CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE TILAPIA ROJA HÍBRIDA (Oreochromis spp.) CULTIVADA EN JAULAS FLOTANTES EN AMBIENTE MARINO

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE SINALOA
COLEGIO DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
FACULTAD DE CIENCIAS DEL MAR
MAESTRÍA EN CIENCIAS AGROPECUARIAS
TESIS
CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE TILAPIA ROJA HÍBRIDA
(Oreochromis spp.) CULTIVADA EN JAULAS FLOTANTES EN
AMBIENTE MARINO
QUE COMO REQUISITO PARA OBTENER EL GRADO DE
MAESTRO EN CIENCIAS AGROPECUARIAS
PRESENTA
PEDRO EDGARDO CÁRDENAS DÁVILA
DIRECTOR INTERNO DE TESIS
DR. GUSTAVO RODRÍGUEZ MONTES DE OCA
DIRECTORA EXTERNA DE TESIS
DRA. MARTHA ZARAIN HERZBERG
CULIACÁN, SINALOA, ABRIL DE 2012

CONTENIDO
Página
ÍNDICE DE TABLAS------------------------------------------------------------------
ÍNDICE DE FIGURAS--------------------------------------------------------------------
i
ii
RESUMEN---------------------------------------------------------------------------------- iii
ABSTRACT--------------------------------------------------------------------------------- iv
I. INTRODUCCIÓN----------------------------------------------------------------------- 1
II. PROBLEMA----------------------------------------------------------------------------- 3
III. HIPÓTESIS----------------------------------------------------------------------------- 4
IV. OBJETIVO GENERAL--------------------------------------------------------------- 5
4.1 OBJETIVO ESPECÍFICOS--------------------------------------------------------- 5
V. REVISIÓN DE LITERATURA ------------------------------------------------------ 6
5.1 Historia del cultivo de tilapia en agua salada---------------------------------- 6
5.2 Características biológicas de la especie---------------------------------------- 6
5.3 Taxonomía----------------------------------------------------------------------------- 7
5.4 Dispersión geográfica del género Oreochromis------------------------------ 10
5.5 Producción mundial------------------------------------------------------------------ 11
5.6 Producción en México--------------------------------------------------------------- 11
5.7 Mecanismos homeostáticos------------------------------------------------------- 12
5.7.1 Osmorregulación---------------------------------------------------------- 13
5.7.1.1 Osmorregulación en peces marinos----------------------- 14
5.7.1.2 Osmorregulación en peces de agua dulce--------------- 14
5.7.1.3 Peces de agua dulce en agua salada--------------------- 15
5.7.2 Aclimatación----------------------------------------------------------------- 15
5.7.3 Aclimatación de tilapia a agua salada-------------------------------- 16

5.7.4 Crecimiento de tilapia en agua salada------------------------------- 17
5.8 Cultivo en jaulas flotantes---------------------------------------------------------- 18
5.9 Condiciones medioambientales óptimas--------------------------------------- 21
5.10 Densidades de cultivo------------------------------------------------------------- 21
5.11 Alimentación-------------------------------------------------------------------------- 22
5.12 Estrés y enfermedades------------------------------------------------------------ 23
VI. MATERIALES Y MÉTODOS------------------------------------------------------- 24
6.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina------------------------------------ 24
6.1.1 Adaptación variedad Cubana año 2010------------------------------ 27
6.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010---------------------- 29
6.2 Experimento 2: Etapa de Engorda----------------------------------------------- 30
6.2.1 Cultivo de engorda en jaulas flotantes año 2010----------------- 31
6.2.2 Cultivo de engorda en jaulas flotantes año 2011------------------ 31
VII. RESULTADOS Y DISCUSIÓN--------------------------------------------------- 39
7.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina------------------------------------ 39
7.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010---------------------- 40
7.2 Experimento 2: Etapa de engorda------------------------------------------------ 43
VIII. CONCLUSIÓN----------------------------------------------------------------------- 62
IX. LITERATURA CITADA-------------------------------------------------------------- 63

ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-
engorda de la tilapia roja variedad Cubana año 2010--------- 39
Tabla 2. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-
engorda de la tilapia roja variedad Cubana año 2011-------- 41
Tabla 3. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en
ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana cultivadas
en jaulas flotantes en agua marina (cultivo año 2010 80M1:
80 org/m³, machos)------------------------------------------------------- 43
ciclo de engorda de tilapia roja variedad Pargo-UNAM
cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2010;
30M: 30 org/m³, machos)------------------------------------------------ 45
ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana y tilapia roja
variedad Pargo-UNAM cultivadas en jaulas flotantes en agua
marina (cultivo 2010 80M1: 80 org/m³ machos, 30M:
30org/m³ machos)-------------------------------------------------------- 46
Tabla 6. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K
finales en ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana
cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011;
80M2, 80MH, 170MH)------------------------------------------------------------- 51
Tabla 7. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K,
durante el ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana

cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011
80M2: 80 org/m³)---------------------------------------------------------- 53
80MH: 80 org/m³)---------------------------------------------------------- 53
170MH: 170 org/m³)------------------------------------------------------ 53

ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Ejemplar de tilapia roja variedad Cubana--------------------------- 25
Figura 2. Ejemplar de tilapia roja variedad Pargo-UNAM-------------------- 26
Figura 3. Jaula flotante 3X3 m con un bolso 3 X 3 X 1.2 m con luz de
malla 5 X 5 mm (tanque Sansuy™)---------------------------------- 33
Figura 4. Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia
roja variedad Cubana en la etapa de pre-engorda en el año
2010-------------------------------------------------------------------------- 40
Figura 5. Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia
roja variedad Cubana en la etapa de pre-engorda año 2011-- 41
Figura 6. Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de la
tilapia roja variedad Cubana en la etapa de engorda durante
el cultivo en jaula flotante en agua marina (80M1= 80 org/m3
sólo machos)--------------------------------------------------------------- 44
Figura 7. Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja
variedad Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo
en jaula flotante en agua marina (80M1)---------------------------- 44
tilapia roja variedad Pargo-UNAM en la etapa de engorda
durante el cultivo en jaula flotante en agua marina (30M= 30
org/m³ sólo machos)------------------------------------------------------ 45
variedad Pargo-UNAM en la etapa de engorda durante el
cultivo en jaula flotante en agua marina (30M) ------------------ 46

tilapia roja variedad Cubana en la etapa de engorda durante
el cultivo en jaula flotante en agua marina (80M2: 80 org/m³,
80MH: 80 org/m³, 170MH: 170 org/m³) ----------------------------- 50
variedad Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo
en jaula flotante en agua marina (80M2: 80 org/m³, 80MH: 80
org/m³, 170MH: 170 org/m³)-------------------------------------------- 50
Figura 12. Producción obtenida final (kg) y alimento suministrado (kg)
durante el cultivo de engorda durante 104 dias------------------- 52
Figura 13. Ecuación de la curva de crecimiento de relación longitud-
peso de la tilapia roja variedad Cubana de una muestra al
azar de 17 organismos del cultivo de engorda-------------------- 60
Figura 14. Ecuación de la curva de crecimiento de relación longitud-
peso de la tilapia roja variedad Pargo-UNAM de una muestra
al azar de 13 organismos del
cultivo de engorda--------------------------------------------------------- 61

RESUMEN
Con el objetivo de describir el crecimiento y supervivencia de dos variedades
de tilapia roja híbrida, variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y
variedad Pargo-UNAM (tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum X O.
mossambicus) X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O.
aureus), se llevaron a cabo dos ensayos diferentes en dos años consecutivos.
El primer experimento fue desarrollar el proceso de adaptación a agua marina,
donde se analizó la supervivencia (S) y peso (W) adecuado de la tilapia roja
variedad Cubana y la tilapia roja variedad Pargo-UNAM en el años 2010, y en
el año 2011, se realizó el mismo proceso adaptación solo con la variedad
Cubana. El segundo experimento, se relacionó con el crecimiento de las dos
variedades de tilapia en el cultivo de engorda en jaulas flotantes (9m³) en agua
marina y se analizó las variables de crecimiento: peso (W), longitud (L),
ganancia de peso diario (GDP), factor de conversión alimenticia (FCA), tasa
específica de crecimiento (TEC), factor de condición (K) y la supervivencia (S).
En el 2010, se ensayaron las variedades de tilapia (Cubana y Pargo-UNAM,
masculinizadas) como dos tratamientos diferentes, por triplicado: 1) 80M1:
tilapias rojas variedad Cubana peso inicial (Wi) de 10.69 g a una densidad de
80 org/m³ durante 58 días y 2) 30M: tilapias rojas variedad Pargo-UNAM con un
peso (Wi) de 35.84 g con una densidad de 30 org/m³ durante 30 días, Para el
segundo año (2011), se utilizó el mismo sistema de cultivo con una duración de
104 días. Se ensayaron tres tratamientos por triplicado, utilizando la especie
del híbrido de la variedad Cubana: 1) 80M2: tilapias rojas masculinizadas
variedad Cubana con un peso (Wi) de 8.39 g, a una densidad de 80 org/m³, 2)
80MH: tilapias rojas sin masculinizar variedad Cubana con un peso de (Wi) de

8.39 g a una densidad de 80 org/m³, 3) 170MH: tilapias rojas sin masculinizar
variedad Cubana con un peso (Wi) de 8.39 g a una densidad de 170 org/m³,
Los peces fueron alimentados con alimento balanceado comercial extruido con
52%, 45%, 32% y 25% de proteína en sus diferentes etapas de desarrollo. La
calidad de agua se mantuvo en condiciones apropiadas para el desarrollo de la
tilapia, con O2 de 5.5 mg/L, T de 29.8°C, S‰ de 35‰ y pH de 8.4 en el año
2010 y O2 de 5.16 mg/L, T de 31.75°C, S‰ de 35‰, pH de 8.3 en el año 2011.
En el experimento de adaptación, se obtuvo una supervivencia del 100% para
las dos variedades en los dos años (2010, 2011). En el segundo experimento
de crecimiento de engorda en los dos años 2010 y 2011, se obtuvieron rangos
de peso final (Wf) de 84.8 ± 10.62 g a 264.3 ± 24.13 g, longitud final (Lf) de
14.17 ± 0.51 cm a 21.9 ± 0.2 cm, GDP de 1.63 a 2.46 g/d , FCA de 1.33 a 1.83,
TEC de 3.06 a 4.07, y K de 2.44 a 2.98 y S de 78.02 a 97.82%. No se encontró
diferencia significativa entre los tratamientos 80M2, 80MH y 170MH en la
variables de crecimiento (P>0.05). Se obtuvo la relación longitud-peso con la
ecuación Y=0.02X3.03
de la variedad Cubana, la ecuación Y=0.03X2.94
de la
variedad Pargo-UNAM y se obtuvo la relación días de cultivo-peso con la
ecuación Y=1.845X + 4.163 de la variedad Cubana, la ecuación Y=1.632X +
38.48 de la variedad Pargo-UNAM (P<0.05). Se concluyó que las dos
variedades de tilapia roja toleran el proceso de adaptación a agua marina a
partir de un peso de alrededor de 5 g para variedad Cubana y un peso de 25 g
para variedad Pargo-UNAM. Se observó que el crecimiento y supervivencia
fueron similares durante los dos años de cultivo con la variedad Cubana. Los
mejores crecimientos se obtuvieron con densidad de 80 org/m³ sólo machos.
En cuanto al efecto del sexo sobre el crecimiento se obtuvo un 17% de mayor

producción, un 7% de menor consumo de alimento y un 9% de mayor
crecimiento en el tratamiento 80M2 contra tratamiento mixto 80MH. El efecto
que tuvo de la densidad fue 42% mayor producción, 5% mayor consumo y un
16% de menor crecimiento en tratamiento de 170MH contra 80MH.
Anatómicamente la variedad Pargo-UNAM es más robusto que la variedad
Cubana, ya que se obtuvo el índice de condición (K) de 2.98 contra 2.53.
Durante el cultivo de engorda del año 2011 los pesos finales obtenidos de los
diferentes tratamientos son: 80M2 con 264.33 g, 80MH con 240.67 g y 170MH
con 201.67 g. Los resultados obtenidos de este último estudio sugieren que el
cultivo en jaulas puede ser buena estrategia considerando su elevada
producción por unidad de volumen de 19.70 a 28.30 kgs/m³ y con una GDP de
2.46 g/d, TCE de 3.32 y FCA de 1.33, promedio del tratamiento con mejor
rendimiento, por lo que se considera viable el cultivo en zonas costeras en
condiciones generales de agua marina.
Palabras claves: adaptación, crecimiento, jaulas flotantes, salinidad, tilapia
roja.

ABSTRACT
In order to describe the growth and survival of two varieties of hybrid red tilapia,
Cuban red tilapia (O. mossambicus X O. aureus) and Pargo-UNAM red tilapia
(Florida red tilapia (O. urolepis hornorum X O. mossambicus) X O. niloticus X
Rocky Mountain tilapia (O. niloticus X O. aureus)) two different experiments
were carried out in two consecutive years. The first experiment was related to
the process of adaptation to seawater analyzed variables were survival (S), and
weight gain (W) of Cuban red tilapia and Pargo-UNAM red tilapia (year 2010),
and 2011 under the same adaptation process only Cuban red tilapia fry in a
group of 100% males and a second group of males and females. The second
experiment was focused on tilapia cage culture using several 9m³ units in
seawater conditions. Analyzed variables were weight (W), length (L), daily
weight gain (GDP), feed conversion (FCA), specific growth rate (TEC), condition
factor (K) and survival (S). In 2010, two group different with all-male red tilapia
were stocked as follows: 1) 80M1: Cuban red tilapia initial weight (Wi)=10.69 g
stocked with 80 fish/m³ for 58 days, 2) 30M: Pargo-UNAM red tilapia Wi=35.84
g stocked with 30 fish/m³ for 30 days, with three replicate for group. For the
second year (2011), the same culture units were stocked for 104 days with
three different groups as follows: 1) 80M2: all-male red tilapia Wi: 8.39 g,
stocked at a density of 80 fish/m³, 2) 80MH: mixed-sex Cuban red tilapia Wi:
8.39 g, stocked at 80 fish/m³, 3) 170MH: mixed-sex Cuban red tilapia Wi: 8.39
g, stocked at 170 fish/m³, with three replicate per group. The fish were fed with
an extruded commercial feed with 52%, 45%, 32% and 25% protein at different
stages of development. Water quality parameters during growth-out trials were

as DO of 5.5 mg/L, T of 29.8°C, S of 35 ‰, pH of 8.4 in 2010 and DO of 5.16
mg/L, T of 31.75°C, S of 35‰, pH of 8.3 in 2011.
For the first experiment, we observed survival 100%, for both varieties in both
years (2010, 2011). In the second experiment for 2010 and 2011, obtained
growth parameters ranged for final weight (Wf)=84.8 ± 10.62 g to 264.3 ± 24.13
g, final length (Lf)= 14.17 ± 0.51 cm to 21.9 ± 0.2 cm, GDP=1.63 to 2.46 g/d,
FCA=1.33 to 1.83, TEC=3.06 to 4.07 and K=2.44 to 2.98 and S=78.02 to
97.82%. There was no significant difference between treatments 80M2, 80MH
and 170MH in growth variables (P> 0.05). We obtained a length-weight
equation Y=0.02X3.03
for Cuban red tilapia, Y=0.03X2.94
for Pargo-UNAM red
tilapia; also growth increment relationship was calculated for the time-weight
regression both varieties and as follows: Y=1.845X + 4.163 for Cuban red
tilapia, and Y=1.632X + 38.48 for Pargo-UNAM red tilapia with no significant
difference (P <0.05). We conclude that the two varieties of red tilapia tolerate
adaptation to seawater from an initial weight of around 5 g for Cuban red tilapia
and of 25 g for Pargo-UNAM red tilapia. There was a similar growth and survival
during the two years of cultivation with the Cuban red tilapia. The best growths
rates were obtained stocking 80 fish/m³ all-male. For groups with different sex
(mixed or all-male), we observed a 17% higher production, 7% lower feed
intake and faster daily rapid growth of 9% in 100%-male treatment (80M2)
versus the 80MH mixed-sex treatment. In contrast, in treatments with different
stocking density, we obtained a 42% higher output, 5% higher consumption and
slower growth of rate 16% for 170MH versus 80MH mixed-sex. As condition (K)
for red tilapia, it was found that only the Pargo-UNAM red tilapia is more robust
than the Cuban red tilapia, with a 2.98 and 2.53 respectively. In the second

experiment (2011), we obtained final weight: 80M2 with 264.33 g, 80MH with
240.67 g y 170MH with 201.67 g. The results of this study suggest that the cage
culture can be a good strategy considering their high output per unit area of
19.70 to 28.30 kg/m³ and GDP of 2.46 g/d and FCA of 1.33, of the better group,
for that reason, we consider farming tilapia in coastal areas in marine conditions
a viable activity.
Keywords: adaptation, growth, floating cages, salinity, red tilapia.

I. INTRODUCCIÓN
La captura pesquera no ha obtenido un crecimiento considerable en los últimos
años, lo que a ha permitido que la producción acuícola se consolide como uno
de los sectores de mayor desarrollo dentro de la producción de organismos
acuáticos. La tilapia por su alto nivel proteico, pocas espinas, olor suave, su
adaptabilidad a condiciones adversas, fácil manejo en cultivo, elevada tasa de
crecimiento y supervivencia, hacen que ocupe el segundo lugar en la lista de
las especies de peces mundialmente más cultivados (FAO, 2006; Valbuena,
2006). La especie de tilapia ensayada en este trabajo corresponde a la familia
Cichlidae del género Oreochromis originaria de África. Habita en las regiones
tropicales del mundo, es una especie altamente euritérmica y eurihalina,
aunque detienen su crecimiento en condiciones extremas, pueden sobrevivir y
crecer en un amplio intervalo de temperatura y en diferentes concentraciones
de salinidad desde el agua dulce hasta el agua marina (Morales, 2003). El
hibrido de la tilapia roja variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y el
hibrido de la tilapia roja variedad Pargo-UNAM (tilapia roja variedad Florida (O.
urolepis hornorum X O. mossambicus) X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain
(O. niloticus X O. aureus)) son híbridos creados con el propósito de potenciar
cualidades deseadas como el carácter de color rojo y la resistencia a la
salinidad del agua marina manteniendo una elevada tasa de crecimiento. Esto
es relevante, ya que muchos países no cuentan con fuentes suficientes de
agua dulce y su uso es prioritario para cubrir demandas agrícolas, industriales y
de consumo humano directo (Ponce, 2004; López, 2007).
Actualmente, se presenta un creciente interés por la identificación de las
variedades de tilapia que se adaptan mejor a la salinidad del agua marina, por

lo que hasta el momento, hay muy pocos estudios acerca de tilapia roja
variedad Cubana y tilapia roja variedad Pargo-UNAM en cultivos controlados.
Sin embargo, los resultados halagadores obtenidos en otras variedades de
tilapia roja híbrida en ambiente marino, con respecto a su crecimiento,
supervivencia y producción. Así también, la búsqueda de una alternativa de
producción comercial, que pueda provocar un repunte económico en la
geografía costera, motivan el desarrollo de la presente investigación, en donde
se describe el crecimiento y supervivencia de tilapia roja híbrida (Oreochromis
spp.) en el proceso de adaptación a agua marina y en cultivo de engorda en
jaulas flotantes con diferentes densidades de siembra y en cultivos 100%
machos y mixtos (machos y hembras).

II. PROBLEMA
La acuacultura al nivel mundial mantiene un crecimiento anual promedio de
6.9%, desafortunadamente en México el crecimiento de la producción de tilapia
no ha sido tan exitosa como la demanda. En el 2008 sólo se produjeron
alrededor de 74,874 ton (CONAPESCA, 2010), siendo México es el segundo
mayor importador al nivel mundial, en el 2009 importó 36,200 ton, 56% más de
lo importado en el 2005 con 16,300 ton (Josupeit, 2010), esto nos indica que el
país necesita producir 48% más toneladas, para cubrir el mercado nacional.
Actualmente, el reto no es exclusivamente producir tilapia en México, sino que
se debe ser altamente competitivo para enfrentar a los líderes mundiales en la
producción de tilapia, a quienes encabeza China. Una posible alternativa es la
diversificación de las actividades acuícolas aplicadas en la producción de
nuevas variedades de híbridos de tilapia, que puede traer como consecuencia
mayor estabilidad de las unidades de producción, así como mayores ingresos y
como mayor rentabilidad, mismo que debe evaluarse en términos técnicos y
económicos.
Por estas razones, es adecuado evaluar el cultivo de la tilapia roja Oreochromis
sp. en condiciones intensivas en jaulas flotantes en ambiente marino y a su vez
presentar una área de oportunidad para intensificar el desarrollo económico
costero en México.

III. HIPÓTESIS
El crecimiento y supervivencia de dos variedades de híbridos de tilapia roja
cultivadas en jaulas flotantes en ambiente marino: la tilapia roja variedad
Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y tilapia roja variedad Pargo-UNAM
(tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum X O. mossambicus) X O.
niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O. aureus)), no presentan
diferencia en la adaptación al agua de mar, ni en cultivos con diferentes
densidades (80 y 170 org/m³).

IV. OBJETIVO PRINCIPAL
Determinar el crecimiento y supervivencia de dos variedades de tilapia roja
híbrida: tilapia roja variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y tilapia
roja variedad Pargo UNAM (tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum
X O. mossambicus) X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O.
aureus)) cultivadas en jaulas flotantes en ambiente marino.
4.1 Objetivos específicos
 Determinar la supervivencia de la tilapia roja variedad Cubana y de la
tilapia roja variedad Pargo-UNAM en el proceso de adaptación a
condiciones marinas.
 Determinar el crecimiento y supervivencia de la tilapia roja variedad
Cubana y la tilapia roja variedad Pargo-UNAM en etapa de engorda,
cultivadas en jaulas flotantes en ambiente marino, en cultivos con
diferentes densidades y cultivos 100% machos y mixtos (machos y
hembras).

V. REVISIÓN DE LITERATURA
5.1 Historia del cultivo de tilapia en agua salada
Los primeros registros del género tilapia, datan de más de 4000 años en
Egipto, el cultivo de esta especie inicio en 1924 en África, distribuyéndose
ampliamente por todo el mundo desde 1939. Se ha introducido en muchos
ambientes tropicales y subtropicales del mundo, como Malasia, Indonesia,
India, Sudáfrica y en América (Pullin, 1982; FAO, 2006).
Aunque el cultivo de tilapia se limitó inicialmente al agua dulce, los primeros
estudios sobre la posibilidad de cultivar la tilapia en agua salada se realizaron
en Hawaii en 1950, en un intento de garantizar la disponibilidad y la estabilidad
de precios de la carnada viva que era necesaria para la pesca de túnidos. Con
esta finalidad, se mantuvieron cultivos intensivos de O. mossambicus en
tanques con agua salobre, con una salinidad de entre 10-15‰. Los resultados
de supervivencia y de crecimiento fueron superiores a los logrados en agua
dulce. En las mismas fechas se realizaron estudios en Israel con O. aureus, T.
zillii y híbrido O. aureus X O. niloticus estas especies mostraron capacidad de
adaptación a diferentes salinidades. A partir de la década de los años 80, el
estudio de especies de híbridos en ambiente marino se intensificó, donde los
mejores resultados se obtuvieron con la tilapia roja variedad Taiwán (O.
mossambicus X O. niloticus) y la tilapia roja variedad Florida (O. urolepis
hornorum X O. mossambicus) (Watanabe, 1987).
5.2 Características biológicas de la especie
A diferencia de los peces marinos, la tilapia se reproduce libremente en
cautiverio y la larva acepta alimento artificial desde etapas muy tempranas

hasta etapa adulta y se alimentan en base de la cadena alimentaria de
herbívoros y detritívoros (Watanabe, 1987).
Un inconveniente para el cultivo de esta especie, es la alta precocidad para la
reproducción, ya que al madurar sexualmente en tallas muy tempranas, afecta
su crecimiento y ocasiona también una superpoblación. Para controlar esta
situación se realiza una inducción fenotípica de sexo, mezclando la hormona
androgénica 17 alfa-metiltestosterona en el alimento, desde que se inicia su
alimentación exógenamente o bien con una inmersión en solución de la misma
hormona (Beardmore, 2001; López, 2007). Esto se puede lograr dado que la
tilapia es una especie gonocórica indiferenciada, debido a que su tejido
gonadal en la larva en el momento de eclosionar no está diferenciado.
5.3 Taxonomía
El género Oreochromis, pertenece a la familia de los Cichlidae y está
representada por cerca de 70 especie. Derivados de estudios taxonómicos
realizados por Trewavas, 1982 fundamentados en los hábitos reproductivos,
desarrollo biológico, alimentación y características estructurales, decidió
separar las tilapias en tres géneros, Tilapia spp., Oreochromis spp. y
Sarotherodon spp. El género Oreochromis se clasifica en cinco especies de
mayor producción, O. rendalli (Curvier, Boulenger), O. aurea (Steindachner), O.
niloticus (Linnaeus), O. mossambicus (Peters), O. urolepis hornorum (Sipe).
Taxonómicamente la tilapia se clasifica en el Phylum: Chordata, Subphylum:
Vetebrata, Superclase: Gnastotomata, Serie: Pisces, Clase: Actinopterigii,
Orden: Perciformes, Suborden: Percoidei, Familia: Cichlidae, Género:
Oreochromis spp. (Morales, 2003; Pullin, 1982; Webster, 2006).

La tilapia desempeña una mejor adaptabilidad a diferentes ambientes de
producción, por su capacidad para sobrevivir a aguas con bajos contenido de
oxígeno, tolerancia al manejo y a enfermedades (Webster, 2006). Las especies
O. niloticus y O. aurea son las más adecuadas para el cultivo en agua dulce ya
que han mostrado un buen crecimiento con una mayor respuesta productiva en
niveles de salinidad menores de 15 ‰ y un excelente aprovechamiento del
alimento natural y balanceado. Estas últimas especies mantienen una mejor
tasa de crecimiento que O. mossambicus con una mayor capacidad para
sobrevivir a altos niveles de salinidad, pero su precoz madurez provoca una
tendencia a baja tasa de crecimiento (Castro, 2004; Romana-Eguia 1999;
Mostafa, 2005; Webster, 2006, Villegas, 1990).
Así también, la coloración roja presente en algunas especies e híbridos de
tilapia tiene importancia comercial debido a su preferencia por los
consumidores, con respecto de las de color gris, sin embargo esta última tiene
mejor crecimiento en agua dulce que la primera (Muñoz, 2004). Estudios por
Aquacop et al (1989), García-Ulloa et al (2001) y Suresh et al (1992) indicaron
que la tilapia roja es adecuada para cultivos en agua marina, ya que tiene una
fácil adaptación a diferentes niveles de salinidad y la mayoría son
descendientes de cruzas con O. mossambicus, por ser altamente tolerante a
condiciones de alta salinidad. Estudios por Moreau et al (1999) y Muñoz et al
(2004) con O. niloticus, O. mossambicus, O. hornorum, O. aurea y sus híbridos,
encontraron que los híbridos obtuvieron mejores crecimientos que sus
progenitores bajo el mismo sistema de cultivo con agua de mar. Al igual,
estudios por Mostafa y Mair (2005) y Mateo et al (2004), encontraron que los O.
niloticus, O. mossambicus y sus híbridos presentaron heterosis positiva o vigor

híbrido, por lo que los hibrido (Oreochromis spp.) presentan mejores tasas de
crecimiento, mayor conversión alimenticia, mejor resistencia a parámetros
ambientales extremos, mayor crecimiento en salinidades elevadas que los
progenitores.
El híbrido de tilapia roja (Oreochromis spp.) proviene generalmente de cruzas
de O. mossambicus ó O. urolepis hornorum X O. niloticus ó O. aureus
(Webster, 2006). Uno de los híbridos más estudiado es la cruza de O. urolepis
hornorum X O. mossambicus conocido como tilapia roja variedad Florida que
es altamente adaptable al agua de mar (García-Ulloa, 2001; Mena, 2003;
Morales, 2003; Watanabe, 1985; Watanabe, 1990).
El Centro de Investigaciones Pesqueras (CIP) de La Habana, Cuba, desarrollo
un híbrido de tilapia roja proveniente de la cruza de dos especies: (O.
mossambicus X O. aureus) denominado variedad Cubana (Dra. IIiana Fraga
Castro, 2010, comunicación personal).
En México, el Centro de Enseñanza Investigación y Extensión en Ganadería
Tropical de la Universidad Nacional Autónoma de México CEIEGT-FMVZ-
UNAM en Veracruz, desarrollo un híbrido de tilapia roja proviene de la cruza de
cuatro especies: tilapia roja híbrida variedad Florida (O. urolepis hornorum X O.
mossambicus) X O. niloticus (mutante rojo) X tilapia híbrida Rocky Mountain (O.
niloticus X O. aureus) denominado variedad Pargo-UNAM. Con respecto a esté
último híbrido, estudios realizados por Muñoz et al 2009, encontraron que no
hay diferencia significativa en el crecimiento de la tilapia roja híbrida variedad
Pargo-UNAM, con O. niloticus (mutante rojo), pero si se presentó diferencia
significativa con mejores resultados que O. mossambicus (mutante rojo). Al
igual, estudios realizados por Escobar et al 2009, encontraron que la tilapia roja

hibrida variedad Pargo-UNAM presentó mejor ganancia de peso diaria que la
variedad Florida cultivada en sistema de recirculación con agua marina.
5.4 Dispersión geográfica del género Oreochromis
La distribución mundial del género Oreochromis, se localiza en la zona tropical
entre los trópicos de Cáncer (latitud 23.5°N) y Capricornio (latitud 23.5°S), en
América desde México hasta Argentina, Cuba y la mayor parte de África,
Madagascar, Ceylán e India (Morales, 2003; Pullin, 1982), esta zona
representa el 40% de la superficie de la tierra (Val, 2006). Sin embargo, las
especies más cultivadas a nivel mundial son O. niloticus, O. aureus y los
híbridos de combinaciones de éstos con O. mossambicus, esté último, por su
madurez precoz reproductiva fue la especie que primero se distribuyó
mundialmente, sin embargo, el cultivo de esta especie fue superada por O.
niloticus, ya que tiene mayor crecimiento en agua dulce y mayor control
reproductivo (Webster, 2006). En Latinoamérica, la tilapia es introducida 1940
en Panamá y Costa Rica desde Asia. De 1950 a 1970, se distribuyó
prácticamente en todos los países de América Latina (O. mossambicus, O. zilli,
O. rendalli, O. niloticus y tilapia roja híbrida). En los años 1990, Ecuador se ve
afectado por el virus Síndrome de Taura (TSV) y varias de sus granjas
camaroneras cambian al cultivo a tilapia roja híbrida (O. niloticus X O.
mossambicus) y O. niloticus con buenos resultados, lo que impactó
significativamente al mercado mundial a partir de 1993 con filetes frescos
(Zimmermann, 2004).
En México, los principales cultivos se llevan a cabo en agua dulce con las
especies O. aureus predominado en el sur del país y O. niloticus en el norte del

país, la tilapia es conocida comúnmente con el nombre de “Mojarra”
(Fitzsimmons, 2000).
5.5 Producción mundial
La captura pesquera no ha obtenido un crecimiento considerable en los últimos
años, como se menciono anteriormente, lo que a ha permitido que el sector de
la acuacultura se consolide con un crecimiento anual promedio de 6.9% en el
2006. La producción de tilapia a nivel mundial ha aumentado de manera
importante, produciendo 800,000 ton en 1990 y hasta 2, 600,000 ton en el
2007. Aunque la tilapia se cultiva en muchos países, la mayor producción se
concentra básicamente en China con el 75%, seguido de Egipto, Tailandia,
Filipinas, Taiwán, Singapur, Indonesia, Brasil, Panamá, Ecuador, Costa Rica y
Honduras, de los cuales, los principales países exportadores encontramos a
China, Taiwán, Tailandia y Honduras. Estados Unidos con el 90% de la
importación mundial, seguido de México, Arabia Saudita, Canadá, Kuwait,
Rusia (Josupeit, 2007; Josupeit, 2009; Josupeit, 2010).
5.6 Producción en México
En 1964, el Instituto Nacional de Pesca, introdujo al país, la tilapia O. aureus y
O. mossambicus. En 1978, se introduce O. niloticus, O. urolepis hornorum y
Zillii, procedente de Auburn, Alabama, EUA. En 1981, se introdujo dos
variedades híbridas de tilapia roja proveniente de Taiwán (tilapia roja variedad
Taiwán (O. mossambicus X O. niloticus)) y de Estados Unidos (tilapia roja
variedad Florida (O. urolepis hornorum X O. mossambicus)). Los alevines de
las dos variedades fueron criados hasta obtener 60 g en agua dulce y después

se aclimataron a 35 ‰ de salinidad en Arizona, EUA y posteriormente se
cultivaron en Puerto Peñasco, Sonora en sistema de raceway a una
concentración de 40 ‰ de salinidad. La tilapia roja variedad Taiwán creció poco
y en breve tiempo murió, la tilapia roja variedad Florida logró 600 g en 10
meses (Fitzsimmons, 2000; Morales, 2003).
A pesar de estos primeros intentos de cultivos en agua salada, el cultivo de
tilapia en México predomina O. aureus y O. niloticus en agua dulce y es la
especie más cultivado en México, teniendo un crecimiento promedio del 5% del
2003-2008 (INEGI, 2009), En el 2008, la producción de tilapia alcanzó 74,874
toneladas, siendo 71,018 toneladas de cultivo dulceacuícola y el resto de la
captura pesquera. El cultivo de tilapia se distribuye por todo el país, con
excepción de los estados de Baja California Norte y Sur. Los estados que
cuentan con la mayor participación del cultivo encontramos a Michoacán y
Veracruz con el 36% de la producción nacional, seguido de Sinaloa, Nayarit,
Tamaulipas y Tabasco (CONAPESCA, 2010).
5.7 Mecanismos homeostáticos
La factibilidad del cultivo de la tilapia roja a diferentes salinidades se debe en
gran medida a una serie de características a nivel fisiológico. En relación a este
concepto, el termino homeostasis, introducido por Cannon (1929), como un
mecanismo de adaptación o compensación de los organismos mediante
cambios fisiológicos para estabilizar su medio interno. La tilapia de acuerdo a
su fisiología interna, desde las células hasta los órganos, funcionan dentro de
un ambiente líquido, con concentraciones relativas de agua y de soluto, que
deben de mantenerse dentro de límites estrechos. El desecho metabólico

primario producido por la degradación de proteínas y ácidos nucleídos es el
amoniaco y es tóxico a los seres vivos. La tilapia regula estos desechos por
medio de procesos homeostáticos, básicamente por medio de la
osmorregulación (equilibrio del agua y concentraciones de solutos) y la
excreción (desecho de productos nitrogenados) (Cambell, 2005).
5.7.1 Osmorregulación
La capacidad de los peces de regular la composición química de sus líquidos
corporales mediante el equilibrio entre captación y pérdida de agua y solutos
con el medio ambiente se le denomina osmorregulación. En gran medida, este
movimiento es controlado y por medio del proceso ósmosis (movimiento a
través de una membrana con permeabilidad selectiva). Cuando la osmoralidad
de las soluciones es diferente, la de mayor concentración es hiperosmótica y al
diluida hipoosmótica. En la ósmosis, las soluciones fluyen de menor a mayor
concentración. Los peces osmoconformistas, son lo que no ejercen un ajuste
activo de su osmolaridad, dando que la concentración del líquido interno y del
externo es el mismo (isoosmótico). Por lo contario, los peces osmorreguladores
debe controlar su osmolaridad interna porque sus líquidos corporales no son
isosmóticos con el ambiente externo. La mayoría de los peces,
osmoconformista o osmorreguladores, no son capaces de tolerar cambios
importantes en la osmolaridad externa y se dice que son estenohalino, por lo
contrario los peces eurihalino pueden sobrevivir a grandes fluctuaciones de la
osmolaridad externa como la tilapia desde 0 a 70‰ (Cambell, 2005). Aunque el
grado de tolerancia depende del tiempo de exposición, edad, temperatura
ambiental (Wilson 1989).

5.7.1.1 Osmorregulación en peces marinos
El agua del océano es un ambiente intensamente deshidratante, porque tiene
mayor presión osmótica en promedio 1000 mOsm que los líquidos corporales
internos del pez de 300 a 500 mOsm, por lo que se consideran reguladores
hipoosmóticos y los solutos que predominan en el plasma sanguíneo son iones
inorgánicos cloro (CL-) y sodio (Na+). Los peces tienden a perder agua de sus
organismos por osmosis, por lo que equilibran la pérdida de agua bebiendo
grandes cantidades de agua del mar por la boca y excretan sales a través de
las células branquiales que son la principal vía de excreción, por ósmosis se
elimina el exceso de iones de cloro (CL-) y sodio (Na+) hacia el exterior y por
ósmosis en el intestino y los riñones se deshace el exceso de calcio, magnesio
y sulfato en forma iónica a través de las glándulas rectales y la orina (Cambell,
2005, Hill, 1980; 2006, Wilson, 1989). Aunque también algunos desechos
nitrogenados son excretados en orina, la mayor parte son eliminados como
amoniaco a través de las branquias, reduciendo así la cantidad de agua que se
perdería por la orina (Wilson, 1989).
5.7.1.2 Osmorregulación en peces de agua dulce
El agua dulce es un ambiente hidratante, porque tiene menor presión osmótica
en promedio 100 mOsm que los líquidos corporales internos del pez de 250 a
350 mOsm, por lo que se consideran reguladores hiperosmóticos y los solutos
que predominan en el plasma sanguíneo son igual que los peces marinos iones
inorgánicos cloro (CL-) y sodio (Na+), los peces constantemente acumulan
agua por ósmosis y pierden sales por difusión. Los peces mantienen su
equilibrio hídrico excretando grandes cantidades de orina muy diluida. Las

sales que se pierde por difusión en la orina vuelven a obtenerse por los
alimento y por captación a través de las branquias, las células de branquiales
transporta activamente cloro (CL-) y sodio (Na+) al interior (Cambell, 2005; Hill,
1980; Hill, 2006).
5.7.1.3 Peces de agua dulce cultivados en agua salada
El cultivo de la tilapia a estado limitada principalmente en agua dulce y en agua
en baja salinidad, sin embargo algunas especies exhiben un alto un grado de
tolerancia a la alta salinidad, lo que ha sugerido que podrían ser cultivadas en
aguas salobres, marinas o altas salinidades (Webster, 2006). Los peces
eurihalinos, como la tilapia que se desarrolla en aguas con diferentes
concentraciones de salinidad presentan cambios notables y rápidos en el
mecanismo osmorregulador. Cuando se encuentran en el océano
osmorregulan igual que los peces marinos, absorbiendo agua de mar y
excretando el exceso de sal por sus branquias (Cambell, 2005; Hill, 1980;
Wilson, 1989). Estos peces, emplean más energía en la regulación osmótica-
iónica a medida que aumentan los gradientes entre los líquidos corporales y el
medio ambiente (Hill, 1980; 2006).
5.7.2 Aclimatación
Los cambios adaptativos que ocurren en condiciones controladas de laboratorio
se le conoce como aclimatación, en las que sólo cambian uno o dos factores
ambientales (Wilson 1989). En cuanto más rápidamente entre el agua por
ósmosis y más rápidamente se pierdan las sales por difusión en el pez, más
energía metabólica habrá de invertir el pez para contrarrestar estas tendencias

y así mantener la homeostasis (Cambell, 2005; Hill, 1980; Hill, 2006). Se estima
que el pez utiliza hasta un 20% de la energía del metabolismo corporal
después de 4 días de adaptación en agua marina (Morgan, 1997). Por otro
lado, se ha encontrado también que con una lenta aclimatación la tilapia es
capaz de sobrevivir por periodos cortos en ambientes con concentraciones
letales, por ejemplo de un pH 4 y una concentración de 3.4 ppm de amonio
(NH4) (El-Sayed, 2006).
5.7.3 Aclimatación de tilapia a agua salada
El incremento gradual de la salinidad es el método más utilizado para aclimatar
a un gran número de especies al agua salada, aunque dependiendo de la
especie y de la línea genética, es necesario considerar tanto la talla o el peso
de los alevines, así como el protocolo que se utiliza durante el proceso de
aclimatación, ya que influye directamente en la supervivencia de los
organismos en la aclimatación. Estudios de Villegas (1990), encontró que la
tolerancia a la salinidad aumenta con el tamaño del pez. Al mismo tiempo, se
han utilizado diferentes métodos de aclimatación en diferentes especies de
tilapia; por ejemplo: Estudios de Al-Amoudi (1987), encontró que O. aureus, O.
mossambicus, O. spilurus, O. niloticus y el híbrido O. aureus X O. niloticus,
tolera la transferencia directa a 18‰ de salinidad, en cambio, con aclimatación
gradual a agua salada, produjo mejores tasas de supervivencia, logrando
tolerancia hasta 36-120‰ de salinidad en algunas especies, concluyó que la
especie O. aureus, O. mossambicus y O. spilurus requiere un tiempo de
aclimatación más corto de 4 días, a diferencia de O. niloticus y el híbrido O.
aureus X O. niloticus que requieren 8 días. Estos resultados coinciden con

estudios de Perschbacher, (1992), que encontró que para una aclimatación a
agua marina O. aureus necesita 4 días y O. niloticus necesita 8 días. Por otro
lado, Balarin y Haller (1982), encontraron que O. aureus soporta una
transferencia directa máxima de 27 ‰ y una transferencia gradual hasta 54 ‰.
En estudios de Yang et al, (2001), utilizaron una aclimatación de 5 ‰ cada 48
horas (14 días) en el cultivo de tilapia roja variedad Tailandia (Oreochromis
spp). Sin embargo, en estudios con O. spilurus, tilapia roja variedad Florida (O.
urolepis hornorum X O. mossambicus) y tilapia roja (O. niloticus x O. aureus)
realizados por Arboleda, (2006), Balcázar, (2004), Cabrera-B, et al (2001),
Hopking, et al (1989), Mena, et al (2002), Romana-Eguia M., (1999) y
Watanabe, et al (1988), concluyeron que lo más adecuado es un incremento
gradual de 5 ‰ cada 24 horas (7 días). Con todos estos trabajos se demuestra
que al incrementar gradualmente la salinidad, el pez desarrolla mecanismos
fisiológicos de adaptación que le permiten sobrevivir y crecer. Aunque la
transferencia directa al agua marina es posible, es necesario considerar el
posible impacto económico de este procedimiento, ya que el porcentaje de
supervivencia de los organismos puede disminuir notablemente.
5.7.4 Crecimiento de tilapia en agua salada
Las tilapias tal y como ya se mencionó, son peces eurihalinos, es decir, que
pueden vivir y desarrollarse en una amplia gama de niveles de salinidad, pero
los límites de tolerancia de una especie a otra varían considerablemente
(Mena, 2002; Mostafa, 2005), ya que cada línea genética puede presentar
diferente respuesta este cambio, debido a diferentes grados de interacción
entre genotipo y medio ambiente. Estudios realizado por Watanabe et al (1985)

encontraron que la especie O. aurea y O. niloticus tolera hasta 15 ‰ con una
supervivencia del 80-100% y con una mortalidad total por encima de 22 ‰, por
el contrario se ha encontrando que el híbrido de tilapia roja, tolera con buen
crecimiento salinidades de 32-40 ‰. También, estudios por Watanabe et al
(1990), con tilapia roja cultivada en jaulas en agua marina, obtuvieron una
ganancia diaria de peso 1.94 g/d y la supervivencia 97.9%, obteniendo mejores
resultados con densidades de 100 org/m³ contra densidades de 200 y 300
org/m³. Por otro lado, estudios de Mena et al (2002) en estanques de concreto
durante 189 días, encontraron que la tilapia roja con peso inicial de 73.3 g no
presentó diferencia significativa en el crecimiento entre una concentración de
0‰ y 15 ‰, con una ganancia diaria de peso de 2.69 a 2.24 g/d, pero al
ensayar con las concentraciones entre 25 ‰ y 35 ‰ obtuvieron menores
resultados con una ganancia diaria de peso de 1.60 a 1.49 g/día,
5.8 Cultivo en jaulas flotantes
El cultivo de peces en jaulas se considera como un sistema de cultivo de
producción intensivo, que permite criar gran cantidad de peces en un espacio
limitado desde 100 a 500 org/m³ (Hussain, 2004, Rojas, 2007). El cultivo en
jaulas esta influenciado principalmente, en orden de importancia, por la calidad
de agua, nivel nutricional del alimento, tipo de alimentación y genética de la
especie (Webster, 2006). En la fase de engorda se utilizan una serie de
técnicas de control, en las cuales, se debe monitorear la calidad de agua, valor
nutricional del alimento, cantidad de alimento suministrado, asimilación
nutricional del pez, ya que estos últimos impactan en la rentabilidad al
momento de la cosecha, por lo que se utilizan como indicadores de

productividad ciertas variables de crecimiento, como la estimación del peso
promedio de la población (W), la ganancia diario de peso (GDP), el factor de
conversión alimenticia (FCA), la tasa específica de crecimiento (TEC), el grado
de robustez (K) y la supervivencia (S). Los elevados rendimientos encontrados
en el cultivo en jaulas flotantes en el crecimiento también están condicionados
al intercambio de agua entre la jaula y el entorno que lo rodea. La rápida
expansión del cultivo de peces en jaula fue el resultado de la introducción y
diseminación de conocimientos de las técnicas básicas de cultivo y la
experiencia de otros países, sin embargo, el modelo decisivo que dio lugar al
éxito de cultivo fue el desarrollo de dietas completas nutricionales. El cultivo en
jaula tiene numerosas ventajas tecnológicas y económicas, dentro de las
ventajas de este tipo de cultivo encontramos, que se aprovechan medios
acuáticos existentes como ríos, lagos, lagunas, presas y bahías, así también se
puede obtener una mayor producción por unidad de volumen (kg/m3
), requiere
un menor tiempo en construcción de instalaciones y con costos de producción
menores, ya que no es necesario un mecanismo de aireación y fertilización, ya
que se aprovecha la productividad primaria del medio. El tamaño y materiales
que se emplean en la construcción de las jaulas es de acuerdo a los requisitos
de la especie, lo recursos financieros, la durabilidad de los materiales y en la
simplicidad en el manejo de la estructuras (Ono, 2007; Rojas, 2007). Las
unidades de producción deben ser de bajo costo, peso liviano y durabilidad
adecuada para resistir la fatiga mecánica por la acción de la corriente marina,
la corrosión, las cosechas y los depredadores. Las jaulas pueden tener una
variedad de formas geométricas (cilíndricas, cúbicas, rectangulares,
hexagonales u octagonales), encontrándose que el diseño cúbico y rectangular

promueven mejor el intercambio de agua. El tamaño de las jaulas se clasifican
en volumen alto (>18m³) y bajo (<6m³). Entre mayor sea su volumen menor
será la tasa de intercambio de agua y por lo tanto menor producción de kg/m3
,
en cambio en jaulas de bajo volumen tienen un mejor rendimiento y se pueden
manejar altas densidades de peces (hasta 250 kg/m³), por lo tanto, el tamaño
más adecuado sin un equipo especial es de 22.5 m³ (3 X 3 X 2.5 m) (Pullin,
1982; Ono, 2007). Se debe considerar la profundidad del agua en los sitios de
cultivo en jaulas y se ha demostrado que influye en el crecimiento de los peces,
por ejemplo: las jaulas en profundidades 0.5 a 1.5 m los peces tienen menor
crecimiento que jaulas con una profundidad de cerca de 6 m, por lo que se
recomienda que al menos se tenga 0.75 m de profundidad en los sitios donde
se van a instalar las jaulas (Pullin, 1982). La zona de colocación de la jaula es
decisiva para el éxito del cultivo y es fundamental realizar una exhaustiva
evaluación de calidad de agua y profundidad antes de la instalación de las
jaulas. También se debe considerar la luz de malla en la red de la jaula y está
en relación al tamaño del pez a cultivar, ya que no se debe permitir escapar a
los peces y al igual no se debe utilizar luces de malla muy pequeños, ya que
después de un tiempo sumergidas las redes en el agua, se adhieren
organismos que crecen en la malla, reduciendo el intercambio de agua y por lo
consiguiente disminuye la calidad óptima del agua (Ono, 2007). Estudios
realizados por Dan et al (2000), obtuvieron mejores resultados en cultivo en
jaulas que en estanque con O. niloticus y esto se puede atribuir a que el cultivo
en jaulas esta beneficiado por el alimento natural y una mayor circulación de
agua, esto coincide también con estudios de Yang et al (2001) con O. niloticus
en agua dulce, que obtuvo mejores resultados en cultivo en jaulas con una

aireación (5 h por la noche) que en jaulas sin aireación (GDP de 3.57 g/d, FCA
de 1.3 contra GDP de 2.75 g/d, FCA de 1.64 respectivamente).
5.9 Condiciones medioambientales óptimas
Como ya se dijo anteriormente, el crecimiento de los peces depende en gran
parte de la calidad de agua. En las jaulas los factores negativos de calidad de
agua que más afectan a los peces, son el oxígeno en bajo niveles y alto niveles
de desechos metabólicos (Webster, 2006). Cuando el pez es afectado por la
calidad del agua, desarrolla mecanismos fisiológicos para adaptarse como son:
reduce su capacidad respiratoria y metabólica, lo cual, provoca un lento
crecimiento (Castro, 2004). De acuerdo al sistema de cultivo en jaula adoptado,
se debe considerar que no es posible controlar las condiciones físico-químicas
del agua, por lo que es necesaria la colocación del cultivo en la zona que
ofrezca de manera permanente la calidad del agua dentro de los límites de
tolerancia de la especie y una limpieza constante en la malla de la jaula.
5.10 Densidad de cultivo
La densidad afecta directamente el desarrollo de los organismos en los
sistemas cultivo controlado, ya que entre mayor sean los organismos o la
biomasa por metro cúbico, es menor el tiempo que perdura las condiciones
físico-químicas del agua dentro de los límites de tolerancia de la especie.
Estudios realizados por Cruz et al (1991) en jaulas de agua marina con O.
spilurus, utilizando densidades de 200, 250 y 300 org/m³ encontraron mejores
resultados de crecimiento con 200 org/m3
. Estudios realizados con tilapia roja
hibrida y tilapia roja Sterling (O. niloticus) en Colombia (1995), obtuvieron que

la densidad óptima en jaulas flotantes en agua dulce es de 150 org/m³ o 50
kg/m3
y en estanque de 20 org/m³ o 6-8 Kg/m3
(Rakocy, 2006). Estudios más
recientes por Wedler et al (2006), en cultivo en jaulas en agua marina con
tilapia roja (Oreochromis spp.), obtuvieron mejores resultados con 80 org/m³ y
una densidad máxima de 200 org/m³ o 75 kg/m3
. Por otro lado, Balcázar et al
(2004) no encontraron diferencia significativa en cultivo en jaulas en agua con
tilapia roja (O. mossambicus x O. niloticus) marina con densidades de 100, 200
y 300 org/m³.
5.11 Alimentación
La tilapia acepta fácilmente alimento balanceado, residuos orgánicos y
agrícolas (Watanabe, 1987). El porcentaje de proteína en el alimento, es un
factor importante para cada etapa de vida de la tilapia, se han demostrado que
los niveles óptimos de 40%, 30% y 24% de valor proteico respectivamente,
para las fases de iniciación, pre-engorde y engorde son los más adecuados
(Salazar, 2005; Webster, 2006). Otro factor importante para una alimentación,
es el número de raciones a proporcionar durante el día, cuando se tienen
cantidades ilimitadas de alimento, los peces lo consumen con mayor rapidez
que cuando tienen una cantidad limitada, esto puede significar una digestión
menos completa, ya que el alimento pasa muy rápido por el intestino y para
una buena digestión es conveniente proporcionar de 2 a 5 veces al día
(Morales, 2003). Estudios de Mena et al (2002), manejaron la alimentación con
35% de proteína a razón de 6% de la biomasa para organismos 1-76 g y para
organismos más grandes a razón de 2% con 30% de proteína. Por otro lado,
Castro et al (2004), Hussain, 2004, Ponce et al (2004) y Valbuena et al (2006),

manejaron a razón de 3% de la biomasa durante todo el cultivo, distribuido en
dos raciones al día. Cada dos semanas se recomienda un muestreo de peces
para monitorear el crecimiento y comprobar que el crecimiento se ajustar la
tasa de alimentación (Hussain, 2004). En cultivo en jaula, es recomendable un
monitoreo estricto en la alimentación, porque se presenta pérdida de alimento
por corrientes pasivas que inducen que el alimento salga de la jaula y al igual,
un control estricto en la distribución de raciones durante el día, buscando evitar
que el alimento permanezca más de 1.5 minutos sin ser consumido (Nicovita,
2003).
5.12 Estrés y enfermedades
El estrés en los peces, sea definido como la alteración del equilibrio interno
(homeostasis) y es el primero paso para la aparición de enfermedades. Por lo
cual, el nivel de estrés y la flexibilidad de la homeostasis, es importante para la
supervivencia y el crecimiento. El estrés puede ser causado por la calidad
nutricional, sanidad en los peces, cambios físicos-químicos del agua y en
cultivos en altas densidades lo que genera el “estrés social” por la interacciones
social y jerarquías, generalmente son bacterias como Streptococcus iniae,
Aeromonas hydrophila, Straphylococcus epidermidis, Mycobacterium marinum
y parásitos protozoarios como Ichthyobodo Cryptobia banchialis, Amyloodinium
ocellatum (El-Sayed, 2006). Frecuentemente, la aparición de enfermedades
puede evitarse manteniendo una alta calidad del ambiente y reduciendo el
estrés por manejo. La intensidad de estos factores puede disminuir en un
sistema de cultivo en jaula, ya que se realiza un constante intercambio de
agua.

VI. MATERIALES Y MÉTODOS
Esté trabajo de investigación se desarrolló durante dos años consecutivos:
ensayo 2010 y ensayo 2011, para ambos ensayos se realizó lo descrito en el
experimento 1 y 2.
Experimento 1: Adaptación a agua marina.
Experimento 2: Etapa de engorda en jaulas flotantes en agua marina.
En el año 2010, se utilizaron dos especies diferentes con dos tratamientos y en
el año 2011, se utilizó una especie con tres tratamientos, que se describen a
continuación.
6.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina
Los experimentos del proceso de aclimatación se realizaron en las siguientes
instalaciones: Para el año 2010, se utilizaron los servicios del Centro
Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional CIIDIR-
IPN Unidad Sinaloa, localizado en Guasave, Sinaloa, a 25°32'50.53" latitud
Norte y 108°28'54.98" longitud Oeste, donde el clima se clasifica como seco
muy cálido y cálido (BS(h´)), con temperaturas promedio anual de 22° a 26°C,
la precipitación pluvial anual de 400 a 600 mm. y las instalaciones de la
empresa SCPP y Ostrícola Faro de Pabellón S.C de R.L., localizada en el
campo pesquero las Aguamitas, Navolato, Sinaloa, a 24°33'49.9" latitud Norte y
107°47'31.68" longitud Oeste, donde el clima se clasifica como seco muy cálido
y cálido (BS(h´)), con temperaturas promedio anual de 22° a 26°C, la
precipitación pluvial anual de 400 a 600 mm. En el año 2011, se trabajó en las
instalaciones del centro de cuarentena del Centro de Ciencias de Sinaloa
localizado en Culiacán, Sinaloa, a 24°49'45.16" latitud Norte y 107°23'06.32"

longitud Oeste, donde el clima se clasifica como semi-seco muy cálido y cálido
(BS1(h´)), con temperaturas promedio anual de 24° a 26°C, la precipitación
pluvial anual de 600 a 800 mm (INEGI, 2009).
Organismos experimentales
En julio del año 2010, se adquirieron 3,000 alevines masculinizados con 17α-
metiltestosterona de tilapia roja variedad Cubana (Figura 1), con peso promedio
de 0.2 g del Centro de Investigaciones Pesqueras (CIP) de La Habana, Cuba y
900 alevines masculinizados de tilapia roja de variedad Pargo-UNAM (Figura
2), con peso promedio de 35.8 g aclimatados a 20‰, facilitados por la empresa
Biomisis S.A. de C.V de Mazatlán, Sinaloa. En junio del año 2011, se
adquirieron del Centro de Investigaciones Pesqueras (CIP) de La Habana,
Cuba, 9,000 alevines de tilapia roja variedad Cubana (Figura 1), siendo 2,200
alevines masculinizados y 6,800 sin masculinizar, ambos con peso promedio
de 1.02 g.
Figura 1: Ejemplar de tilapia roja variedad Cubana.

Figura 2: Ejemplar de tilapia roja variedad Pargo-UNAM.
Protocolo del proceso de adaptación
El proceso de adaptación a agua marina, se realizó con una aclimatación
paulatina durante 10 horas de la siguiente manera: el primer día se incrementó
de 0 ‰ a 10 ‰, el segundo día de 10 ‰ a 20 ‰, el tercer día de 20 ‰ a 25 ‰,
el cuarto día de 25 ‰ a 30‰ y el quinto día de 30 ‰ a 35 ‰, al término de
cada día, se realizó un recambio del 90% de agua con el último grado salinidad
y se mantuvieron en la misma concentración durante 14 horas por la noche.
Este mismo proceso de adaptación se reprodujo durante los años 2010 y 2011
para cada una de las especies ensayadas.

El volumen de agua marina a utilizar para el incremento de la concentración de
salinidad con respecto al volumen, se determinó utilizando la ecuación de
disolución (Whitten, 2008):
V1 = V2 X M2
M1
Donde:
V1: Volumen de agua marina a añadir (L)
V2: Volumen de agua del contenedor a preparar (L)
M1: Diferencia entre la salinidad del agua marina y la salinidad del agua del
contenedor (‰)
M2: Diferencia entre la salinidad a lograr del agua del contenedor y la salinidad
del agua del contenedor (‰).
Medición de variables físico-químicas
Durante cada uno de los procesos de aclimatación. Se realizaron tres lecturas
diarias de temperatura (°C), oxígeno disuelto (mg/L), salinidad y pH en las tinas
de aclimatación y en pre-engorda (9:00, 12:00 y 18:00). Se utilizó un analizador
de agua multivariable YSI® modelo Dissolved Oxigen 55 para la temperatura y
oxígeno disuelto, un refractómetro marca BioMarine Aguafauna® modelo
ABMTC para la salinidad (‰) y un potenciómetro marca Hanna Instruments®
para el pH. También se midieron los niveles de NH4 utilizando tiras reactivas
marca LaMotte® QAC QR TEST STRIPS CODE 2951.
6.1.1 Adaptación variedad Cubana año 2010
Etapa de pre-engorda
Debido a que los 3,000 alevines de tilapia roja variedad Cubana (Figura 1),
presentaron un peso promedio (0.2 g) menor al previsto para llevar a cabo el

proceso de adaptación que es de 5.0 g, estos se mantuvieron en etapa de pre-
engorda en dos tanques circulares de geomembrana de 3 m de diámetro por
1.2 m de alto de 7000 L durante 30 días de manera aleatoria, bajo una
estructura de invernadero, a razón de 1,500 alevines por tanque, a una
densidad de 0.04 g/L en instalaciones del CIIDIR-IPN. Los tanques fueron
llenados con agua de pozo de 22 m de profundidad. Se mantuvo una aireación
continua y se hizo recambios diarios de agua del 20%, se eliminó las heces y
alimento sobrante mediante un sifoneo diario.
La estimación del peso promedio vivo (W) de la población, se realizó a través
de biometrías de los peces cada 7 días, efectuando muestreos aleatorios con
remplazo del 5% por cada tanque. El peso se estimó por medio de 3 pesadas
por muestreo utilizando una balanza de mesa marca Ohaus® modelo Scout
Pro. Los organismos fueron alimentados con alimento balanceado marca Silver
Cup®, la ración fue ajustada cada 7 días con respecto al peso promedio vivo
(W) a razón de 15 %. Para los organismos de 0-10 g se distribuyó la ración en
13 veces durante el día y se utilizó alimento tipo migaja fina con 52% de
proteína.
Experimento piloto del proceso de adaptación
Paralelamente a la etapa de pre-engorda, se realizó un experimento piloto de
aclimatación con una muestra de los alevines recibidos de la variedad Cubana,
de acuerdo al protocolo del proceso de adaptación mencionado durante 5 días
en el Laboratorio Húmedo del CIIDIR-IPN. Se tomo una muestra de manera
aleatoria de acuerdo a un diseño completamente al azar de 20 alevines (10
alevines por cada tanque) de variedad Cubana con un peso de 1.33 ± 0.03 g.

Los peces se colocaron en dos peceras (52 cm largo X 34.5 cm ancho X 30 cm
alto) con 30 L de agua de pozo de cada tanque, a una densidad de 0.87 g/L. Se
mantuvo aireación continua, se eliminaron las heces y alimento sobrante
mediante sifoneo diario. El agua marina se obtuvo en un contenedor contiguo a
las peceras. Se alimentó a razón de 15 % del peso vivo, distribuyéndose en 10
raciones durante el día.
Proceso de adaptación
Una vez que los alevines masculinizados de tilapia roja variedad Cubana
adquirieron el peso promedio de 4.99 ± 0.16 g, se colocaron a una densidad de
(2.14 g/L) en un tanque circular de geomembrana de 3 m de diámetro por 1.2 m
de alto de 7000 L y se siguió el proceso de adaptación de acuerdo al protocolo
mencionado. El agua marina se obtuvo de la playa Las Glorias, Guasave, Sin.,
mediante un camión tipo pipa.
6.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010
Se utilizaron 900 alevines masculinizados de tilapia roja variedad Pargo-UNAM
(Figura 2), con un peso promedio de 35.84 ± 0.61 g a una densidad de 4.61
g/L. Se colocaron en un tanque circular de fibra de vidrio de 3 m de diámetro
por 1.2 m de alto con un volumen de 7000, al pie de playa perteneciente a la
SCPP y Ostrícola Faro de Pabellón S.C de R.L, y se siguió el proceso de
adaptación de acuerdo al protocolo. El agua marina se obtuvo de la bahía
Altata-ensenada del Pabellón y el agua dulce se obtuvo de 4 pozos rústicos de
2 m de profundidad construidos a 100 m de la orilla del mar, con una salinidad
entre 5-11 ‰, con un abasto de 305 L cada 3 horas.

Debido que los alevines de tilapia roja variedad Cubana, presentaron un peso
promedio (1.2 g) menor al previsto, se mantuvieron durante 15 días en la etapa
de pre-engorda, se utilizaron 12,000 alevines mixtos (macho y hembras)
variedad Cubana y 2,500 alevines 100% machos variedad Cubana, en un
tanque circular de fibra de vidrio de 3 m de diámetro por 1.2 m de alto de 8000
L con agua dulce, con aireación contante y se hizo recambios diarios de agua
del 90%, se eliminó las heces y alimento sobrante mediante un sifoneo diario.
En una densidad de 2.6 g/L, hasta que alcanzar un peso de 4.54 ± 0.92 g.
Proceso de adaptación
Una vez que los alevines masculinizados de tilapia roja variedad Cubana
adquirieron un peso de 4.54 ± 0.92 g, se mantuvieron en el mismo tanque de la
etapa de pre-engorda y se dio inicio a el proceso de adaptación de acuerdo al
protocolo ya mencionado. El agua marina se obtuvo del pie de la bahía de
Altata–ensenada del Pabellón en la cercanía del poblado de Aguamitas,
Navolato, Sinaloa y fue trasladada a las instalaciones del centro de cuarentena
mediante un camión tipo pipa.
6.2 Experimento 2: Etapa de engorda
Sitio experimental
La etapa de engorda se realizó con la ayuda de la empresa SCPP y Ostrícola
Faro de Pabellón S.C de R.L., localizada en el campo pesquero las Aguamitas,
Navolato, Sinaloa, en la bahía de Altata-ensenada del Pabellón.

Los ensayos de la etapa de engorda del cultivo en jaulas se realizó durante los
años 2010 y 2011.
6.2.1 Cultivo de engorda en jaulas flotantes año 2010
Diseño experimental
De manera aleatoria y de acuerdo a un diseño completamente al azar (Steel y
Torrie, 1988), se sembraron 2,160 alevines de variedad Cubana durante 58
días y 810 alevines de variedad Pargo-UNAM durante 30 días en seis jaulas
integrando tres replicas para cada uno de los siguientes tratamientos: 1) 80M1:
tilapias rojas masculinizadas variedad Cubana con un peso promedio inicial de
W=10.69 ± 1.20 g, a una densidad de 80 org/m³, 2) 30M: tilapias rojas
masculinizadas variedad Pargo-UNAM con peso promedio inicial de W=35.84 ±
0.61 g, a una densidad de 30 org/m³.
Diseño experimental
De manera aleatoria y de acuerdo a un diseño completamente al azar (Steel y
Torrie, 1988), se sembraron 8,910 alevines de variedad Cubana durante 104
días en nueve jaulas integrando tres réplicas para cada uno de los siguientes
tratamientos: 1) 80M2: tilapias rojas masculinizadas variedad Cubana con un
peso promedio inicial de W=8.39 ± 0.36 g, con una densidad de 80 org/m³, 2)
80MH: tilapias rojas sin masculinizar (machos y hembras) variedad Cubana con
un peso promedio inicial de W=8.39 ± 0.36 g, con una densidad de 80 org/m³,
3) 170MH: tilapias rojas sin masculinizar (machos y hembras) variedad Cubana

con un peso promedio inicial de W=8.39 ± 0.36 g, con una densidad de 170
org/m³.
Unidades experimentales utilizadas en el año 2010 y 2011
En los cultivos de engorda durante los años 2010 y 2011, se utilizó el mismo
diseño de jaulas, el cual está compuesto por jaulas de 3X3 m con un bolso con
dimensiones de 3 X 3 X 1.2 m de red plástica de poliéster impregnadas de PVC
con luz de malla 5 X 5 mm (tanque Sansuy™) (Figura 3), utilizando un metro de
columna de agua por bolso, resultando 9 m³ de área de cultivo. La jaula contó
una estructura de sostén y flotación hecha de tubería de PVC (Duralón™) de 4
pulgadas de diámetro formado dos cuadros de 3 X 3 m, para su unión se
utilizaron codos y se pegaron con pegamento especifico para PVC (IPS Weld-
On®) en todos los extremos. Los dos cuadros se pegaron entre si de manera
paralela por medio de conexiones tipo “T” con una separación de 20 cm. Se
utilizaron el cuadro inferior para mantener la flotabilidad y el bolso fue sujeto
junto con una red anti-pájaros de 10 X 10 mm en el cuadro superior de la jaula.
Para garantizar los 9 m³ de área de cultivo por jaula, se sujeto en los extremos
del fondo de cada bolso un par de lastres fabricados con tubería de PVC de
dos pulgadas de diámetro por tres metros de largo, rellenos de concreto, y
colocados en forma paralela. Para inmovilizar las jaulas, se utilizaron dos sogas
de polipropileno de una pulgada por 100 m con un ancla de hierro de una
pulgada en cada extremo. Se colocaron las sogas en forma paralela a 3 m de
distancia y entre estas se sujetaron 6 jaulas en el año 2010 y 9 jaulas en el año
2011, quedando linealmente acomodadas con una separación 1 m. Por dentro
de cada jaula, se sujeto un comedero en el centro de forma cuadrada de 1 X 1

m de PVC de 2 pulgadas con flotabilidad, en el cual mantenía el alimento
extruido dentro de la jaula. Se colocaron las jaulas con 8 días de anticipación
en el área más profunda de la bahía (dentro de los límites de la empresa), con
una profundidad de 5 m, para verificar la flotabilidad.
Figura 3: Jaula flotante 3X3 m con un bolso 3 X 3 X 1.2 m con luz de malla 5 X
5 mm (tanque Sansuy™).
Alimentación en el año 2010 y 2011
Los peces fueron alimentados con alimento balanceado marca Silver Cup® y la
ración fue ajustada cada 14 días con respecto al promedio de peso vivo (W) a
razón de 10 % (0-30 g), 5 % (30-100 g), 3 % (mayores de 100 g). Para
organismos de 0-30 g alimento tipo migaja fina de 52% de proteína (14% grasa,
1.2% fibra, 11% ceniza, 10% humedad), para organismos de 30-50 g se
alimentó con migaja gruesa de 45% (14% grasa, 2.5% fibra, 11% ceniza, 10%
humedad), para organismos de 50-100 g se utilizó extruido 32% (5% grasa, 5%
fibra, 5% ceniza, 10% humedad) y en organismos mayores de 100 g se usó

extruido 25% (5% grasa, 6% fibra, 5% ceniza, 10% humedad), la ración se
distribuyó cuatro veces durante el día (8:00, 12:00, 16:00, 18:00).
Para calcular la cantidad de alimento a suministrar en gramos (F), se determinó
con la siguiente formula:
F= N X W X P
Donde:
F= Alimento a suministrar por día (g)
N= Número de organismos vivos
W= Peso promedio vivo de los organismos (g)
P= Porcentaje de peso vivo del organismo
Toma de parámetros físico-químicos
Durante el transcurso de los experimentos 1 y 2 se realizaron tres lecturas
diarias (9:00, 12:00 y 18:00), de los parámetros de oxígeno disuelto (mg/L),
temperatura (°C), salinidad (‰), pH, amonio (ppm).
Toma de parámetros biométricos en el año 2010 y 2011
Se efectuaron muestreos biométricos cada 14 días en el año 2010 y cada 21
días en el año 2011, los muestreos fueron aleatorios con remplazo del 10% de
la población en cada repetición. Para obtener el peso promedio vivo (W) en
cada muestreo se realizaron 3 pesadas y se utilizó una balanza colgante marca
CRT® modelo Ocs-20. Para obtener la longitud total (L) se utilizó un ictiómetro
de acuerdo al método utilizado por Sparre et al (1997), midiendo la longitud
total del extremo de la boca al extremo posterior de la aleta caudal del lado
izquierdo del pez. Para determinar el número de organismos a evaluar en cada
muestreo, se utilizó como referencia la fórmula de Scheaffer et al (1987) y se

obtuvo que el 4.3% de muestra es representativo de la población. Para
incrementar la confiabilidad del muestreo se utilizó el 10% de muestra para el
cálculo de peso promedio vivo (W) y con el 20% de muestra para longitud total
(L):
n= __ N X σ²
.
N-1 (D) + σ2
Donde:
N= Número de peces sembrados en la jaula
σ²
= Varianza de la población sustituida por la varianza de una muestra
aleatoria de 7 organismos (σ²
=S²).
D= Precisión en la formula (D=B²/4)
B= Error estándar de una muestra aleatoria de 7 organismos.
Calculo de variables de crecimiento y alimentación en el año 2010 y 2011
Para la estimación del preso promedio vivo (W) en gramos de la población, se
utilizó la siguiente formula:
W = Peso total de organismos de la muestra
Número de organismos
Se calculó la ganancia diaria de peso (GDP) en gramos por día, con la
siguiente formula (Gallo, 2007), que estima la ganancia de peso en el tiempo.
GDP= (Peso promedio vivo final – Peso promedio vivo inicial)
Días transcurridos
Para determinar el factor de conversión alimenticia (FCA) se utilizó la fórmula
(Watanabe, 1985).
FCA= Cantidad de alimento suministrado _
Incremento de peso de la población
En la etapa del cultivo de pre-engorda y engorda en jaulas, se utilizó el mismo
término FCA, sólo que en etapa de engorda representó el factor de conversión

alimenticia aparente, ya que se presentó un aporte de alimento natural debido a
la productividad natural del agua marina.
Se calculó la tasa específica de crecimiento (TEC), de acuerdo a la siguiente
formula (Watanabe, 1985), que estima la velocidad de crecimiento en peso.
TEC = (LnWf –LnWi) X 100
t
Donde:
TEC = Tasa específica de crecimiento
Ln Wf= Logaritmo natural de peso final
Ln Wi= Logaritmo natural de peso inicial
t= Tiempo (días)
Se calculó el factor de condición (K) para obtener el grado de robustez del pez,
mediante la siguiente fórmula (Likongwe, 1996; Sparre, 1997; Pauly 1987):
K= W X 100
L³
Donde:
K= Factor condición (%)
W= Peso (g)
L= Longitud del pez (cm)
Al final del experimento, se sacrificaron los peces por el procedimiento de
hipotermia mediante la colocación de los mismos en contendores con agua e
hielo picado y se calculó el porcentaje de supervivencia (S) de acuerdo a la
siguiente formula (Gallo, 2007; Likongwe, 1996):
S= _Número final de organismos_ X 100
Número inicial de organismos

Análisis estadístico en el 2010 y 2011
Se estimó el tipo de crecimiento de cada variedad (relación longitud-peso) con
la ecuación de regresión no lineal de tipo exponencial, mediante la
transformación logarítmica de los datos para realizar un análisis de regresión
lineal simple, análisis de correlación y la transformación de antilogaritmo de “a”,
manejando como variable independiente la longitud (cm) y como variable
dependiente el peso (g). Se estimó el incremento de peso durante el tiempo
(relación días de cultivo-peso) con la ecuación de regresión lineal, manejando
como variable independiente días de cultivo y como variable dependiente peso
(g). Para la comparación múltiple entre medias se utilizó la prueba de Tukey
(Steel y Torrie, 1988), utilizando el análisis el programa Statistical Analysis
System (SAS), con un nivel de significancia de P<0.05.
La ecuación de la relación longitud-peso se obtuvo mediante el modelo
estadístico de regresión no lineal de tipo exponencial, que es el tipo de curva
que más se asemeja al crecimiento biológico de la tilapia (Mena, 2002; Steel y
Torrie, 1988; Sparre, 1997):
Y = β0Xᵝ¹, ecuación no lineal ó
log (Y) = log a + b * log X, ecuación lineal con datos transformados
Donde:
Y= Valor representativo del peso de una población
X= Valor representativo de la longitud de una población
β0= Se sustituye por “a” (punto donde la línea recta corta el eje de las Y)
β1= Se sustituye por “b” (coeficiente de regresión)

La ecuación de la relación días de cultivo-peso se obtuvo mediante el modelo
estadístico de regresión lineal (Steel y Torrie, 1988):
Y = a + b X
Donde:
Y= Valor representativo del peso de una población
X= Valor representativo en días de cultivo de una población
a= Intercepto o punto donde la línea recta corta el eje de las Y
b= Coeficiente de regresión

VII. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
7.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina
Del experimento piloto, ensayado paralelamente al cultivo de pre-engorda del
lote completo de tilapias, se determinó que el peso mínimo para aclimatar este
híbrido oscila entre 1.33 ± 0.03 g con una longitud total de 3.5 cm. Se obtuvo
una supervivencia del 100%, dato que nos indica que este híbrido es capaz de
tolerar el proceso de aclimatación gradual de agua dulce a agua marina con el
protocolo descrito de aclimatación en 5 días con un peso inferior a los 5 g.
En el Tabla 1, se presentan los valores de las variables de crecimiento durante
el periodo de pre-engorda en agua dulce y en la Figura 4 se muestra la curva
de crecimiento en esta etapa. Una vez que los alevines adquirieron un peso
promedio de 4.99 ± 0.16 g en día el 21 del cultivo, se sometieron al proceso de
aclimatación donde se obtuvo una supervivencia final del 100% y un peso final
de 10.69 ± 1.20 g. Los parámetros fisicoquímicos del agua se mantuvieron
dentro de los rangos óptimos de la especie con una temperatura de 29.48 ±
2.59 °C, oxígeno disuelto de 5.17 ± 0.36 mg/L y pH de 8.66 ± 0.05.
Tabla 1. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-engorda de la tilapia
roja variedad Cubana año 2010.
Días de
cultivo
W GDP FCA TEC S (%)
0 0.20 - - -
7 0.47 ± 0.08 0.05 14.40 6.25
14 1.67 ± 0.26 0.09 9.00 3.90
21 4.99 ± 0.16 0.48 15.70 6.81
30 10.69 ± 1.20 0.64 8.60 3.72 100.00
Media ± DE, W=Peso promedio vivo, GDP= Ganancia diaria de peso (g/d), FCA= Factor de
conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, S=Supervivencia (%).

Figura 4: Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia roja
variedad Cubana en la etapa de pre-engorda en el año 2010.
7.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010
El proceso de adaptación se inició con organismos pre-adaptados a una
salinidad de 20‰. Se obtuvo una supervivencia del 100% de los organismos
con un peso de 25 g y 9.0 cm de longitud. Este resultado nos indica que este
híbrido es capaz de tolerar el proceso de aclimatación gradual a agua marina
de 3 días en etapa temprana de crecimiento. Durante la adaptación los
parámetros fisicoquímicos del agua se mantuvieron dentro de los rangos
óptimos de la especie con una temperatura de 30.28 ± 0.26 °C, oxígeno
disuelto de 5.6 ± 0.27 mg/L y pH de 8.4 ± 0.08.
En el Tabla 2, se presentan los valores de las variables de crecimiento durante
el periodo de pre-engorda y aclimatación de 15 días, en la Figura 5 se muestra

la curva de crecimiento de esta etapa. Después de una pre-engorda de 15 días
una vez que los alevines adquirieron un peso promedio de 4.54 ± 0.92 g en el
día 10 de cultivo, se sometieron al proceso de aclimatación obteniendo una
supervivencia final del 100%. Los parámetros fisicoquímicos del agua se
mantuvieron dentro de los rangos óptimos de la especie con una temperatura
de 29.86 ± 0.65 °C, oxígeno disuelto de 6.13 ± 0.7 mg/L y pH de 8.15 ± 0.2.
Tabla 2. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-engorda de la tilapia
roja variedad Cubana año 2011.
Días de
cultivo
W GDP FCA TEC S (%)
0 1.02 - - -
5 1.78 ± 0.75 0.15 1.00 11.14
10 4.54 ± 0.92 0.55 0.87 18.73
15 8.39 ± 0.36 0.77 0.69 13.90 100.00
Media ± DE, W= Peso promedio vivo, GDP= Ganancia diaria de peso (g/d), FCA= Factor de
conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, S=Supervivencia (%).
Figura 5: Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia roja
variedad Cubana en la etapa de pre-engorda año 2011.
Durante el proceso de adaptación (experimento 1) a agua marina en los
ensayos efectuados durante los años 2010 y 2011 con ambas variedades, se
observa que la tilapia roja hibrida tiene una supervivencia del 100% al

realizarse una aclimatación gradual a agua marina a 35‰. Siguiendo el
protocolo mencionado que es similar al utilizado por Cabrera-B, et al (2001),
Hopking, et al (1989), Mena, et al (2002) y Watanabe, et al (1988). Aunque no
es posible hacer el análisis estadístico entre las variedades, se puede observar
que para la variedad Cubana se asegura tener una supervivencia aceptable en
el proceso de adaptación a partir de 5 g. El resultado obtenido en el
experimento piloto con organismos de 1.33 g, nos indica que posiblemente este
proceso pueda llevarse a cabo con organismo menores a 5 g. Estos resultados
coinciden con los obtenidos por Castro, 2004; Romana-Eguia 1999; Mostafa,
2005; Muñoz 2009; Watanabe, 1990; Webster, 2006, Villegas, 1990, donde
estos investigadores obtuvieron una alta supervivencia con la tilapia roja
híbrida, donde concluyen que esté pez híbrido desarrollan mecanismos
fisiológicos de adaptación que les permiten sobrevivir y crecer después de ser
transferido a agua marina y conforme se incremento la concentración de sal en
el agua el pez osmorregula igual que los peces marinos. Durante los dos
experimentos de aclimatación en los dos años trabajados, se obtuvo un
crecimiento similar durante el proceso de aclimatación y se observó que el pez
continua creciendo adecuadamente en la etapa de pre-engorda. En el 2010 del
día 21 al día 30 el pez creció 5.7 g en 9 días, con una GDP de 0.64 y un TEC
de 8.60 al día 30 (Tabla 1) y en el año 2011 del día 10 al día 15 creció de 3.85
g en 5 días con una GDP de 0.78 y un TEC de 13.9 al día 15 (Tabla 2). Es de
resaltar que en ambos experimentos iniciando con pesos similares el proceso
de aclimatación, la tasa específica de crecimiento (TEC) disminuye,
posiblemente debido a que el cambio en la salinidad esta provocando un gasto
energético en el organismo. Por otro lado, su FCA aumenta, haciendo su

conversión alimenticia menos eficiente. La alta supervivencia obtenida nos
indica que el organismo se está adaptando fisiológicamente a las nuevas
condiciones del medio. El proceso de adaptación de la variedad Pargo-UNAM
se logra en solo tres días, cuando se comienza con tilapias mayores a 5 g, ya
que los organismos se encuentran ontogénicamente mejor adaptados.
7.2 Experimento 2: Etapa de engorda
En el Tabla 3, se presentan los valores obtenidos de las variables biométricas
de tilapia roja variedad Cubana durante el periodo de engorda en agua marina.
Los parámetros fisicoquímicos del agua se mantuvieron dentro de los rangos
óptimos de la especie con una temperatura de 29.98 ± 1.99 °C, oxígeno
disuelto de 5.7 ± 0.65 mg/L, salinidad de 35.02 ± 0.19 y pH de 8.56 ± 0.21.
Tabla 3. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en ciclo de engorda de tilapia roja
variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo año 2010 80M1: 80
org/m³, machos).
Días de
cultivo
W (g) L (cm) GDP FCA TEC K S (%)
0 10.69 ± 1.20 5.33 ± 1.66 - - - - -
14 24.64 ± 2.05 10.07 ± 0.12 1.00 1.24 6.00 2.42 -
28 49.63 ± 4.07 12.53 ± 0.33 1.78 1.39 5.00 2.52 -
43 86.43 ± 7.98 15.04 ± 0.25 2.45 1.76 3.70 2.54 -
58 113.34 ± 3.08 16.48 ± 0.09 1.79 1.90 1.81 2.53 97.82
Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total promedio, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d),
FCA=Factor de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K= Factor de condición,
S=Supervivencia (%).(%), 80M1= 80 org/m
3
, sólo machos.

Figura 6: Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de la tilapia roja
variedad Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula flotante en
agua marina (80M1= 80 org/m3
sólo machos).
Figura 7: Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja variedad
Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula flotante en agua
marina (80M1).

En el Tabla 4, se presentan los valores obtenidos de las variables biométricas
de tilapia roja variedad Pargo-UNAM durante el periodo de engorda en agua
marina durante el cultivo 2010. Los parámetros fisicoquímicos del agua se
mantuvieron dentro de los rangos óptimos de la especie con una temperatura
de 29.16 ± 2.31 °C, oxígeno disuelto de 5.27 ± 0.24 mg/L, salinidad de 34.97 ±
0.23 y pH de 8.43 ± 0.06.
Tabla 4. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en ciclo de engorda de tilapia
roja variedad Pargo-UNAM cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2010; 30M: 30
org/m³, machos).
Días en
cultivo
0 35.84 ± 0.61 11.46 ± 0.16 - - - - -
15 68.28 ± 3.52 13.46 ± 0.15 2.16 1.58 4.30 2.8 -
30 84.80 ± 10.62 14.17 ± 0.51 1.1 2.31 1.44 2.98 78.02
Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d),
FCA=Factor de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición,
S=Supervivencia (%), 30M: 30 org/m³ sólo machos).
variedad Pargo-UNAM en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula
flotante en agua marina (30M= 30 org/m³ sólo machos).

Figura 9: Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja variedad
Pargo-UNAM en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula flotante en
agua marina (30M).
En el Tabla 5, se presentan los valores finales obtenidos de las variables de
crecimiento de tilapia roja variedad Cubana y Pargo-UNAM durante el periodo
de engorda en agua marina durante el cultivo 2010.
Tabla 5. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en ciclo de engorda de tilapia roja
variedad Cubana y tilapia roja variedad Pargo-UNAM cultivadas en jaulas flotantes en agua marina
(cultivo 2010 80M1: 80 org/m3 machos, 30M: 30org/m3 machos).
Variedad Días
W
inicial
W final L inicial L final GDP FCA TEC K S (%)
80M1 58 10.69 113.34 5.34 16.48 1.77 1.63 4.07 2.53 97.82
30M 30 35.84 84.80 11.46 14.17 1.63 1.83 2.87 2.98 78.02
Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total promedio, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d),
FCA=Factor de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición,
S=Supervivencia (%).
Debido a que en el experimento de engorda del año 2010 se trabajó con pesos
iníciales de siembra, densidades y la duración de cultivo fue diferente, por lo

que no es posible efectuar un análisis estadístico de las variables de
crecimiento como ganancia diaria de peso (GDP), factor de conversión
alimenticia (FCA), tasa específica de crecimiento (TEC) y peso promedio final
(Wf) entre las variedades de tilapia aclimatadas. Por lo que sólo se analizó el
incremento de peso con respecto al tiempo de cada variedad o su velocidad de
crecimiento, mediante un análisis de regresión lineal entre días de cultivo y
peso promedio, en la Figura 6, y se obtiene la ecuación de la relación días de
cultivo-peso de la variedad Cubana Y=1.845X + 4.163, con un coeficiente de
correlación de r²=0.98 y se muestra en la Figura 8, la ecuación de la relación
días de cultivo-peso de la variedad Pargo-UNAM es igual a Y=1.632X + 38.48,
con un coeficiente de correlación de r²=0.97, estas dos ecuaciones demuestran
que las dos variedades en un tiempo estimado (X) mantienen un peso (Y)
similar con una variación no mayor de 5% en las dos variedades, por lo que las
dos variedades crecen igual dentro de los rangos de pesos ensayados en
condiciones marinas con valores promedio de condiciones ambientales con una
temperatura de 28.8°C, O2 de 5.4 mg/L y un pH de 8.4, que son valores
adecuados para el cultivo de estas especies (El-Sayed, 2006; Morales, 2003;
Rakocy, 2006).
La supervivencia estimada de las dos variedades variaron de un 78.02 y
97.82%, para variedad Pargo-UNAM y variedad Cubana respectivamente, bajo
las condiciones experimentales de este ensayo (Tabla 5).
Como ya se mencionó anteriormente, la adaptación de los alevines se inició a
partir de los 5 g, con un 100% de supervivencia sin embargo se observó que su
aclimatación se puede iniciar en un peso menor, lo que reduciría el tiempo
requerido de pre-engorda en agua dulce. La talla inicial de siembra en jaula de

engorda, únicamente se ensayó con tilapias que sobrepasan los 8 g y no se
tiene el dato experimental con organismos más pequeños.
Los resultados obtenidos de las variables de crecimiento, de ganancia diaria de
peso (GDP) y factor de conversión alimenticia (FCA) al final del cultivo (Tabla
5), del ensayo de engorda del año 2010, al utilizar la densidad de 80 org/m³
para la variedad Cubana y la densidad 30 org/m³ para la variedad Pargo-
UNAM, coinciden con resultados obtenidos por Watanabe et al (1987), en
estudios de crecimiento de tilapia roja en jaulas en agua marina, durante 51
días con una densidad de 305 org/m³, donde encuentran ganancia diaria de
peso menor de 1.4 g/d y un FCA de 2.62, el valor superior de FCA obtenidos
por el autor, puede ser puede ser un efecto de la densidad al hacer la
comparación con otros estudios realizados por Watanabe, 1990 y Balcázar,
2004, con diferentes densidades. Por otro lado, los resultados obtenidos en la
densidad de 30 org/m³ en el ensayo con la variedad Pargo-UNAM, coincide con
el estudio de Watanabe et al (1990) donde cultivó tilapia roja en jaula en agua
marina a una densidad de 25 org/m³.
Las variedades ensayadas en esta tesis presentan un aumento diario de peso
similar cuando son cultivadas en agua marina, aun cuando se trabajó con
densidades diferentes, el comportamiento de los organismos fue similar.
Aparentemente la única diferencia encontrada fue el factor de condición (K) del
pez ya que la variedad Pargo-UNAM presenta una K de 2.98 y la variedad
Cubana una K de 2.53, lo que aparentemente nos muestra que
anatómicamente la variedad Pargo-UNAM es más robusto que la variedad
Cubana, hasta las tallas ensayadas.

Después de 104 días del periodo de engorda a una densidad de 80 org/m³,
utilizando organismos solo machos fueron obtenidos peces con un peso
promedio de 264.33 ± 24.13 g, utilizando la misma densidad pero ensayando
con un cultivo mixto (machos y hembras) se obtuvo un peso promedio de
240.66 ± 13.58 g, con la densidad de 170 org/m³ se obtuvo un peso promedio
menor de 201.66 ± 15.82 g (Tabla 6). La supervivencia observada varió de un
84 a 97% ya que durante el cultivo de engorda se presentó mortandad en las
primeras tres semanas de cultivo de la siguiente manera: Para el cultivo 80M2
fue de 4%, para 80MH fue de 6%y para 170HM fue de 2%. Estudios realizados
por Webster (2006) nos indica que es normal una mortalidad de 6 a 8% con
peces sanos dentro de las primeras semanas después de la siembra.
En el Figura 10 y Figura 11, se presentan la curva de crecimiento con los
valores obtenidos de peso y longitud durante el cultivo 2011 de engorda en
ambiente marino de tilapia roja variedad Cubana.

agua marina (80M2: 80 org/m³, 80MH: 80 org/m³, 170MH: 170 org/m³).
Figura 11: Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja
agua marina (80M2: 80 org/m³, 80MH: 80 org/m³, 170MH: 170 org/m³).

Ninguna de las variables registradas GDP, FCA, TCE, Wf (P > 0.05), fue
significativamente diferente en tres los tres tratamientos, sin embargo la
densidad de 80 org/m³ con organismos solo machos presentó mejores
resultados en las variables de crecimiento, seguido por 80 org/m³ (mixto) y 170
org/m³ (mixto) que obtuvo un peso final menor, lo que nos indica que de
acuerdo al tipo y condiciones del cultivo empleado en este experimento no tuvo
efecto significativo el tratamiento en cuanto a densidad, ni a sexo de los
organismos.
Tabla 6. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K finales en ciclo de engorda de
tilapia roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011; 80M2,
80MH, 170MH).
Variedad Días W inicial W final L inicial L final GDP FCA TEC K S (%)
80M2 104 8.39 264.33a - 21.90a 2.46a 1.33a 3.32a 2.56a 93.17
80MH 104 8.39 240.67a - 21.01a 2.23a 1.45a 3.23a 2.60a 84.70
170MH 104 8.39 201.67a - 20.23a 1.86a 1.52a 3.06a 2.44a 82.56
Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d), FCA=Factor
de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición, S=Supervivencia
(%), 80M2=80 org/m³ 100% machos, 80MH=80 org/m³ (machos y hembras) y 170MH=170 org/m³
(machos y hembras).
Las letras diferentes en los columnas, indican que existe diferencia significativa P<0.05 por comparación
de medias de Tukey.

Figura 12: Producción obtenida final (kg) y alimento suministrado (kg) durante
el cultivo de engorda durante 104 dias.
Los datos mostrados en la Figura 12, es resultado de la producción final
obtenida en kilogramos por metro cúbico y la cantidad en kg de alimento
añadidos durante el cultivo. El factor de conversión alimenticia no tuvo una
diferencia significativa entre los tratamientos, sin embargo el cultivo utilizando
170 org/m³ se obtuvo un FCA mayor, por lo que se requirió añadir más
alimento.
En las Tabla 7, 8 y 9, se presentan los valores obtenidos de las variables de
crecimiento de tilapia roja variedad Cubana durante el transcurso de la etapa
de engorda para los tres tratamiento ensayados respectivamente.

Tabla 7. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K, durante el ciclo de engorda de
tilapia roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011 80M2: 80
org/m³).
Días de
cultivo
0 8.39 ± 0.36 - - - - - -
20 31.40 ± 0.53 10.45 ± 0.14 1.15 1.47 6.60 2.75 -
41 72.38 ± 3.73 14.06 ± 0.26 1.95 1.09 3.98 2.61 -
62 124.40 ± 16.99 17.04 ± 0.55 2.48 1.46 2.58 2.51 -
83 183.11 ± 9.39 19.53 ± 0.06 2.80 1.60 1.84 2.52
104 264.33 ± 24.13 21.90 ± 0.20 3.87 1.48 1.75 2.52 93.17
Media ± DE, W= Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d), FCA=Factor
de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K= Factor de condición, S=Supervivencia
(%), 80M2=80 org/m³ 100% machos.
Tabla 8. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K, durante el ciclo de engorda de tilapia
roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011 80MH: 80
org/m³).
Días de
cultivo
0 8.39 ± 0.36 - - - - - -
20 28.46 ± 3.07 9.93 ± 0.17 1.00 1.68 6.11 2.91 -
41 66.82 ± 3.30 13.59 ± 0.12 1.83 1.16 4.06 2.66 -
62 101.53 ± 2.68 16.24 ± 0.19 1.65 2.18 1.99 2.37 -
83 171.10 ± 10.18 19.02 ± 0.22 3.31 1.09 2.49 2.49
104 240.67 ± 13.58 21.01 ± 3.10 3.31 1.66 1.62 2.60 84.70
Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d), FCA=Factor de
conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición, S=Supervivencia (%),
80M2=80 org/m³ machos y hembras.
Tabla 9. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K, durante el ciclo de engorda de
tilapia roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011 170MH:
170 org/m³).
Días de
cultivo
0 8.39 ± 0.36 - - - - - -
20 30.63 ± 1.38 10.37 ± 0.20 1.11 0.90 6.47 2.75 -
41 65.10 ± 0.78 13.40 ± 0.08 1.64 1.31 3.59 2.71 -
62 96.59 ± 17.51 15.70 ± 0.65 1.50 2.20 1.88 2.50 -
83 148.62 ± 4.12 18.25 ± 0.08 2.48 1.36 2.05 2.44
104 201.67 ± 15.82 20.23 ± 0.42 2.53 2.00 1.45 2.44 82.56
Media ± DE, W= Peso promedio vivo, L= Longitud total, GDP= Ganancia diaria de peso (g/d), FCA= Factor
de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición, S=Supervivencia
(%), 170MH=170 org/m³ machos y hembras.

Durante el cultivo de engorda en el año 2011, los parámetros fisicoquímicos del
agua se mantuvieron dentro de los rangos óptimos para la especie, lo
contribuyó favorablemente al valor de la supervivencia y crecimiento de las dos
variedades de tilapia; con una temperatura promedio de 31.39 ± 1.16 °C,
oxígeno disuelto de 5.52 ± 0.8 mg/L, salinidad de 35.0 ± 0.01 y un pH de 8.3 ±
0.05 durante los meses de junio a octubre (El-Sayed, 2006; Morales, 2003;
Rakocy, 2006). El cultivo fue instalado en un lugar donde la circulación del
agua se mantiene constante con pocas variaciones de mareas o estacionales,
por lo que las desviaciones de los parámetros son pequeñas.
Sin embargo se observó un baja en la supervivencia de 93.17 a 82.56%, que
se atribuye al efecto de la densidad. Así mismo la densidad tiene un efecto
negativo sobre el peso (W), longitud (L), GDP, TEC y un aumento del FCA de
1.33 a 1.52, todas estas diferencias no son significativas como se comento
anteriormente. Se encontró que los resultados obtenidos de disminución en las
variables de crecimiento con respecto a la densidad, son similares a los
resultados de los trabajos de Watanabe, 1990 y Balcázar, 2004. En el cultivo
ensayado con 170 org/m³ con tilapias machos y hembras, se obtuvo 42% más
producción y un 5% mayor consumo de alimento y un 16% de crecimiento más
lento contra la densidad de 80MH utilizando también tilapias machos y hembras
(Tabla 6). En los dos últimos tratamientos 80MH y 170MH se pude identificar
que el consumo de alimento de los organismos no se ve afectado
drásticamente por la densidad y solo disminuye ligeramente la tasa de
crecimiento.
Los efectos observados en los resultados obtenidos de las diferentes variables
de crecimiento en las diferentes densidades ensayadas de 80 org/m³ y 170

org/m³ (Tabla 6), nos muestran al igual que el estudio realizados por Watanabe
et al (1990) en cultivo en jaulas flotantes en agua marina con tilapia roja en las
densidad de 100, 200 y 300 org/m³, se presenta un efecto de la densidad de la
población en la variación del peso final (Wf), y donde es evidente un mayor
coeficiente de variación de peso corporal (W) y la longitud (L) entre los peces
en una densidad de 100 org/m³ contra los de densidades más altas. Al igual,
los resultados coinciden con estudios realizados por Balcázar et al (2004) con
la tilapia roja cultivada en jaulas marinas, en las densidades de 100, 200 y 300
org/m³ durante 120 días. El cultivo tuvo un decremento en las variables de
crecimiento a medida que se incrementó la densidad, la GDP varió de 1.71 a
1.57 g/d, con un resultado similar en FCA de1.29. En el ensayo también se
observó un decremento poco revelador y se considera que es una buena
estrategia el cultivo a alta densidad, ya que el decremento en la GDP, es
beneficiado por la alta biomasa obtenida por metro cúbico.
Sobre el efecto del sexo, en los cultivos utilizando solo machos o machos y
hembras en el mismo cultivo, lo que podemos decir, es que el tratamiento
80M2 se obtuvo 17% mayor producción, 7% menor consumo de alimento y un
crecimiento acelerado diario del 9% contra tratamiento mixto 80MH (Tabla 6),
estos resultados obtenidos coinciden con estudios por Dan et al (2000) en
cultivo en jaula en agua dulce con otra especie de O. niloticus. En tratamientos
mixtos (80MH y 170MH: machos y hembras) no se presentó reproducción,
posiblemente a que no existe la posibilidad de construir nidos por los machos
dentro de la jaula para generar el cortejo con las hembras, si esto se diera, no
será posible la colocación de huevos para ser fertilizados en el nido, ya que los
huevecillos escaparían por la malla de jaula antes de ser fertilizados. De

acuerdo al peso y longitud final en los diferentes tratamientos, se observa que
la densidad tiene mayor efecto negativo, en el crecimiento que el sexo (Figura
10).
La mayor velocidad de crecimiento (Tabla 7 y Tabla 8), se obtuvo con cultivo
sólo machos 80M2 con TEC de 3.32, a diferencia del cultivo mixto 80MH con
TEC de 3.23 y 170MH con TEC de 3.06 , sin embargo estos resultados fueron
superiores a reportados por Romana-Eguia, (1999) en estudios en tanques
durante 60 días con agua marina con cinco variedades hibridas de tilapia roja
de importados de Pilipinas, Tailandia y Taiwán (O. mossambicus X O. niloticus
y O. hornorum X O. niloticus) con un tasa específica de crecimiento de 1.10 a
1.23.
El peso final al término de un periodo de tiempo, es un indicativo del ritmo de
crecimiento del pez, se considera que los tratamientos utilizando 80 org/m³ solo
machos (80M2), se obtiene un peso final de 264.33 g y con 80 org/m³ machos y
hembras (80MH) se obtiene 240.67 g. Ambos cultivos mantuvieron un ritmo de
crecimiento similar con 8% de diferencia. En cambio, en la densidad de 170
org/m³ machos y hembras (170MH) se obtuvo un peso final de 201.67 g,
manteniendo una tasa de crecimiento con 16% de diferencia con 80MH y 23%
con 80M2 (Tabla 7, 8, 9, y Figura 10), como ya se mencionó, estas diferencias
no son significativa.
En el año 2011, al considerar densidades ensayadas y los datos finales
obtenido de GDP que van de 1.86 a 2.46 g/d y FCA de 1.33 a 1.52, tantos en
cultivo de 100% machos o mixto (machos y hembras) en Tabla 6, coinciden los
resultados con diversos trabajos por otros autores en cultivos en jaulas con
tilapia roja en tiempo similar, pero realizados en agua salobre, como los

CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE TILAPIA ROJA HÍBRIDA (Oreochromis spp.) CULTIVADA EN JAULAS FLOTANTES EN AMBIENTE MARINO

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