Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 13: Leishmanias. Aspectos diagnósticos de las leishmaniosis.
TAXONOMÍA
Especie de trematodos, gusanos aplanados parasitarios de los humanos que produce la enfermedad conocida como esquistosomiasis o bilharzia.
Fiebre de Katayama
Se distinguen de otros trematodos por tener los sexos separados.
Molusco como hospedador intermedio
Duela sanguinea
S. Mansoni:
Única especie en América latina
Huesped intermediario: Biomphalaria
Esquistosomiasis intestinal
S. Japonicum:
Comun en asia y el pacifico. Solo afecta animales
Huesped intermediario: Oncomelania
S. haematobium:
En Africa, Medio Oriente y Mediterraneo
Huesped intermediario: Bulinus.
Esquistosomiasis urinaria
S. MANSONI: Morfología Adulto:
Gusano largo y delgado
Cuerpo aplanado
No segmentado
Revestido por un tegumento metabólicamente activo
Aparato digestivo incompleto
Ventosas oral y ventral
Se distingue por tener sexos separados (Dioicos)
Sistema circulatorio: Extraen hemoglobina del huesped
Macho
10-12 mm x 0.11mm
Tegumento revestido por pequeños tubérculos
Bordes laterales incurvados formando un canal: ginecoforo.
6-9 testiculos de donde se desprende un tubulo que se dilata en una vesicula seminal
Hembra
12-16 x 0,016 mm.
1 solo ovario preecuatorial
Depositan 1 o 2 huevos
Es más obscura que el macho por un pigmento llamado Hemozoina.
Huevo:
Alargados, con cubierta transparente, de unos 114-180 μm x 45-73 μm, con un espolón lateral cerca de la extremidad posterior y apuntando hacia atrás. Cada huevo contiene un miracidio.
Miracidio:
Una larva ciliada embironaria. En contacto con el agua, apenas viven unas horas cuando son liberadas de los huevos y no encuentran a su hospedador intermediario
Cercaria :
Último estadio larvario; es nadadora, libre, caracterizada por tener una larga cola bifurcada en el extremo distal, una cabeza de unos 200 μm equipada con espinas y papilas sensoriales, y recubiertas por tegumento trilaminado, denso y refráctil. Tienen diferenciacion sexual. Las glandulas de la cabeza tiene enzimas para penetrar en la puel del humano, pierden la cola.
Epidemiologia: Originario de África, el Schistosoma mansoni fue transportado a América Latina. l organismo y su hospedador intermediario se encuentran enÁfrica, Brasil, Venezuela, Surinam, ciertas áreas de las Antillas, Puerto Rico, y la República Dominicana.
Factores de riesgo: Presencia de caracoles acuáticos
Agua de beber contaminada
Bañarse o nadar en aguas contaminadas
Heces infectadas
Drenaje
Viajes internacionales
Prácticas agrícolas
Vivir o viajar a ciertas regiones de Africa, Medio Oriente, Asia, Sudamérica y el Caribe
Pobreza, ignorancia, vivienda en malas condiciones, escasa higiene, deficientes servicios sanitarios
Ciclo biológico: Liberacion del huevo en las heces
En el agua se libera el miracidio
Penetra en el caracol boimphalaria
Se transforman en esporiquistes primarios
Por sus poros se liberan cientos esporoquistes secundarios (hijos)
En el hapeto
TAXONOMÍA
Especie de trematodos, gusanos aplanados parasitarios de los humanos que produce la enfermedad conocida como esquistosomiasis o bilharzia.
Fiebre de Katayama
Se distinguen de otros trematodos por tener los sexos separados.
Molusco como hospedador intermedio
Duela sanguinea
S. Mansoni:
Única especie en América latina
Huesped intermediario: Biomphalaria
Esquistosomiasis intestinal
S. Japonicum:
Comun en asia y el pacifico. Solo afecta animales
Huesped intermediario: Oncomelania
S. haematobium:
En Africa, Medio Oriente y Mediterraneo
Huesped intermediario: Bulinus.
Esquistosomiasis urinaria
S. MANSONI: Morfología Adulto:
Gusano largo y delgado
Cuerpo aplanado
No segmentado
Revestido por un tegumento metabólicamente activo
Aparato digestivo incompleto
Ventosas oral y ventral
Se distingue por tener sexos separados (Dioicos)
Sistema circulatorio: Extraen hemoglobina del huesped
Macho
10-12 mm x 0.11mm
Tegumento revestido por pequeños tubérculos
Bordes laterales incurvados formando un canal: ginecoforo.
6-9 testiculos de donde se desprende un tubulo que se dilata en una vesicula seminal
Hembra
12-16 x 0,016 mm.
1 solo ovario preecuatorial
Depositan 1 o 2 huevos
Es más obscura que el macho por un pigmento llamado Hemozoina.
Huevo:
Alargados, con cubierta transparente, de unos 114-180 μm x 45-73 μm, con un espolón lateral cerca de la extremidad posterior y apuntando hacia atrás. Cada huevo contiene un miracidio.
Miracidio:
Una larva ciliada embironaria. En contacto con el agua, apenas viven unas horas cuando son liberadas de los huevos y no encuentran a su hospedador intermediario
Cercaria :
Último estadio larvario; es nadadora, libre, caracterizada por tener una larga cola bifurcada en el extremo distal, una cabeza de unos 200 μm equipada con espinas y papilas sensoriales, y recubiertas por tegumento trilaminado, denso y refráctil. Tienen diferenciacion sexual. Las glandulas de la cabeza tiene enzimas para penetrar en la puel del humano, pierden la cola.
Epidemiologia: Originario de África, el Schistosoma mansoni fue transportado a América Latina. l organismo y su hospedador intermediario se encuentran enÁfrica, Brasil, Venezuela, Surinam, ciertas áreas de las Antillas, Puerto Rico, y la República Dominicana.
Factores de riesgo: Presencia de caracoles acuáticos
Agua de beber contaminada
Bañarse o nadar en aguas contaminadas
Heces infectadas
Drenaje
Viajes internacionales
Prácticas agrícolas
Vivir o viajar a ciertas regiones de Africa, Medio Oriente, Asia, Sudamérica y el Caribe
Pobreza, ignorancia, vivienda en malas condiciones, escasa higiene, deficientes servicios sanitarios
Ciclo biológico: Liberacion del huevo en las heces
En el agua se libera el miracidio
Penetra en el caracol boimphalaria
Se transforman en esporiquistes primarios
Por sus poros se liberan cientos esporoquistes secundarios (hijos)
En el hapeto
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 12: Tripanosomas americanos. Aspectos diagnósticos de enfermedad de Chagas y Rangeliosis.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 12: Tripanosomas americanos. Aspectos diagnósticos de enfermedad de Chagas y Rangeliosis.
Parasitosis causada por la Leishmania spp.
Genero Leishmania, vector del género Anopheles y Lutzomya, morfología de la Leishmania, ciclo biológico, reconocimiento, cuadro clínico, diagnóstico, intradermorreacción de Montenegro y el tratamiento para la Leishmaniosis
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo IV, Tema 10: Artrópodos como vectores de enfermedades y Ectoparásitos.
Módulo III, Tema 9: Parásitos Oportunistas y Parasitosis EmergentesDiana I. Graterol R.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo III, Tema 9: Parásitos Oportunistas y Parasitosis Emergentes.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo III, Tema 7: Amibiasis, amebas comensales y de vida libre
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo II, Tema 6: Esquistosomiasis, Fascioliasis y Paragonimiasis.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo II, Tema 5: Teniosis, Cisticercosis e Himenolepiosis.
Módulo II, Tema 4: Ancylostoma, Strongyloides y Larva Migrans CutáneaDiana I. Graterol R.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo II, Tema 4: Anquilostomiasis, Estrongiloidiasis y Larva Migrans Cutánea.
Módulo II, Tema 3: Ascaris, Trichuris, Enterobius y Larva Migrans VisceralDiana I. Graterol R.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo II, Tema 3: Ascariasis, Tricuriasis, Enterobiasis y Larva Migrans Visceral.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo I, Tema 2: Análisis Integral de las Heces.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo I al IV: Repaso práctico de Parasitología.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Técnicas en Biología Molecular. Unidad 1: Extracción de ácidos nucleicos.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 15: Toxoplasma gondii.
Aspectos diagnósticos de la toxoplasmosis.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 14: Plasmodios y sus vectores. Aspectos diagnósticos de la malaria.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 11: Filarias humanas y aspectos diagnósticos de filariosis.
En el marco de la Sexta Cumbre Ministerial Mundial sobre Seguridad del Paciente celebrada en Santiago de Chile en el mes de abril de 2024 se ha dado a conocer la primera Carta de Derechos de Seguridad de Paciente, a nivel mundial, a iniciativa de la Organización Mundial de la Salud (OMS).
Los objetivos del nuevo documento pasan por los siguientes aspectos clave: afirmar la seguridad del paciente como un derecho fundamental del paciente, para todos, en todas partes; identificar los derechos clave de seguridad del paciente que los trabajadores de salud y los líderes sanitarios deben defender para planificar, diseñar y prestar servicios de salud seguros; promover una cultura de seguridad, equidad, transparencia y rendición de cuentas dentro de los sistemas de salud; empoderar a los pacientes para que participen activamente en su propia atención como socios y para hacer valer su derecho a una atención segura; apoyar el desarrollo e implementación de políticas, procedimientos y mejores prácticas que fortalezcan la seguridad del paciente; y reconocer la seguridad del paciente como un componente integral del derecho a la salud; proporcionar orientación sobre la interacción entre el paciente y el sistema de salud en todo el espectro de servicios de salud, incluidos los cuidados de promoción, protección, prevención, curación, rehabilitación y paliativos; reconocer la importancia de involucrar y empoderar a las familias y los cuidadores en los procesos de atención médica y los sistemas de salud a nivel nacional, subnacional y comunitario.
Y ello porque la seguridad del paciente responde al primer principio fundamental de la atención sanitaria: “No hacer daño” (Primum non nocere). Y esto enlaza con la importancia de la prevención cuaternaria, pues cabe no olvidar que uno de los principales agentes de daño somos los propios profesionales sanitarios, por lo que hay que prevenirse del exceso de diagnóstico, tratamiento y prevención sanitaria.
Compartimos el documento abajo, estos son los 10 derechos fundamentales de seguridad del paciente descritos en la Carta:
1. Atención oportuna, eficaz y adecuada
2. Procesos y prácticas seguras de atención de salud
3. Trabajadores de salud calificados y competentes
4. Productos médicos seguros y su uso seguro y racional
5. Instalaciones de atención médica seguras y protegidas
6. Dignidad, respeto, no discriminación, privacidad y confidencialidad
7. Información, educación y toma de decisiones apoyada
8. Acceder a registros médicos
9. Ser escuchado y resolución justa
10. Compromiso del paciente y la familia
Que así sea. Y el compromiso pase del escrito a la realidad.
Presentació de Elena Cossin i Maria Rodriguez, infermeres de Badalona Serveis Assistencials, a la Jornada de celebració del Dia Internacional de les Infermeres, celebrada a Badalona el 14 de maig de 2024.
descripción detallada sobre ureteroscopio la historia mas relevannte , el avance tecnológico , el tipo de técnicas , el manejo , tipo de complicaciones Procedimiento durante el cual se usa un ureteroscopio para observar el interior del uréter (tubo que conecta la vejiga con el riñón) y la pelvis renal (parte del riñón donde se acumula la orina y se dirige hacia el uréter). El ureteroscopio es un instrumento delgado en forma de tubo con una luz y una lente para observar. En ocasiones también tiene una herramienta para extraer tejido que se observa al microscopio para determinar si hay signos de enfermedad. Durante el procedimiento, se hace pasar el ureteroscopio a través de la uretra hacia la vejiga, y luego por el uréter hasta la pelvis renal. La uroteroscopia se usa para encontrar cáncer o bultos anormales en el uréter o la pelvis renal, y para tratar cálculos en los riñones o en el uréter.Una ureteroscopia es un procedimiento en el que se usa un ureteroscopio (instrumento delgado en forma de tubo con una luz y una lente para observar) para ver el interior del uréter y la pelvis renal, y verificar si hay áreas anormales. El ureteroscopio se inserta a través de la uretra hacia la vejiga, el uréter y la pelvis renal.Una vez que esté bajo los efectos de la anestesia, el médico introduce un instrumento similar a un telescopio, llamado ureteroscopio, a través de la abertura de las vías urinarias y hacia la vejiga; esto significa que no se realizan cortes quirúrgicos ni incisiones. El médico usa el endoscopio para analizar las vías urinarias, incluidos los riñones, los uréteres y la vejiga, y luego localiza el cálculo renal y lo rompe usando energía láser o retira el cálculo con un dispositivo similar a una cesta.Náuseas y vómitos ocasionales.
Dolor en los riñones, el abdomen, la espalda y a los lados del cuerpo en las primeras 24 a 48 horas. Pain may increase when you urinate. Tome los medicamentos según lo prescriba el médico.
Sangre en la orina. El color puede variar de rosa claro a rojizo y, a veces incluso puede tener un tono marrón, pero usted debería ser capaz de ver a través de ella
. (Los medicamentos que alivian la sensación de ardor durante la orina a veces pueden hacer que su color cambie a naranja o azul). Si el sangrado aumenta considerablemente, llame a su médico de inmediato o acuda al servicio de urgencias para que lo examinen.
Una sensación de saciedad y una constante necesidad de orinar (tenesmo vesical y polaquiuria).
Una sensación de quemazón al orinar o moverse.
Espasmos musculares en la vejiga.Desde la aplicación del primer cistoscopio
en 1876 por Max Nitze hasta la actualidad, los
avances en la tecnología óptica, las mejoras técnicas
y los nuevos diseños de endoscopios han permitido
la visualización completa del árbol urinario. Aunque
se atribuye a Young en 1912 la primera exploración
endoscópica del uréter (2), esta no fue realizada ru-
tinariamente hasta 1977-79 por Goodman (3) y por
Lyon (4). Las técnicas iniciales de Lyon
Presentación utilizada en la conferencia impartida en el X Congreso Nacional de Médicos y Médicas Jubiladas, bajo el título: "Edadismo: afectos y efectos. Por un pacto intergeneracional".
Presentació de Álvaro Baena i Cristina Real, infermers d'urgències de Badalona Serveis Assistencials, a la Jornada de celebració del Dia Internacional de les Infermeres, celebrada a Badalona el 14 de maig de 2024.
Leishmaniosis cutáneo, cutáneo-mucosa, cutáneo-difusa y visceral
1. FACULTAD DE CIENCIAS
DE LA SALUD
ESCUELA DE
BIOANÁLISIS
Universidad de Carabobo
Facultad de Ciencias de la Salud
Escuela de Bioanálisis
Asignatura Parasitología
2. MSc. Diana Graterol
Leishmanias. Aspectos
diagnósticos de las leishmaniosis
Leishmaniosis cutáneo, cutáneo-
mucosa, cutáneo-difusa y visceral.
Taxonomía, Morfología y Ciclo
Evolutivo.
Mecanismos Patogénicos, Patología
y Sintomatología.
Diagnóstico clínico y de laboratorio.
Epidemiología, Tratamiento y
Profilaxis.
Caracteres morfológicos de
flebótomos.
3. 3
Leishmaniosis
Enfermedades
producidas por
protozoos del género
Leishmania que
parasitan al sistema
fagocítico
mononuclear
(macrófago).
1. Endémica en 88 países a nivel
mundial.
2. Población en riesgo: 350
millones de personas.
3. Prevalencia mundial: 12-14
millones de personas.
Parásitos Eurixenos Antropozoonosis
Ciclo Heteroxeno
Psychodidae
Vector Biológico
(Hospedador intermediario)
Orden Diptera
6. 6
Subgénero Viannia
Complejo Leishmania braziliensis
L. braziliensis Leishmaniosis cutáneo mucosa
L. guyanensis
L. panamensis
L. peruviana
Leishmaniosis cutánea
1. Amastigotes (2 – 4 μm) y escasos en
lesiones.
2. Difícil crecimiento medios cultivo.
3. Colonizan intestino anterior, medio y
posterior (hospedador invertebrado).
Características:
7. 7
Subgénero Leishmania
Complejo Leishmania mexicana
1. Amastigotes (3-6 μm) y abundantes.
2. Fácil crecimiento medios cultivo.
3. Colonizan intestino anterior y medio
(hospedador invertebrado).
L. mexicana
L. pifanoi
L. amazonensis
L. gharnani
L. venezuelensis
Leishmaniosis cutáneo
difusa
Leishmaniosis cutánea
Características:
8. 8
Subgénero Leishmania
Complejo Leishmania donovani
Características:
L. donovani
L. infantum
L. chagasi
Leishmaniosis visceral
(Kala-azar)
1. Amastigotes (menor 2 μm).
2. Temperatura óptima 37º C.
3. Tropismo vísceras (hígado, bazo, médula
ósea).
Bordes bien delimitados
Hiperémicos
Fondo granuloso
Material necrótico de aspecto limpio
NO DOLOROSA
Característica
de las Úlceras
14. Ciclo Evolutivo Leishmania sp.
14
Inoculación promastigotes
por el insecto vector
Fagocitosis
promastigotes
Transformación
intracelular de promastigote
en amastigote
Multiplicación intracelular
amastigotes
Ingestión macrófagos
infectados con
amastigotes
Lisis macrófagos y
liberación amastigotes
Diferenciación promastigotes
Multiplicación
promastigotes y
migración a la
probóscide
16. 16
Inmunidad en la Leishmaniosis
Las células dendríticas probablemente juegan un papel fundamental en la
presentación de antígenos de Leishmania y el inicio de una respuesta inmunológica
específica que determinará las consecuencias de la infección cutánea inicial
Tipo Th1 Linfocitos CD4+
Producción de
Interferón
Gamma
Activación de
Macrófagos
Tipo Th2
Síntesis de
Anticuerpos
Producción de
Interleuquina 10
Inhibición del
desarrollo de
una respuesta
eficaz de
activación
macrofágica
Si no hay respuesta inmunológica Th1 vigorosa, los macrófagos infectados son
diseminados por todo el cuerpo.
19. 19
Patología Leishmaniosis cutánea
Período incubación: 2 – 3 meses.
Síntomas: úlceras (indoloras, bordes definidos, salientes,
hiperémicos, fondo granuloso y limpio, sin formación de
costras.
Lesiones: únicas, persistentes.
20. 20
Formas clínicas Leishmaniosis cutánea
1. Leishmaniosis cutánea no ulcerada:
- Papular: inicial, sitio picada insecto.
- Impetiginosa: lesiones vesículo-pustulosas generalmente recubiertas
de costras.
- Nodular o subcutánea.
- Tuberosa o lupoide: como respuesta exagerada a los antígenos
parasitarios.
- Vegetante: aspecto verrugoso o frambuesoide.
Tuberosa o
lupoide
Impetiginosa
Vegetante
21. 21
Formas clínicas Leishmaniosis cutánea
2. Leishmaniosis cutáneas ulceradas:
- Ectimoide: superficiales, abarcan epidermis y dermis.
- Ulcerosas francas: profundas, bordes salientes.
- Ulcero vegetantes.
Ectimoide Ulcerosa franca
22. 22
Patogenia Leishmaniosis cutáneo mucosa
1. Se inicia similar a la leishmaniosis cutánea.
2. Diseminación por vía linfática o hematógena hacia la
nariz, boca, faringe.
3. Ingestión amastigotes por células fagocíticas
(principalmente reticulocitos).
4. Se produce destrucción tabique o septo nasal.
5. Alteración procesos fonación y deglución.
23. 23
Patogenia Leishmaniosis cutáneo mucosa
1.- Destrucción tabique o septo nasal
Caída punta nariz
Endurecimiento y deterioro
piel alrededor nariz
Aspecto “nariz de tapir”
2.- Extensión lesiones a los labios (superior,
inferior), paladar y paredes del esófago.
24. 24
Patogenia Leishmaniosis visceral
1. Lesión inicial constituida por una pápula
eritematosa.
2. Diseminación vía hematógena hacia órganos ricos
en células del sistema mononuclear fagocitario.
3. No suele producir lesiones cutáneas.
La condición de inmunosupresión del paciente lo hace
susceptible a complicaciones por infecciones secundarias
26. 26
Formas clínicas Leishmaniosis visceral
1. Forma asintomática o latente: ausencia síntomas, reacción
Montenegro positiva.
2. Forma aguda: evolución rápida y fatal (20-45 días). Inversión
relación albúmina/globulina, trombocitopenia, reacción
Montenegro (-). Muerte causada por septicemia y hemorragias.
3. Forma subaguda: 5 meses – 1 año.
4. Forma crónica: dura varios años. Más frecuente.
5. Leishmaniosis dérmica post kala-azar: aparición lesiones
cutáneas semanas o años posterior al tratamiento. Producida por
L. donovani.
27. 27
Características clínicas de las Leishmaniosis
Leishmaniosis Forma
Zona de
Afección
Manifestaciones clínicas
Cutánea
Localizada
Piel
Lesiones generalmente individuales circunscritas al sitio
de inoculación
La lesión cutánea típica es la úlcera
Difusa Lesiones nodulares diseminadas por todo el cuerpo
Muco-cutánea Mucosa
Lesiones muco-cutáneas que afectan la región
nasofaríngea
Dificulta para respirar y deglutir
Puede presentar disfonía, afonía e incluso asfixia
Visceral Aguda
Crónica
Hígado
Bazo
Ganglios
Afecta con menor
frecuencia:
Aparato Digestivo
SNC
Fiebre irregular prolongada
Esplenomegalia
Anemia
Pérdida de peso
Nódulos subcutáneos
Ulceraciones de la piel
Cambios de color de la piel
Cabello quebradizo
Piel seca y escamosa de aspecto gris ceniciento
31. Diagnóstico Leishmaniosis cutánea,
cutáneo-mucosa y cutáneo-difusa
31
Lesión ulcerosa
Puede estar contaminada con otros patógenos.
Pasos a realizar:
1. Limpieza de la zona (agua oxigenada, Furacin,
yodo, alcohol isopropílico).
2. Remover material costroso, tejidos necrotizados
y pus.
3. Tomar la muestra de los bordes de la lesión,
debido a que allí existe mayor posibilidad de
encontrar los parásitos.
4. Fijar las muestras obtenidas.
Biopsia cutánea
32. Diagnóstico Leishmaniosis cutánea,
cutáneo-mucosa y cutáneo-difusa
32
Leishmaniosis cutáneo-mucosa
Puede estar contaminada con otros patógenos.
Pasos a realizar:
1. Limpieza de la zona (agua oxigenada, Furacin,
yodo, alcohol isopropílico).
2. Anestesiar la zona (Xylocaína 10%).
3. Obtener la muestra con bisturí.
4. Fijar las muestras.
Biopsia cutánea
34. Diagnóstico Leishmaniosis cutánea,
cutáneo-mucosa y cutáneo-difusa
34
Cultivos axénicos
1. Monofásicos: simulan el estómago del flebótomo
Eagle
Medio Esencial Mínimo + 20% SFB
RPMI 1640
Medio Schneider
Medio LITB
2. Bifásicos (contiene agar):
Medio de Novy, NcNeall y Nicolle (NNN)
Agar Sangre USAMRU
Medio de Senekjie
Crecimiento de
promastigotes
35. Diagnóstico Leishmaniosis cutánea,
cutáneo-mucosa y cutáneo-difusa
35
1. Prueba de hipersensibilidad retardada mediada por células del
sistema inmune.
2. Se inyecta 0,1 a 0,2 ml de cultivo de promastigotes de
Leishmania braziliensis en la cara anterior del antebrazo.
3. Revisión a las 24-48 horas. Positiva Pápula > 5 mm
4. Resultados:
Negativa (-): No hay ninguna reacción.
Débilmente + (dudosa): pápula palpable (1-4 mm) pero no
visible.
Positiva (++): pápula visible (> 5 mm) y rodeada de un área
eritematosa.
Positiva fuerte (+++): pápula sobresaliente (> 10 mm) y
rodeada de un halo muy grande de área eritematosa.
Positiva intensa (++++): aparición de necrosis en el área
inoculada.
Muy útil para diagnóstico de leishmaniosis cutánea
Reacción Intradérmica Montenegro (Prueba de la Leishmanina)
49. Diagnóstico Leishmaniosis visceral
49
Métodos Inmunológicos
Técnica inmunocromatográfica (tira reactiva): se basa en la
elaboración de tiras que contiene el péptido recombinante rK39 de
Leishmania donovani.
50. 50
Se basan en una
inversión de la
relación albúmina-
globulina debido a la
gran cantidad de IgG
producida por el
paciente infectado.
Métodos auxiliares
Reacción formol-gel: Opacificación y coagulación
del suero, por inversión albúmina/globulina y presencia de
globulinas anómalas. Se añade una gota de formol al 30%
en un mL de suero y se lee a los 60 minutos.
Diagnóstico Leishmaniosis visceral
51. Diagnóstico Leishmaniosis visceral
51
Métodos auxiliares
Reacción formol-gel:
Formol (40%)
- = Negativo, suero no alterado.
+ = Dudosa, coagulación sin opacificación.
++ = Positiva, coagulación y opacificación
discreta.
+++ = Positivo Fuerte, coagulación con
opacificación acentuada no total.
Son pruebas inespecíficas.
52. Diagnóstico Leishmaniosis visceral
52
Métodos auxiliares
Reacción Brahmachari: se deja caer lentamente por la pared de
un tubo que contiene 1 mL de suero 2 mL de agua destilada.
Reacción +: formación de un anillo.
58. 58
Ecología Leishmaniosis
Leishmania braziliensis: leishmaniosis cutáneo- mucosa (Ulcera Bauru ó
espundia). Brasil, en especial Amazonas y áreas adyacentes países vecinos
(Venezuela, Colombia, Ecuador, Perú, Bolivia, Paraguay, Norte Argentina)
Venezuela: Zona montañosa (Costa, Andes, Llanos), Depresión
Yaracuy, Zonas boscosas Turén.
Leishmania guyanensis: leishmaniosis cutánea (pian-bois). Guayana.
Leishmania panamensis: leishmaniosis cutánea.
Panamá, Costa Rica, Venezuela, Colombia.
Leishmania peruviana: leishmaniosis cutánea (uta).
Cordillera Andina (Venezuela, Colombia, Ecuador, Perú, Bolivia).
500 – 3000 mts altitud.
59. 59
Ecología Leishmaniosis
Leishmania mexicana: leishmaniosis cutáneo difusa (úlcera de los
chicleros). México, Guatemala, Belice.
Leishmania amazonensis: leishmaniosis cutáneo- mucosa.
Bahía amazónica Brasil.
Leishmania pifanoi: leishmaniosis cutáneo-difusa.
Venezuela.
Leishmania gharnani y Leishmania venezuelensis: leishmaniosis cutánea.
Venezuela (Estado Lara).
Leishmania infantum
Leishmania chagasi
Leishmania donovani: India, Pakistán, Bangladesh, África Oriental
Sur México al
Norte Argentina
60. 60
Epidemiología Leishmaniosis
1. Reservorio o fuente infección: Antropozoonosis
L. braziliensis: roedores, perro, caballos.
L. peruviana: perro.
L. guyanensis: pereza, oso hormiguero.
L. panamensis: pereza.
L. mexicana: roedores silvestres.
L. amazonensis: roedores, rabipelados.
L. chagasi: perro, zorro, hombre.
L. infantum: perro, zorro, hombre.
Leishmaniosis canina
66. Bibliografía
66
Almeida Andrade HT, Serpa Filho A. (2021). Principios básicos de Entomología médica. Brasil: Kindle edition.
Becerril M. (2008). Parasitología Médica. 2da Edición. México: Editorial McGraw-Hill Interamericana.
Botero D, Restrepo M. (2012). Parasitosis humanas. 5ta Edición. Colombia: Corporación para Investigaciones
Biológicas.
Gállego Berenguer J. (2007). Manual de Parasitología: morfología y biología de los parásitos de interés
sanitario. España: Edicions de la Universitat de Barcelona.
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Venezuela: Editorial de la Universidad del Zulia (Ediluz).
Incani RN. (2012). Guía de Parasitología. Venezuela: Escuela de Medicina, FCS- UC.
Markell EK, John DT, Krotoski WA. (1999). Medical Parasitology. 8va Edición. USA: Editorial W.B. Saunders.
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Todd A, Sanford L, Davidsohn P. (1988). Diagnóstico y tratamiento clínicos por el laboratorio. 8va Edición.
Tomo I.