Bordetella es un género de bacterias que incluye especies patógenas para humanos y animales. B. bronchiseptica causa rinitis atrófica en cerdos y enfermedades respiratorias en aves, mientras que B. avium es responsable de coriza en pavos. Estas bacterias se transmiten por contacto directo e indirecto y colonizan el tracto respiratorio superior. Producen toxinas y adhesinas que dañan los tejidos y evaden la respuesta inmune, causando inflamación, tos y dificultad respir

1. Bordetella
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL
ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
MICROBIOLOGÍA VETERINARIA

2. C A R A C T E R Í S T I C A S
Phylum:
Proteobacteria
Clase:
Betaproteobacteria
Orden:
Burkholderiales
Familia:
Alcaligenacea
Género: Bordetella

3. BGN aislados 0.5um x 3 um
Aerobio estricto
Movil por flagelos peritricos
Oxi+, Cat+, Cit+
Reduce nitrato, leche tornasolada
alcalina
Oxidan aa
- por ac grasos
No fermentan carbohidratos
Requieren aa y nicotinamida

4. agar MacConkey
agar Bordet-
Gengou
agar Regan Lowe
condiciones
aeróbicas, a
37°C, 3-5 días
Contiene: sangre,
extracto de papa y
glicerol, antibiótico
como cefalexina o
penicilina.
Colonias puntiformes,
lisas, convexas,
brillantes. Aspecto gota
de rocio.
Cefalexina,
carbón vegetal,
almidón, niacina,
sangre de
caballo

5. F A C T O R E S D E V I R U L E N C I A
• Fimbrias: Adherencia a células epiteliales ciliadas
• FHA: (Factor de hemaglutinina filamentosa) ayuda a
persistencia, formación de biopelículas
• Pertactina: Adhesina especifica
Adhesinas
Factor de colonización traqueal: adhesión al ep ciliado (B.
pertussis)
Citotoxina traqueal: parálisis de cilios e inhibe síntesis de
DNA
Toxina adenil ciclasa: Inhibe fagocitosis y muerte cell.
Toxina pertussis: Inactiva proteína G1, aumento AMPc,
inihibe fagocitosis.
Tóxina dermonecrótica: Cambios en la actina, inhibición en
diferenciación osteoblasto
LPS: adhesina y unión al epitelio

6. TRANSMISIÓN
Transmisión horizontal por contacto directo
con las secreciones respiratorias y aerosoles.
En pavos, indirecta por agua contaminada y
por fómites: platos, jaulas, utensilios, ropa del
personal
Persiste en el ambiente (vida media de 1-2 h
TA y 75% HR) por sistema BvgAS

7. MECANISMO DE PATOGENICIDAD
Ingresa al organismo,se localiza
el tracto respiratorio superior
Fijación por adhesinas (hemaglutinina
filamentosa y pertactina)
Colonización del ep
respiratorio
Multiplicación max en día 3 y 6
(primeros signos)
Daño en el tejido por Tox. Parálisis
ciliar, acumulación de moco en la
superficie traqueal y bronquial
Favorece proliferación de
bacterias oportunistas
(neumonía)
Dos semanas disminuye
la carga bacteriana.
Transmisión ocho a
diez días después
de la infección

8. CERDOS
Rinitis atrófica
(Inflamación crónica de
fosas nasales)
Infección
progresiva por P.
multocida y B.
bronchiseptica
Forma no progresiva
transitoria y limitante
3 a 4 semanas de edad.
Signos:
• Lechones lactantes, transición y engorde
• Conjuntivitis, tos, estornudos, descarga
nasal, hocico deformado.
• Cerdas
• Hocico deformado, normalmente no hay
signos clínicos.
NECROPSIA
Fosas nasales asimétricas y reducidas
Traqueítis,
bronquitis y
neumonía 1°.
• Lechones recién nacidos (3-4
días de edad)
• Tos, disnea
• En ocasiones alta morbilidad y
mortalidad.

9. Bronconeumonía
supurativa
Afecta a cerdos jóvenes
Cerdos mayores
(severidad del Complejo
Respiratorio Porcino por
virus y bacterias)
Tos, disnea
Necropsia: Hemorragia,
necrosis, lesiones
fibróticas

10. DIAGNÓSTICO
Cultivo en agar sangre o Bordet gengou 37°C, aerobiosis, 3-4 días.
Muestra: hisopos nasales, tejido pulmonar
Aislamiento (24-48 hrs, rugosas en BG) e identificación bioquímica
PCR ( Uso de tarjetas FTA, desnaturalizan proteínas, protegen DNA en
muestras de fluidos orales).

11. TRATAMIENTO Y PREVENCIÓN
Tetraciclina y trimetoprima-sulfonamida en los lechones y/o en las
cerdas en el parto o destete
Vacunación porcina utiliza bacterinas de células enteras ( c/toxina
inactivada de P. multocida); oral, intranasal o subcutanea
Los animales proceder de granjas negativas a rinitis atrófica
Métodos de destete temprano mediados y / o segregados
Desinfección y limpieza a fondo
Eliminación de las hembras portadoras
Vacuna inactivada
polivalente contra el
complejo
respiratorio porcino

12. AVES DE CORRAL
Coriza de pavo
Infección por B. avium (Tipo I “Alcaligenes fecalis tipo I”
Y Tipo II no patógena)
Signos: exudado nasal, conjuntivitis, estornudos,
estertores traqueales, disnea y respiración con picos
abiertos o boqueo
Morbilidad alta, mortalidad baja (<5%)
Pavos jóvenes (4-8 semanas de edad)
Complicaciones: retraso en el crecimiento y colapso
traqueal.
Aves portadoras susceptibles a infecciones secundarias
NECROPSIA
Inflamación aguda de zona
periorbitaria
Secresión purulenta
oculonasal
Rinitis,sinusitis y osteomelitis
temporomandibular

13. • Infección por B. avium
• Enfermedad oportunista en pollos
• Aves jóvenes (4-6 semanas)
• Sin signos, susceptible a otras
enfermedades (Escherichia coli, Newcastle o
Mycoplasma spp.)
• Infección por B. hinzii
• Comensal, no causa enfermedad en los
pollos.
• Enfermedad respiratoria leve en los pavos.
• Pavos jóvenes (2-4 semanas).
Pollos y otras aves

14. D I A G N Ó S T I C O
Muestras:
• Hisopado de senos
infraorbitarios
• Exudado nasofanrigeo
Aislamiento primario en
Agar sangre, medio Bordet
gengou 37°C, aerobiosis
Pruebas bioquímicas
(oxidasa, catalasa, ureasa
etc)
PCR.

15. B. bronchiseptica B. avium A. fecalis
Ureasa + - -
Red nitratos + - -
Oxi Glc - - -
Crec Cit + + +
Crecimiento en mal - - +
Oxi y Cat + + +
B hemólisis + - -
Crec en SS y Mac + + +
Movilidad + + +

16. TRATAMIENTO Y
PREVENCIÓN
B. avium resistente a penicilina G y
quinolonas, uso de tetraciclina y eritromicina.
Bacterina de B. avium con organismos vivos
atenuados por vía intratraqueal
Ventilación adecuada y TA, evitar frío y
corrientes de aire
Limpieza estricta de jaulas y utensilios
usando clorhexidina o hipoclorito de sodio.
Higienización del agua de bebida.
Desinfectantes por pulverización aérea

17. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Hau, S., LABORATORIOS HIPRA, S.A., & Brockmeier, S. (s. f.). SWINE TECHNICAL ARTICLES. BORDETELLA BRONCHISEPTICA Y
EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO. Recuperado 9 de marzo de 2021, de
https://www.hipra.com/wcm/connect/hipra/649e49c5-5a00-4e44-bfe4-873e8a460a9e/bordetella-bronchiseptica-rinitis-
atrofica-porcino.pdf?MOD=AJPERES&CACHEID=ROOTWORKSPACE.Z18_L26A0J40OGJR60QGTTTS0N3067-649e49c5-
5a00-4e44-bfe4-873e8a460a9e-m-522ou
López, B. (2020, 18 diciembre). Bordetella bronchiseptica: características, morfología, enfermedades. Lifeder.
https://www.lifeder.com/bordetella-bronchiseptica/
McVey, S. D., Kennedy, M., Chengappa, M. M., & C. (2013). Veterinary Microbiology (3rd Revised ed.). Wiley-Blackwell.
Cigoy M, Rosano M., Chacana M.,Terzolo H., 2011/09/09, AISLAMIENTO DE BORDETELLA AVIUM EN POLLOS DE
ENGORDE EN ARGENTINA. Sitio web:
https://www.researchgate.net/publication/280884541_AISLAMIENTO_DE_BORDETELLA_AVIUM_EN_POLLOS_DE_ENGORD
E_EN_ARGENTINA/citation/download
Sandoval, Valentina & Terzolo, Horacio. (1990). Coriza de los pavos: diagnóstico y control. Sitio web:
https://www.researchgate.net/publication/280841485_Coriza_de_los_pavos_diagnostico_y_control#:~:text=Resumen%20
%E2%80%93%20La%20coriza%20de%20los,5%25%20de%20cloruro%20de%20sodio.