRRÁBICA HUMANA :
CRLCRL

78. SUSPENSIÓN DE TRATAMIENTO
 Solo se suspende por orden
del médico, siempre y cuando
el animal haya sido
controlado

79. VARIACIONES DE ESQUEMAS DE
VACUNACION
SUSPENSIÓN DE TRATAMIENTO:
Solo por control de animal mordedor
 Al 5to día de la mordedura se suspende con las
dosis aplicadas (animal sano)
 Si vino:
 Día de exposición 5 dosis
 3 días después de exposición 3 dosis
 5 días después de exposición 1 dosis
 6 días después de exposición solo control del AM

80. Vigilancia epidemiológica
 Notificación de
casos
 Investigación
epidemiológica
 Caracterización
de áreas de
riesgo

81. GRACIASGRACIAS