UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD
LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA
ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada
NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-4
NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORCOBRE
1. DATOS INFORMATIVOS:
CARRERA:Bioquímicay Farmacia
CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “A” y “B”
DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc.
Animal de Experimentación: Vísceras de pollo
Vía de administración: Vía intraperitoneal
TIEMPOS
Inicio de la práctica: 12:30 pm
Hora de disección: 13:15 pm
Hora inicio de destilado: 13:30 pm
Hora de finalización de destilado: 13:45 pm
Hora de finalización de la práctica: 14:00 pm
2. FUNDAMENTACIÓN:
El Cobre es una substancia muy común que ocurre naturalmente y se extiende a través
del ambiente a través de fenómenos naturales, la gente que vive en casas que todavía
tiene tuberías de cobre están expuestas a más altos niveles de Cobre que la mayoría
de la gente, porque el Cobre es liberado en sus aguas a través de la corrosión de las
tuberías.
Exposiciones de largo periodo al cobre pueden irritar la nariz, la boca y los ojos y
causar dolor de cabeza, de estómago, mareos, vómitos y diarreas. Una toma grande
de cobre puede causar daño al hígado y los riñones e incluso la muerte. Si el Cobre es
cancerígeno no ha sido determinado aún.
La EPA (Enviromental Protecion Agency), requiere que el agua potable no contenga
más de 1.3 miligramos de cobre por litro de agua (1.3mg/L). El ministerio de
agricultura de los EE.UU recomienda (una dosis diaria de 900 microgramos de cobre
(900 ug/dia) para personas mayores de 80 años de edad.
La administración de Salud y Seguridad Ocupacional (OSHA) ha establecido un
límite para vapores de cobre en el aire de 0.1 miligramo por metro cubico (0.1mg/m3)
y 1 mg/m3 para polvos de cobre.
3. OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Cobre en el
destilado de las vísceras de pollo.
10
4. MATERIALES E INSUMOS:
MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de
Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Papel filtro
 Cocineta  Ferrocianuro de
potasio
 Ácido acético
 Cuprón
 Amoniaco
 Sales de cobre
 Clorato de Potasio
 HCl
 Sulfato cúprico
 Viseras de
Pollo
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Balanza
 Campana
 Hidróxido de amonio
 Cianuros Alcalinos
 Hidróxido de sodio
 Yoduro de Potasio
5. PROCEDIMIENTO:
# ACTIVIDADES OBSERVACIONES
5.1
Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más
finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de
precipitación.
 Usar siempre el
equipo de protección
mandil de
laboratorio, gorro,
mascarilla, guantes
para minimizar algún
tipo de accidente
que ponga en riesgo
nuestra salud.
 Utilizar la campana
de gases.
5.2 Disolver 10g de sulfato cúprico en agua
5.3
Verter las vísceras en un vaso de precipitación y agregar
20mL de HCl, luego mezclar con la solución de sulfato
cúprico
5.4
recoger la mezcla de la sustancia madre en 4g de Clorato
de potasio.
5.5 Filtrar.
5.6
Con aproximadamente 15 mL del filtrado recogido
(muestra) realizar las reacciones de reconocimientos en
medios biológicos.
5.7
1.- Con el Ferrocianuro de Potasio: En un medio
acidificado con ácido acético, el cobre reacciona dando
un precipitado rojo oscuro de ferrocianuro cúprico,
insoluble en ácidos diluidos, soluble en amoniaco dando
color azul.
5.8
2.-Con el Amoniaco: La solución muestra tratada con
amoniaco, forma primero un precipitado verde claro
pulverulento que al agregarle un exceso de reactivo se
disuelve fácilmente dando un hermoso color azul por
formación de un compuesto cupro-amónico.
5.9
3.-Con el Cuprón: En solución alcohólica al 1 % al que
se le adiciona gotas de amoniaco, las sales de cobre
reaccionan produciendo un precipitado verde insoluble
en agua, amoniaco diluido, alcohol, ácido acético, soluble
 alcohólica al 1 %
proporcionado por el
docente.
en ácidos diluidos y poco solubles en amoniaco
concentrado.
5.10
4.-Con el Yoduro de Potasio: Adicionando a la solución
muestra gota a gota, primeramente, se forma un
precipitado blando que luego se transforma a pardo-
verdoso o amarillo.
5.11
5.-Con los cianuros alcalinos: A una pequeña cantidad
de muestra se agregan unos pocos cristales de cianuro de
sodio formando un precipitado verde de cianuro de cobre,
a este precipitado le agregamos exceso de cianuro de
sodio y observamos que se disuelve por formación de un
complejo de color verde-café.
5.12
6.-Con el Hidróxido de Sodio: A 1ml de solución
muestra, agregamos algunas gotas de NaOH, con lo cual
en caso de ser positivo se debe formar un precipitado
color azul pegajoso por formación de Cu(OH)2. Este
precipitado es soluble en ácidos minerales y en álcalis
concentrados.
6. CUADROS DE RESULTADOS:
REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO
Reacción con
Ferrocianuro de Potasio
precipitado rojo
Positivo no
Característico
Reacción con el
Amoniaco
Precipitado azul
Positivo
Característico
Reacción con el Cuprón Precipitado verde
Positivo
Característico
Reacción con Yoduro de
Potasio
Precipitado amarilla
Positivo
Característico
Reacción con los cianuros
alcalinos
Precipitado verde-café
Positivo
Característico
7. CONCLUSIONES:
Mediante la presente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de
cobre en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas
de las cuales de las cinco reacciones nos dio como resultados la coloración positivo
característico, solo en la reacción de Ferrocianuro de Potasio dio como resultado
positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se encuentran
en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso.
8. RECOMENDACIONES:
• Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil,
guantes, cofia, zapatones y mascarilla.
• Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones.
• Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas.
• Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado.
9. BIBLIOGRAFÍA:
 Ávila Alvarez, Albert Alejandro (2015). Toxicología en urgencias. Colombia:
Editorial Médica CELSUS. (BCQS00954)
 Cid Hernández, Margarita (2014). Manual de prácticas de toxicología de los
alimentos. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. (BCQS02108)
 Calvo Carrillo, María de la Concepción (c2012). Toxicología de los alimentos.
México: McGrawHill Interamericana. (BCQS00263)
ANEXOS:
Reacción con el Hidróxido
de Sodio
Precipitado azul
pegajoso
Positivo
Característico
Anexo 1. Reacción con NaOH Anexo 2. Reacción con Cianuro
alcalino
Anexo 3. Reacción con ferrocianuro
de potasio
Anexo 4. Reacción con amoniaco
Anexo 5. Reacción con yoduro de
potasio
Anexo 6. Reacción con cupron
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD
LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA
ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada
NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-5
NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORZINC
10. DATOS INFORMATIVOS:
CARRERA:Bioquímicay Farmacia
CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B”
DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc.
Animal de Experimentación: Vísceras de pollo
Vía de administración: Vía intraperitoneal
TIEMPOS
Inicio de la práctica: 12:30 pm
Hora de disección: 13:15 pm
Hora inicio de destilado: 13:30 pm
Hora de finalización de destilado: 13:45 pm
Hora de finalización de la práctica: 14:00 pm
11. FUNDAMENTACIÓN:
Una intoxicación aguda por este metal de origen profesional es la llamada fiebre de
los fundidores, que se observa al fundir y verter el zinc y sus aleaciones, sobre todo
del latón (zinc más cobre); el zinc al ser fundido, arde en el aire y se convierte en
óxido de zinc, el cual el ser inhalado en forma de niebla blanca, produce la
enfermedad. En algunos trabajadores produce hábito, en cambio en otros ocasiona
hipersensibilidad creciente hacia esos vapores.
En medicina el óxido de zinc ha producido intoxicaciones cuando se lo emplea en
polvos, pomadas y pastas cuando son resorbidos en cantidades toxicas por la
superficie de grandes heridas o al través de la piel inflamada, el sulfato de zinc cuando
se lo emplea como astringente contra la conjuntivitis y la gonorrea; el cloruro de zinc
cuando se lo utiliza en ginecología como caustico en solución concentrada (50%)
aplicadas en el útero han producido intoxicaciones mortales por resorción,
caracterizadas por un cuadro de gastroenteritis y lesiones renales, vasculares y
cardiacas.
12. OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Cobre en el
destilado de las vísceras de pollo.
10
13. MATERIALES E INSUMOS:
MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Papel filtro
Balanza  NaOH
 Sales Amoniacales
 Ferrocianuro de
potasio
 Sulfuro de amonio
 HCl
 Clorato de potasio
 Cloruro de Zinc
 Pirita
Viseras de
Pollo
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de Disección
Campana Hidróxido de Sodio
14. PROCEDIMIENTO:
# ACTIVIDADES OBSERVACIONES
5.1
Con la ayuda del estuche de
disección, picar lo más finas
posibles las vísceras de pollo
en un vaso de precipitación.
 Usar siempre el equipo de protección
mandil de laboratorio, gorro, mascarilla,
guantes para minimizar algún tipo de
accidente que
ponga en riesgo nuestra salud.
 Utilizar la campana de gases.
5.2
Disolver 10g de cloruro de zinc
en agua
5.3
Verter las vísceras en un vaso
de prescipitación y agregar
20mL de HCl.
5.4
Mezclar de las soluciones
anteriores en 4g de Clorato de
potasio.
5.5 Filtrar.
5.6
Con aproximadamente 15 mL
del destilado recogido
(muestra) realizar las
reacciones de reconocimientos
en medios biológicos.
5.7
1.-Con Hidróxidos Alcalinos:
Origina un precipitado blanco
gelatinoso de hidróxido de zinc,
soluble en exceso de reactivo
por formación de zincatos.
5.8
2.-Con el Amoniaco: Da al
reaccionar un precipitado
blanco de hidróxido de zinc,
soluble en exceso de amoniaco
y en las sales amoniacales, con
formación de sales complejas
zinc amoniacales.
5.9
3.-Con el Ferrocianuro de
Potasio: El zinc reacciona
dando un precipitado blanco
coposo de ferrocianuro de zinc,
soluble en hidróxido de potasio
y en exceso de reactivo,
insoluble en los ácidos y en las
sales amoniacales.
5.10
4.-Con el Yoduro de Potasio:
Adicionando a la solución
muestra gota a gota,
primeramente, se forma un
precipitado blando que luego se
transforma a pardo-verdoso o
amarillo.
5.11
5.-Con el sulfuro de amonio: -
En solución neutra o alcalina
produce un precipitado blanco
de sulfuro de zinc, soluble en
ácidos minerales, en insoluble
en ácido acético.
5.12
6.-Con el sulfuro de
Hidrogeno: - En medio alcalino
o adicionando a la
muestra solución saturada de
acetato de sodio da un
precipitado blanco pulverulento
de sulfuro de zinc
15. CUADROS DE RESULTADOS:
REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO
Hidróxidos Alcalinos
precipitado blanco
gelatinoso. Positivo Característico
Con el Amoniaco precipitado blanco
Positivo no
Característico
Ferrocianuro de
Potasio
precipitado blanco coposo
Positivo no
Característico
Yoduro de Potasio pardo-verdoso o amarillo Positivo Característico
sulfuro de amonio precipitado blanco Positivo Característico
sulfuro de Hidrogeno precipitado blanco Positivo Característico
16. CONCLUSIONES:
Mediante la presente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de zinc
en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas de las
cuales de las cinco reacciones nos dio como resultados la coloración positivo
característico, solo en la reacción de amoniaco y el ferrocianuro de potasio dio como
resultado positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se
encuentran en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso.
17. RECOMENDACIONES:
• Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil,
guantes, cofia, zapatones y mascarilla.
• Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones.
• Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas.
• Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado.
18. BIBLIOGRAFÍA:
 Ávila Alvarez, Albert Alejandro (2015). Toxicología en urgencias. Colombia:
Editorial Médica CELSUS. (BCQS00954)
 Cid Hernández, Margarita (2014). Manual de prácticas de toxicología de los
alimentos. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. (BCQS02108)
 Calvo Carrillo, María de la Concepción (c2012). Toxicología de los alimentos.
México: McGrawHill Interamericana. (BCQS00263)
ANEXOS:
Anexo 3. Reacción con ferrocianuro
de potasio
Anexo 4. Reacción con yoduro de
potasio
Anexo 5. Reacción con sulfuro de
amonio
Anexo 6. Reacción con sulfuro de
hidrogeno
Anexo 1. Reacción con hidróxido
alcalino
Anexo 2. Reacción con amoniaco
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD
LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA
ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada
NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-6
NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORACIDONITRICO
19. DATOS INFORMATIVOS:
CARRERA:Bioquímicay Farmacia
CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B”
DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc.
Animal de Experimentación: Vísceras de pollo
Vía de administración: Vía intraperitoneal
TIEMPOS
Inicio de la práctica: 11:30 pm
Hora de disección: 11:35 pm
Hora inicio de destilado: 11:45 pm
Hora de finalización de destilado: 12:05 pm
Hora de finalización de la práctica: 12:55 pm
20. FUNDAMENTACIÓN:
El Ácido Nítrico es uno de los más fuertes desde el punto de vista iónico. Pero lo que lo
caracteriza químicamente es su energía de acción oxidante. La misma se manifiesta sobre
casi todos los metales excepto por el oro y el platino, ciertas sales, sustancias orgánicas y
en general sobre toda sustancia capaz de oxidarse. Así, una astilla de madera con un punto
de ignición, al contacto con este acido, sigue ardiendo con formación de CO2 y
vapores rutilantes.
Este acido es toxico, muy corrosivo, mancha la piel de amarillo y destruye las mucosas.
Su acción oxidante se intensifica cuando tiene disuelto peróxido de nitrógeno que actúa
como catalizador, por eso el ácido más energético es el ácido nítrico rojo o fumante.
Acción toxica
Produce lesiones como cutáneas, oculares y de las mucosas, cuya gravedad dependerá de
la duración del contacto y de la concentración del ácido. Estas lesiones pueden ir desde
una simple irritación hasta quemaduras u necrosis localizadas, cuando el contacto ha sido
10
prolongado. Las nieblas de HNO3 también son irritantes y corrosivas para la piel y
mucosas y el esmalte dental.
Los valores de ácido nítrico siempre contienen, en diferentes proporciones, otro
compuesto nitroso en forma de gas, dependiendo de la concentración de ácido y del tipo
de operación que se trate.
La inhalación puede producir intoxicación aguda o sobreaguda. La intoxicación
sobreaguda es rara y produce la muerte rápidamente. La intoxicación aguda es más
frecuente y puede constar de tres fases: la primera consiste en una irritación las vías
respiratorias superiores (sensación de quemazón en la garganta, tos, sensación de
sofocación) y de los ojos, produciendo lagrimeo. La segunda es descorsentante ya que
hay ausencia de sintomatología durante varias horas. En la tercera fase, reaparecen las
alteraciones respiratorias, pudiendo desarrollarse rápidamente un edema pulmonar,
frecuentemente mortal.
La ingestión accidental de ácido nítrico, puede producir importantes lesiones en la boca,
faringe, esófago y estómago, cuyas consecuencias puedes ser grave.
1. OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Ácido Nítrico en el
destilado de las vísceras de pollo.
2. MATERIALES E INSUMOS:
MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de
Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Balanza  Papel rojo congo
 -Solución alcohólica
de violeta de metilo
 -Reactivo de
Gunzburg
 -Brusina
 -Anilina
 -Sulfato ferroso
 Viseras
de Pollo
 -Fenol
 Ácido Nítrico
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección
 Campana
3. PROCEDIMIENTO:
# ACTIVIDADES OBSERVACIONES
5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar
lo más finas posibles las vísceras de pollo en
un vaso de precipitación, agregar 5 ml de
agua y 10 ml de ácido Nítrico poco a poco
dejar reposar por 15 minutos.
 Usar siempre el equipo de
protección mandil de laboratorio,
gorro, mascarilla, guantes para
minimizar algún tipo de accidente
que ponga en riesgo nuestra
salud.5.2 Filtrar.
5.3 Con aproximadamente 15 mL del destilado
recogido (muestra) realizar las reacciones de
reconocimientos en medios biológicos repartir
1 mL. Por cada Rx de reconocimiento la
sustancia Madre
5.4 1.- ROJO CONGO: al hacer reaccionar un
papel embebido con rojo Congo, este se
colorea de azul en caso positivo
5.5 2.- NARANJA DE METILO: Se trata una
porción del líquido con solución alcohólica de
Naranja de metilo 1:100, produciéndose una
coloración azul-gris-verde ante la presencia de
ácidos minerales
 Utilizar la campana de gases.
5.6 3.- BRUSINA: Con la brusina disuelta en el
ácido sulfúrico, se produce un color rojo en
caso positivo
5.7 4.-ACIDO SULFURICO: Con la anilina en
ácido sulfúrico toma un color azul en presencia
de ácido nítrico.
5.8 5.-SULFATO FERROSO: Con el sulfato
ferroso,al adicionar a la muestra unas gotas del
reactivo y luego ácido sulfúrico puro, debe dar
un color rosado.
5.9 6.-FENOL: Con el fenol al agregar en ácido
sulfúrico a la muestra acidificada en ácido
acético debe formarse un color amarillo en
caso de encontrarse el ácido nítrico, si al
principio se los agregan gotas de amoniaco, el
color amarillo original, se vuelve más intenso.
5.10 7.-SULFATO DE COBRE: A la solución
madre agregar sulfato de cobre debiendo
precipitar
4. CUADRO DE RESULTADOS:
REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO
1.- ROJO CONGO
azul + NO Característico
2.- NARANJA DE METILO: azul-gris-verde Positivo Característico
3.- BRUSINA: rojo Positivo Característico
4.-ACIDO SULFURICO: pardo-verdoso o amarillo Positivo Característico
5.-SULFATO FERROSO: azul + NO Característico
6.-FENOL: precipitado blanco Positivo Característico
7.-SULFATO DE COBRE:
5. CONCLUSIONES:
Mediante la presente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de ácido
nítrico en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas de
las cuales de las cuatro reacciones nos dio como resultados la coloración positivo
característico, solo en la reacción de rojo congo y el fenol de potasio dio como resultado
positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se encuentran en
las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso.
6. RECOMENDACIONES:
• Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil,
guantes, cofia, zapatones y mascarilla.
• Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones.
• Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas.
• Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado.
7. BIBLIOGRAFÍA:
 Dra. Delia Mercedes Rojo Domínguez, Lic. Lourdes García Bacallao, I. S. C. H.
y L. M., & Corredera, S. Á. (2013). Instituto Superior de Ciencias Básicas y
Preclínicas " Victoria de Girón " EN LA PREECLAMPSIA
FISIOPATOLÓGICAS, 22(2), 130–140.
 Iribarren, O. B., & González, C. G. (2017). ARTICULO DE ACTUALIZACIÓN
Quemaduras por agentes químicos. Cuad. Cir, 15, 61–69.
 Lezáun Correspondencia, M., Mercedes, D., & Goñi, L. (2015). Intoxicaciones de
origen laboral Poisonings at the workplace. ANALES Sis San Navarra, 26(1),
265–273.
 Miguel -Fernandez. (2014). Origen De Los Nitratos Y Nitritos Y Su Influencia
En La Potabilidad, (3), 1–9.
 Wojnowska - Ciodyk, W. (2013). Kredytowanie spółdzielczego budownictwa
mieszkaniowego - system kredytowania w świetle unormowań prawnych;
projektowane zmiany, 24(6), 397–406. Retrieved from
http://biurose.sejm.gov.pl/teksty_pdf_93/r-50.pdf
8. ANEXOS:
Anexo 3. Reacción con brusina Anexo 4. Reacción con ácido
sulfúrico
Anexo 5. Reacción con sulfato
ferroso
Anexo 6. Reacción con fenol
Anexo 1. Reacción con rojo congo Anexo 2. Reacción con naranja de
metilo
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD
LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA
ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada
NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-7
NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORHIDROXIDODE SODIO
21. DATOS INFORMATIVOS:
CARRERA:Bioquímicay Farmacia
CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B”
DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc.
Animal de Experimentación: Vísceras de pollo
Vía de administración: Vía intraperitoneal
TIEMPOS
Inicio de la práctica: 11:45 pm
Hora de disección: 11:55 pm
Hora inicio de destilado: 12:0 pm
Hora de finalización de destilado: 12:05 pm
Hora de finalización de la práctica: 12:55 pm
22. FUNDAMENTACIÓN:
Para realizar el reconocimiento de los hidróxidos de sodio y potasio, se trata el material de
investigación con alcohol absoluto que disuelve los álcalis cáusticos y el amoniaco, más no
los carbonatos. Se deja en contacto por algún tiempo y luego se filtra; después de haber
comprobado la alcalinidad de la solución alcohólica, se destila el alcohol. Si estuviera
presente el amoniaco,este se destila en el alcoholy se lo reconocefácilmenteconel reactivo
de Nessler.
El residuo de la destilación, después que se ha eliminado por completo el amoniaco, se
recoge con agua y en la solución acuosa, se practican las diferentes reacciones de
reconocimiento para cada caso si fuere necesario.
23. OBJETIVOS:
Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Hidróxido de sodio en
el destilado de las vísceras de pollo.
24. MATERIALES E INSUMOS:
MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA
10
 Vasos de
Precipitación
 Gradilla
 Tubos de Ensayo
 Agitador
 Porta Embudo
 Espátula
 Balanza  Cloruro de níquel
 Sales férricas
 Soluciones de
Estaño
 Sales de cadmio
 -Alcohol absoluto
 Hidróxido de Sodio

 Viseras de
Pollo
 Pipetas
 Embudo
 Estuche de
Disección

Campana
25. PROCEDIMIENTO:
# ACTIVIDADES OBSERVACIONES
5.1
Con la ayuda del estuche de
disección, picar lo más finas
posibles las vísceras de pollo en
un vaso de precipitación, agregar
alcohol absoluto y 5 gr. de
NaOH dejar reposar por 15
minutos.
 Alcohol Absoluto, proporcionado
por el docente.
 Usar siempre el equipo de
protección mandil de laboratorio,
gorro, mascarilla, guantes para
minimizar algún tipo de
accidente que
ponga en riesgo nuestra salud.
 Utilizar la campana de gases.

5.2 Filtrar.
5.3
Con aproximadamente 15 mL del
destilado recogido (muestra)
realizar las reacciones de
reconocimientos en medios
biológicos.
5.4
1.- Si a una pequeña cantidad de
reactivo se adicionan unas gotas
de muestra, se produce primero
un precipitado azul debido a la
formación de una sal básica. El
exceso de la base, puede producir
hidróxido de cobalto color rosa,
el cual es oxidado por el oxígeno
del aire tornándose pardo y
finalmente negro.
5.5
2.-El sodio al agregarle una
pequeña porción de cloruro de
níquel, produce un precipitado
verde claro de aspecto
gelatinoso de hidróxido de
níquel.
5.6
3.-Frente a las sales férricas de
sodio reacciona formando un
precipitado blanco del hidróxido
correspondiente.
5.7
4.-Igualmente reacciona frente a
las soluciones de estaño, dando
precipitados blancos de
hidróxido de estaño.
5.8
5.-Con las sales de cadmio, al
agregar unas gotas de la solución
muestra, forma un precipitado
blanco de hidróxido de cadmio.
5.9
6.-Ensayo a la llama, al acercar
una cantidad de muestra
contenida en la punta de un lápiz,
arde con llama color amarilla
intensa, en caso positivo.
26. CUADROS DE RESULTADOS:
REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO
REACTIVO + GOTA DE MUESTRA
(PEROXIDO DE HIDROGENO +
SULFATO FERROSO)
precipitado azul. Positivo
Característico
CLORURO DE NÍQUEL
precipitado verde
claro
Positivo
Característico
SALES FÉRRICAS
precipitado blanco
Positivo no
Característico
SOLUCIONES DE ESTAÑO precipitado blanco
Positivo
Característico
SALES DE CADMIO precipitado blanco
Positivo
Característico
ENSAYO A LA LLAMA
llama color amarilla
intensa
Positivo
Característico
27. CONCLUSIONES:
Mediante la presente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de
hidróxido de sodio en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las
reacciones realizadas de las cuales de las cinco reacciones nos dio como resultados la
coloración positivo característico, solo en la reacción de sales férricas dio como
resultado positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se
encuentran en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso.
28. RECOMENDACIONES:
• Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil,
guantes, cofia, zapatones y mascarilla.
• Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones.
• Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas.
• Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado.
29. BIBLIOGRAFÍA:
 Ávila Alvarez, Albert Alejandro (2015). Toxicología en urgencias. Colombia:
Editorial Médica CELSUS. (BCQS00954)
 Cid Hernández, Margarita (2014). Manual de prácticas de toxicología de los
alimentos. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. (BCQS02108)
 Calvo Carrillo, María de la Concepción (c2012). Toxicología de los alimentos.
México: McGrawHill Interamericana. (BCQS00263)
ANEXOS:
Anexo 1. Reacción con peróxido de
hidrogeno
Anexo 2. Reacción con cloruro de
níquel
Anexo 3. Reacción con sales férricas
Anexo4.Reacción con soluciones de
estaño
Anexo 5. Ensayo a la llama
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD
LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA
ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada
NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-8
NOMBRE DE LAPRÁCTICA:DETERMINACIONCUALITATIVADE CNEN PLANTAS
1. DATOS INFORMATIVOS:
CARRERA:Bioquímicay Farmacia
CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B”
DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc.
Alimento de Experimentación: Yuca
2. FUNDAMENTACIÓN:
El cianuro es una sustancia química de uso industrial, minero como agente acomplejante
de iones metálicos, en la galvanoplastia de electrodeposición de zinc, oro, cobre y
especialmente plata, y de uso en la producción de plásticos de base acrílica.
El cianuro como especie química como tal, es un anión de representación CN- y bien
puede ser un gas incoloro como el cianuro de hidrógeno (HCN), o el cloruro de cianógeno
(CNCl), o encontrarse en forma de cristales como el cianuro de sodio (NaCN) o el cianuro
de potasio (KCN).
Es potencialmente letal, actuando como tóxico a través de la inhibición del complejo
citocromo oxidasa, y por ende, bloqueando la cadena transportadora de electrones,
sistema central del proceso de respiración celular.
1. OBJETIVOS:
Determinar el cianuro presente en una muestra vegetal como en este caso es la yuca.
2. MATERIALES E INSUMOS:
MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA
 Vasos de
Precipitación
 Tubos de
Ensayo
 Aparato
de carga
iónica
 Cloruro de
sodio
 Agua
destilada
 Alimento de
experimentación
(yuca).
10
 Agitador
 Cable de
electricidad
 Foco
 Interruptor
3. PROCEDIMIENTO:
# ACTIVIDADES OBSERVACIONES
5.1
Formar un Electrolito
para lo cual colocamos
la yuca cortada en agua
 Alcohol Absoluto, proporcionado por el docente.
5.2
Armamos un circuito
eléctrico de 110 voltios
conectado a un foco y
un polo unir a los
extremos de yuca
 Usar siempre el equipo de protección mandil de
laboratorio, gorro, mascarilla, guantes para
minimizar algún tipo de
accidente que ponga en
riesgo nuestra salud.
 Tener precaución con dejar cables suelos para evitar
la cogida de corriente.5.3
Colocar un pedazo de
yuca en un recipiente
de vidrio (cuba
hidráulica) para la
determinación
cualitativa de CN en la
planta mediante
reacción con la
corriente se prendera o
no el foco
4. CUADRO DE RESULTADOS:
REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO
Cn de la yuca con agua
Se conecta los cables a esta
Prende el foco.
Positivo presencia de CN
5. CONCLUSIONES:
Mediante la presente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de
glucósidos cianorgénicos presente en la yuca, esto mediante el paso de corriente eléctrica
a través de esta en una solución salina, demostrando de esta manera la presencia del
compuesto estudiado.
6. RECOMENDACIONES:
• Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil,
guantes, cofia, zapatones y mascarilla.
• Tener precaución al manejar la corriente eléctrica para evitar posibles
accidentes.
• Mezclar homogéneamente la solución salina hasta obtener una mezcla
completamente homogénea.
7. BIBLIOGRAFÍA:
 Dra. Delia Mercedes Rojo Domínguez, Lic. Lourdes García Bacallao, I. S. C. H.
y L. M., & Corredera, S. Á. (2013). Instituto Superior de Ciencias Básicas y
Preclínicas " Victoria de Girón " EN LA PREECLAMPSIA
FISIOPATOLÓGICAS, 22(2), 130–140.
 Iribarren, O. B., & González, C. G. (2017). ARTICULO DE ACTUALIZACIÓN
Quemaduras por agentes químicos. Cuad. Cir, 15, 61–69.
 Lezáun Correspondencia, M., Mercedes, D., & Goñi, L. (2015). Intoxicaciones de
origen laboral Poisonings at the workplace. ANALES Sis San Navarra, 26(1),
265–273.
 Miguel -Fernandez. (2014). Origen De Los Nitratos Y Nitritos Y Su Influencia
En La Potabilidad, (3), 1–9.
8. ANEXOS:
Anexo 2. Yuca de experimentación
Anexo1. Preparación de la conexión
eléctrica
Anexo 4. Comprobación de la
presencia de cianuros
Anexo 3. Reacción con brusina

Practicas segundo hemi

  • 1.
    UNIVERSIDAD TÉCNICA DEMACHALA UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-4 NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORCOBRE 1. DATOS INFORMATIVOS: CARRERA:Bioquímicay Farmacia CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “A” y “B” DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc. Animal de Experimentación: Vísceras de pollo Vía de administración: Vía intraperitoneal TIEMPOS Inicio de la práctica: 12:30 pm Hora de disección: 13:15 pm Hora inicio de destilado: 13:30 pm Hora de finalización de destilado: 13:45 pm Hora de finalización de la práctica: 14:00 pm 2. FUNDAMENTACIÓN: El Cobre es una substancia muy común que ocurre naturalmente y se extiende a través del ambiente a través de fenómenos naturales, la gente que vive en casas que todavía tiene tuberías de cobre están expuestas a más altos niveles de Cobre que la mayoría de la gente, porque el Cobre es liberado en sus aguas a través de la corrosión de las tuberías. Exposiciones de largo periodo al cobre pueden irritar la nariz, la boca y los ojos y causar dolor de cabeza, de estómago, mareos, vómitos y diarreas. Una toma grande de cobre puede causar daño al hígado y los riñones e incluso la muerte. Si el Cobre es cancerígeno no ha sido determinado aún. La EPA (Enviromental Protecion Agency), requiere que el agua potable no contenga más de 1.3 miligramos de cobre por litro de agua (1.3mg/L). El ministerio de agricultura de los EE.UU recomienda (una dosis diaria de 900 microgramos de cobre (900 ug/dia) para personas mayores de 80 años de edad. La administración de Salud y Seguridad Ocupacional (OSHA) ha establecido un límite para vapores de cobre en el aire de 0.1 miligramo por metro cubico (0.1mg/m3) y 1 mg/m3 para polvos de cobre. 3. OBJETIVOS: Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Cobre en el destilado de las vísceras de pollo. 10
  • 2.
    4. MATERIALES EINSUMOS: MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA  Vasos de Precipitación  Gradilla  Tubos de Ensayo  Agitador  Porta Embudo  Espátula  Papel filtro  Cocineta  Ferrocianuro de potasio  Ácido acético  Cuprón  Amoniaco  Sales de cobre  Clorato de Potasio  HCl  Sulfato cúprico  Viseras de Pollo  Pipetas  Embudo  Estuche de Disección  Balanza  Campana  Hidróxido de amonio  Cianuros Alcalinos  Hidróxido de sodio  Yoduro de Potasio 5. PROCEDIMIENTO: # ACTIVIDADES OBSERVACIONES 5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de precipitación.  Usar siempre el equipo de protección mandil de laboratorio, gorro, mascarilla, guantes para minimizar algún tipo de accidente que ponga en riesgo nuestra salud.  Utilizar la campana de gases. 5.2 Disolver 10g de sulfato cúprico en agua 5.3 Verter las vísceras en un vaso de precipitación y agregar 20mL de HCl, luego mezclar con la solución de sulfato cúprico 5.4 recoger la mezcla de la sustancia madre en 4g de Clorato de potasio. 5.5 Filtrar. 5.6 Con aproximadamente 15 mL del filtrado recogido (muestra) realizar las reacciones de reconocimientos en medios biológicos. 5.7 1.- Con el Ferrocianuro de Potasio: En un medio acidificado con ácido acético, el cobre reacciona dando un precipitado rojo oscuro de ferrocianuro cúprico, insoluble en ácidos diluidos, soluble en amoniaco dando color azul. 5.8 2.-Con el Amoniaco: La solución muestra tratada con amoniaco, forma primero un precipitado verde claro pulverulento que al agregarle un exceso de reactivo se disuelve fácilmente dando un hermoso color azul por formación de un compuesto cupro-amónico. 5.9 3.-Con el Cuprón: En solución alcohólica al 1 % al que se le adiciona gotas de amoniaco, las sales de cobre reaccionan produciendo un precipitado verde insoluble en agua, amoniaco diluido, alcohol, ácido acético, soluble  alcohólica al 1 % proporcionado por el docente.
  • 3.
    en ácidos diluidosy poco solubles en amoniaco concentrado. 5.10 4.-Con el Yoduro de Potasio: Adicionando a la solución muestra gota a gota, primeramente, se forma un precipitado blando que luego se transforma a pardo- verdoso o amarillo. 5.11 5.-Con los cianuros alcalinos: A una pequeña cantidad de muestra se agregan unos pocos cristales de cianuro de sodio formando un precipitado verde de cianuro de cobre, a este precipitado le agregamos exceso de cianuro de sodio y observamos que se disuelve por formación de un complejo de color verde-café. 5.12 6.-Con el Hidróxido de Sodio: A 1ml de solución muestra, agregamos algunas gotas de NaOH, con lo cual en caso de ser positivo se debe formar un precipitado color azul pegajoso por formación de Cu(OH)2. Este precipitado es soluble en ácidos minerales y en álcalis concentrados. 6. CUADROS DE RESULTADOS: REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO Reacción con Ferrocianuro de Potasio precipitado rojo Positivo no Característico Reacción con el Amoniaco Precipitado azul Positivo Característico Reacción con el Cuprón Precipitado verde Positivo Característico Reacción con Yoduro de Potasio Precipitado amarilla Positivo Característico Reacción con los cianuros alcalinos Precipitado verde-café Positivo Característico
  • 4.
    7. CONCLUSIONES: Mediante lapresente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de cobre en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas de las cuales de las cinco reacciones nos dio como resultados la coloración positivo característico, solo en la reacción de Ferrocianuro de Potasio dio como resultado positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se encuentran en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso. 8. RECOMENDACIONES: • Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil, guantes, cofia, zapatones y mascarilla. • Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones. • Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas. • Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado. 9. BIBLIOGRAFÍA:  Ávila Alvarez, Albert Alejandro (2015). Toxicología en urgencias. Colombia: Editorial Médica CELSUS. (BCQS00954)  Cid Hernández, Margarita (2014). Manual de prácticas de toxicología de los alimentos. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. (BCQS02108)  Calvo Carrillo, María de la Concepción (c2012). Toxicología de los alimentos. México: McGrawHill Interamericana. (BCQS00263) ANEXOS: Reacción con el Hidróxido de Sodio Precipitado azul pegajoso Positivo Característico Anexo 1. Reacción con NaOH Anexo 2. Reacción con Cianuro alcalino
  • 5.
    Anexo 3. Reaccióncon ferrocianuro de potasio Anexo 4. Reacción con amoniaco Anexo 5. Reacción con yoduro de potasio Anexo 6. Reacción con cupron
  • 6.
    UNIVERSIDAD TÉCNICA DEMACHALA UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-5 NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORZINC 10. DATOS INFORMATIVOS: CARRERA:Bioquímicay Farmacia CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B” DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc. Animal de Experimentación: Vísceras de pollo Vía de administración: Vía intraperitoneal TIEMPOS Inicio de la práctica: 12:30 pm Hora de disección: 13:15 pm Hora inicio de destilado: 13:30 pm Hora de finalización de destilado: 13:45 pm Hora de finalización de la práctica: 14:00 pm 11. FUNDAMENTACIÓN: Una intoxicación aguda por este metal de origen profesional es la llamada fiebre de los fundidores, que se observa al fundir y verter el zinc y sus aleaciones, sobre todo del latón (zinc más cobre); el zinc al ser fundido, arde en el aire y se convierte en óxido de zinc, el cual el ser inhalado en forma de niebla blanca, produce la enfermedad. En algunos trabajadores produce hábito, en cambio en otros ocasiona hipersensibilidad creciente hacia esos vapores. En medicina el óxido de zinc ha producido intoxicaciones cuando se lo emplea en polvos, pomadas y pastas cuando son resorbidos en cantidades toxicas por la superficie de grandes heridas o al través de la piel inflamada, el sulfato de zinc cuando se lo emplea como astringente contra la conjuntivitis y la gonorrea; el cloruro de zinc cuando se lo utiliza en ginecología como caustico en solución concentrada (50%) aplicadas en el útero han producido intoxicaciones mortales por resorción, caracterizadas por un cuadro de gastroenteritis y lesiones renales, vasculares y cardiacas. 12. OBJETIVOS: Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Cobre en el destilado de las vísceras de pollo. 10
  • 7.
    13. MATERIALES EINSUMOS: MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA  Vasos de Precipitación  Gradilla  Tubos de Ensayo  Agitador  Porta Embudo  Espátula  Papel filtro Balanza  NaOH  Sales Amoniacales  Ferrocianuro de potasio  Sulfuro de amonio  HCl  Clorato de potasio  Cloruro de Zinc  Pirita Viseras de Pollo  Pipetas  Embudo  Estuche de Disección Campana Hidróxido de Sodio 14. PROCEDIMIENTO: # ACTIVIDADES OBSERVACIONES 5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de precipitación.  Usar siempre el equipo de protección mandil de laboratorio, gorro, mascarilla, guantes para minimizar algún tipo de accidente que ponga en riesgo nuestra salud.  Utilizar la campana de gases. 5.2 Disolver 10g de cloruro de zinc en agua 5.3 Verter las vísceras en un vaso de prescipitación y agregar 20mL de HCl. 5.4 Mezclar de las soluciones anteriores en 4g de Clorato de potasio. 5.5 Filtrar. 5.6 Con aproximadamente 15 mL del destilado recogido (muestra) realizar las reacciones de reconocimientos en medios biológicos. 5.7 1.-Con Hidróxidos Alcalinos: Origina un precipitado blanco gelatinoso de hidróxido de zinc, soluble en exceso de reactivo por formación de zincatos. 5.8 2.-Con el Amoniaco: Da al reaccionar un precipitado
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    blanco de hidróxidode zinc, soluble en exceso de amoniaco y en las sales amoniacales, con formación de sales complejas zinc amoniacales. 5.9 3.-Con el Ferrocianuro de Potasio: El zinc reacciona dando un precipitado blanco coposo de ferrocianuro de zinc, soluble en hidróxido de potasio y en exceso de reactivo, insoluble en los ácidos y en las sales amoniacales. 5.10 4.-Con el Yoduro de Potasio: Adicionando a la solución muestra gota a gota, primeramente, se forma un precipitado blando que luego se transforma a pardo-verdoso o amarillo. 5.11 5.-Con el sulfuro de amonio: - En solución neutra o alcalina produce un precipitado blanco de sulfuro de zinc, soluble en ácidos minerales, en insoluble en ácido acético. 5.12 6.-Con el sulfuro de Hidrogeno: - En medio alcalino o adicionando a la muestra solución saturada de acetato de sodio da un precipitado blanco pulverulento de sulfuro de zinc 15. CUADROS DE RESULTADOS: REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO Hidróxidos Alcalinos precipitado blanco gelatinoso. Positivo Característico Con el Amoniaco precipitado blanco Positivo no Característico
  • 9.
    Ferrocianuro de Potasio precipitado blancocoposo Positivo no Característico Yoduro de Potasio pardo-verdoso o amarillo Positivo Característico sulfuro de amonio precipitado blanco Positivo Característico sulfuro de Hidrogeno precipitado blanco Positivo Característico 16. CONCLUSIONES: Mediante la presente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de zinc en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas de las cuales de las cinco reacciones nos dio como resultados la coloración positivo característico, solo en la reacción de amoniaco y el ferrocianuro de potasio dio como resultado positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se encuentran en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso. 17. RECOMENDACIONES: • Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil, guantes, cofia, zapatones y mascarilla. • Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones. • Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas. • Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado. 18. BIBLIOGRAFÍA:  Ávila Alvarez, Albert Alejandro (2015). Toxicología en urgencias. Colombia: Editorial Médica CELSUS. (BCQS00954)  Cid Hernández, Margarita (2014). Manual de prácticas de toxicología de los alimentos. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. (BCQS02108)  Calvo Carrillo, María de la Concepción (c2012). Toxicología de los alimentos. México: McGrawHill Interamericana. (BCQS00263) ANEXOS:
  • 10.
    Anexo 3. Reaccióncon ferrocianuro de potasio Anexo 4. Reacción con yoduro de potasio Anexo 5. Reacción con sulfuro de amonio Anexo 6. Reacción con sulfuro de hidrogeno Anexo 1. Reacción con hidróxido alcalino Anexo 2. Reacción con amoniaco
  • 11.
    UNIVERSIDAD TÉCNICA DEMACHALA UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-6 NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORACIDONITRICO 19. DATOS INFORMATIVOS: CARRERA:Bioquímicay Farmacia CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B” DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc. Animal de Experimentación: Vísceras de pollo Vía de administración: Vía intraperitoneal TIEMPOS Inicio de la práctica: 11:30 pm Hora de disección: 11:35 pm Hora inicio de destilado: 11:45 pm Hora de finalización de destilado: 12:05 pm Hora de finalización de la práctica: 12:55 pm 20. FUNDAMENTACIÓN: El Ácido Nítrico es uno de los más fuertes desde el punto de vista iónico. Pero lo que lo caracteriza químicamente es su energía de acción oxidante. La misma se manifiesta sobre casi todos los metales excepto por el oro y el platino, ciertas sales, sustancias orgánicas y en general sobre toda sustancia capaz de oxidarse. Así, una astilla de madera con un punto de ignición, al contacto con este acido, sigue ardiendo con formación de CO2 y vapores rutilantes. Este acido es toxico, muy corrosivo, mancha la piel de amarillo y destruye las mucosas. Su acción oxidante se intensifica cuando tiene disuelto peróxido de nitrógeno que actúa como catalizador, por eso el ácido más energético es el ácido nítrico rojo o fumante. Acción toxica Produce lesiones como cutáneas, oculares y de las mucosas, cuya gravedad dependerá de la duración del contacto y de la concentración del ácido. Estas lesiones pueden ir desde una simple irritación hasta quemaduras u necrosis localizadas, cuando el contacto ha sido 10
  • 12.
    prolongado. Las nieblasde HNO3 también son irritantes y corrosivas para la piel y mucosas y el esmalte dental. Los valores de ácido nítrico siempre contienen, en diferentes proporciones, otro compuesto nitroso en forma de gas, dependiendo de la concentración de ácido y del tipo de operación que se trate. La inhalación puede producir intoxicación aguda o sobreaguda. La intoxicación sobreaguda es rara y produce la muerte rápidamente. La intoxicación aguda es más frecuente y puede constar de tres fases: la primera consiste en una irritación las vías respiratorias superiores (sensación de quemazón en la garganta, tos, sensación de sofocación) y de los ojos, produciendo lagrimeo. La segunda es descorsentante ya que hay ausencia de sintomatología durante varias horas. En la tercera fase, reaparecen las alteraciones respiratorias, pudiendo desarrollarse rápidamente un edema pulmonar, frecuentemente mortal. La ingestión accidental de ácido nítrico, puede producir importantes lesiones en la boca, faringe, esófago y estómago, cuyas consecuencias puedes ser grave. 1. OBJETIVOS: Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Ácido Nítrico en el destilado de las vísceras de pollo. 2. MATERIALES E INSUMOS: MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA  Vasos de Precipitación  Gradilla  Tubos de Ensayo  Agitador  Porta Embudo  Espátula  Balanza  Papel rojo congo  -Solución alcohólica de violeta de metilo  -Reactivo de Gunzburg  -Brusina  -Anilina  -Sulfato ferroso  Viseras de Pollo
  • 13.
     -Fenol  ÁcidoNítrico  Pipetas  Embudo  Estuche de Disección  Campana 3. PROCEDIMIENTO: # ACTIVIDADES OBSERVACIONES 5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de precipitación, agregar 5 ml de agua y 10 ml de ácido Nítrico poco a poco dejar reposar por 15 minutos.  Usar siempre el equipo de protección mandil de laboratorio, gorro, mascarilla, guantes para minimizar algún tipo de accidente que ponga en riesgo nuestra salud.5.2 Filtrar. 5.3 Con aproximadamente 15 mL del destilado recogido (muestra) realizar las reacciones de reconocimientos en medios biológicos repartir 1 mL. Por cada Rx de reconocimiento la sustancia Madre 5.4 1.- ROJO CONGO: al hacer reaccionar un papel embebido con rojo Congo, este se colorea de azul en caso positivo 5.5 2.- NARANJA DE METILO: Se trata una porción del líquido con solución alcohólica de Naranja de metilo 1:100, produciéndose una coloración azul-gris-verde ante la presencia de ácidos minerales  Utilizar la campana de gases. 5.6 3.- BRUSINA: Con la brusina disuelta en el ácido sulfúrico, se produce un color rojo en caso positivo 5.7 4.-ACIDO SULFURICO: Con la anilina en ácido sulfúrico toma un color azul en presencia de ácido nítrico.
  • 14.
    5.8 5.-SULFATO FERROSO:Con el sulfato ferroso,al adicionar a la muestra unas gotas del reactivo y luego ácido sulfúrico puro, debe dar un color rosado. 5.9 6.-FENOL: Con el fenol al agregar en ácido sulfúrico a la muestra acidificada en ácido acético debe formarse un color amarillo en caso de encontrarse el ácido nítrico, si al principio se los agregan gotas de amoniaco, el color amarillo original, se vuelve más intenso. 5.10 7.-SULFATO DE COBRE: A la solución madre agregar sulfato de cobre debiendo precipitar 4. CUADRO DE RESULTADOS: REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO 1.- ROJO CONGO azul + NO Característico 2.- NARANJA DE METILO: azul-gris-verde Positivo Característico 3.- BRUSINA: rojo Positivo Característico 4.-ACIDO SULFURICO: pardo-verdoso o amarillo Positivo Característico 5.-SULFATO FERROSO: azul + NO Característico 6.-FENOL: precipitado blanco Positivo Característico 7.-SULFATO DE COBRE:
  • 15.
    5. CONCLUSIONES: Mediante lapresente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de ácido nítrico en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas de las cuales de las cuatro reacciones nos dio como resultados la coloración positivo característico, solo en la reacción de rojo congo y el fenol de potasio dio como resultado positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se encuentran en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso. 6. RECOMENDACIONES: • Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil, guantes, cofia, zapatones y mascarilla. • Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones. • Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas. • Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado. 7. BIBLIOGRAFÍA:  Dra. Delia Mercedes Rojo Domínguez, Lic. Lourdes García Bacallao, I. S. C. H. y L. M., & Corredera, S. Á. (2013). Instituto Superior de Ciencias Básicas y Preclínicas " Victoria de Girón " EN LA PREECLAMPSIA FISIOPATOLÓGICAS, 22(2), 130–140.  Iribarren, O. B., & González, C. G. (2017). ARTICULO DE ACTUALIZACIÓN Quemaduras por agentes químicos. Cuad. Cir, 15, 61–69.  Lezáun Correspondencia, M., Mercedes, D., & Goñi, L. (2015). Intoxicaciones de origen laboral Poisonings at the workplace. ANALES Sis San Navarra, 26(1), 265–273.  Miguel -Fernandez. (2014). Origen De Los Nitratos Y Nitritos Y Su Influencia En La Potabilidad, (3), 1–9.  Wojnowska - Ciodyk, W. (2013). Kredytowanie spółdzielczego budownictwa mieszkaniowego - system kredytowania w świetle unormowań prawnych; projektowane zmiany, 24(6), 397–406. Retrieved from http://biurose.sejm.gov.pl/teksty_pdf_93/r-50.pdf 8. ANEXOS:
  • 16.
    Anexo 3. Reaccióncon brusina Anexo 4. Reacción con ácido sulfúrico Anexo 5. Reacción con sulfato ferroso Anexo 6. Reacción con fenol Anexo 1. Reacción con rojo congo Anexo 2. Reacción con naranja de metilo
  • 17.
    UNIVERSIDAD TÉCNICA DEMACHALA UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-7 NOMBRE DE LAPRÁCTICA:INTOXICACIÓNPORHIDROXIDODE SODIO 21. DATOS INFORMATIVOS: CARRERA:Bioquímicay Farmacia CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B” DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc. Animal de Experimentación: Vísceras de pollo Vía de administración: Vía intraperitoneal TIEMPOS Inicio de la práctica: 11:45 pm Hora de disección: 11:55 pm Hora inicio de destilado: 12:0 pm Hora de finalización de destilado: 12:05 pm Hora de finalización de la práctica: 12:55 pm 22. FUNDAMENTACIÓN: Para realizar el reconocimiento de los hidróxidos de sodio y potasio, se trata el material de investigación con alcohol absoluto que disuelve los álcalis cáusticos y el amoniaco, más no los carbonatos. Se deja en contacto por algún tiempo y luego se filtra; después de haber comprobado la alcalinidad de la solución alcohólica, se destila el alcohol. Si estuviera presente el amoniaco,este se destila en el alcoholy se lo reconocefácilmenteconel reactivo de Nessler. El residuo de la destilación, después que se ha eliminado por completo el amoniaco, se recoge con agua y en la solución acuosa, se practican las diferentes reacciones de reconocimiento para cada caso si fuere necesario. 23. OBJETIVOS: Determinar mediante reacciones de reconocimiento la presencia de Hidróxido de sodio en el destilado de las vísceras de pollo. 24. MATERIALES E INSUMOS: MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA 10
  • 18.
     Vasos de Precipitación Gradilla  Tubos de Ensayo  Agitador  Porta Embudo  Espátula  Balanza  Cloruro de níquel  Sales férricas  Soluciones de Estaño  Sales de cadmio  -Alcohol absoluto  Hidróxido de Sodio   Viseras de Pollo  Pipetas  Embudo  Estuche de Disección  Campana 25. PROCEDIMIENTO: # ACTIVIDADES OBSERVACIONES 5.1 Con la ayuda del estuche de disección, picar lo más finas posibles las vísceras de pollo en un vaso de precipitación, agregar alcohol absoluto y 5 gr. de NaOH dejar reposar por 15 minutos.  Alcohol Absoluto, proporcionado por el docente.  Usar siempre el equipo de protección mandil de laboratorio, gorro, mascarilla, guantes para minimizar algún tipo de accidente que ponga en riesgo nuestra salud.  Utilizar la campana de gases.  5.2 Filtrar. 5.3 Con aproximadamente 15 mL del destilado recogido (muestra) realizar las reacciones de reconocimientos en medios biológicos. 5.4 1.- Si a una pequeña cantidad de reactivo se adicionan unas gotas de muestra, se produce primero un precipitado azul debido a la formación de una sal básica. El exceso de la base, puede producir hidróxido de cobalto color rosa, el cual es oxidado por el oxígeno del aire tornándose pardo y finalmente negro. 5.5 2.-El sodio al agregarle una pequeña porción de cloruro de níquel, produce un precipitado verde claro de aspecto gelatinoso de hidróxido de níquel.
  • 19.
    5.6 3.-Frente a lassales férricas de sodio reacciona formando un precipitado blanco del hidróxido correspondiente. 5.7 4.-Igualmente reacciona frente a las soluciones de estaño, dando precipitados blancos de hidróxido de estaño. 5.8 5.-Con las sales de cadmio, al agregar unas gotas de la solución muestra, forma un precipitado blanco de hidróxido de cadmio. 5.9 6.-Ensayo a la llama, al acercar una cantidad de muestra contenida en la punta de un lápiz, arde con llama color amarilla intensa, en caso positivo. 26. CUADROS DE RESULTADOS: REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO REACTIVO + GOTA DE MUESTRA (PEROXIDO DE HIDROGENO + SULFATO FERROSO) precipitado azul. Positivo Característico CLORURO DE NÍQUEL precipitado verde claro Positivo Característico SALES FÉRRICAS precipitado blanco Positivo no Característico SOLUCIONES DE ESTAÑO precipitado blanco Positivo Característico SALES DE CADMIO precipitado blanco Positivo Característico ENSAYO A LA LLAMA llama color amarilla intensa Positivo Característico 27. CONCLUSIONES:
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    Mediante la presentepractica de laboratorio logramos determinar la presencia de hidróxido de sodio en el destilado de las vísceras de pollo, esto mediante las reacciones realizadas de las cuales de las cinco reacciones nos dio como resultados la coloración positivo característico, solo en la reacción de sales férricas dio como resultado positivo no característico, esto puede ser debido a que los reactivos no se encuentran en las mejores calidades o que se cometió algún error en el proceso. 28. RECOMENDACIONES: • Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil, guantes, cofia, zapatones y mascarilla. • Evitar mezclar los reactivos al momento de hacer las reacciones. • Tener total precaución al momento de utilizar las sustancias químicas toxicas. • Al terminar la práctica, enterrar las vísceras en un lugar alejado. 29. BIBLIOGRAFÍA:  Ávila Alvarez, Albert Alejandro (2015). Toxicología en urgencias. Colombia: Editorial Médica CELSUS. (BCQS00954)  Cid Hernández, Margarita (2014). Manual de prácticas de toxicología de los alimentos. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. (BCQS02108)  Calvo Carrillo, María de la Concepción (c2012). Toxicología de los alimentos. México: McGrawHill Interamericana. (BCQS00263) ANEXOS: Anexo 1. Reacción con peróxido de hidrogeno Anexo 2. Reacción con cloruro de níquel
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    Anexo 3. Reaccióncon sales férricas Anexo4.Reacción con soluciones de estaño Anexo 5. Ensayo a la llama
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    UNIVERSIDAD TÉCNICA DEMACHALA UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS QUÍMICAS Y DE LA SALUD LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA Y TOXICOLOGÍA ALUMNO:Alvaro Fernando Castro Quezada NÚMERODE PRÁCTICA:BF.8.01-8 NOMBRE DE LAPRÁCTICA:DETERMINACIONCUALITATIVADE CNEN PLANTAS 1. DATOS INFORMATIVOS: CARRERA:Bioquímicay Farmacia CICLO/NIVEL:OctavoSemestre “B” DOCENTE RESPONSABLE:BIOQ.CarlosGarcía MSc. Alimento de Experimentación: Yuca 2. FUNDAMENTACIÓN: El cianuro es una sustancia química de uso industrial, minero como agente acomplejante de iones metálicos, en la galvanoplastia de electrodeposición de zinc, oro, cobre y especialmente plata, y de uso en la producción de plásticos de base acrílica. El cianuro como especie química como tal, es un anión de representación CN- y bien puede ser un gas incoloro como el cianuro de hidrógeno (HCN), o el cloruro de cianógeno (CNCl), o encontrarse en forma de cristales como el cianuro de sodio (NaCN) o el cianuro de potasio (KCN). Es potencialmente letal, actuando como tóxico a través de la inhibición del complejo citocromo oxidasa, y por ende, bloqueando la cadena transportadora de electrones, sistema central del proceso de respiración celular. 1. OBJETIVOS: Determinar el cianuro presente en una muestra vegetal como en este caso es la yuca. 2. MATERIALES E INSUMOS: MATERIALES EQUIPOS SUSTANCIAS MUESTRA  Vasos de Precipitación  Tubos de Ensayo  Aparato de carga iónica  Cloruro de sodio  Agua destilada  Alimento de experimentación (yuca). 10
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     Agitador  Cablede electricidad  Foco  Interruptor 3. PROCEDIMIENTO: # ACTIVIDADES OBSERVACIONES 5.1 Formar un Electrolito para lo cual colocamos la yuca cortada en agua  Alcohol Absoluto, proporcionado por el docente. 5.2 Armamos un circuito eléctrico de 110 voltios conectado a un foco y un polo unir a los extremos de yuca  Usar siempre el equipo de protección mandil de laboratorio, gorro, mascarilla, guantes para minimizar algún tipo de accidente que ponga en riesgo nuestra salud.  Tener precaución con dejar cables suelos para evitar la cogida de corriente.5.3 Colocar un pedazo de yuca en un recipiente de vidrio (cuba hidráulica) para la determinación cualitativa de CN en la planta mediante reacción con la corriente se prendera o no el foco 4. CUADRO DE RESULTADOS: REACCIÓN COLORACIÓN RESULTADO Cn de la yuca con agua Se conecta los cables a esta Prende el foco. Positivo presencia de CN
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    5. CONCLUSIONES: Mediante lapresente practica de laboratorio logramos determinar la presencia de glucósidos cianorgénicos presente en la yuca, esto mediante el paso de corriente eléctrica a través de esta en una solución salina, demostrando de esta manera la presencia del compuesto estudiado. 6. RECOMENDACIONES: • Ingresar al laboratorio con la respectiva vestimenta de bioseguridad: mandil, guantes, cofia, zapatones y mascarilla. • Tener precaución al manejar la corriente eléctrica para evitar posibles accidentes. • Mezclar homogéneamente la solución salina hasta obtener una mezcla completamente homogénea. 7. BIBLIOGRAFÍA:  Dra. Delia Mercedes Rojo Domínguez, Lic. Lourdes García Bacallao, I. S. C. H. y L. M., & Corredera, S. Á. (2013). Instituto Superior de Ciencias Básicas y Preclínicas " Victoria de Girón " EN LA PREECLAMPSIA FISIOPATOLÓGICAS, 22(2), 130–140.  Iribarren, O. B., & González, C. G. (2017). ARTICULO DE ACTUALIZACIÓN Quemaduras por agentes químicos. Cuad. Cir, 15, 61–69.  Lezáun Correspondencia, M., Mercedes, D., & Goñi, L. (2015). Intoxicaciones de origen laboral Poisonings at the workplace. ANALES Sis San Navarra, 26(1), 265–273.  Miguel -Fernandez. (2014). Origen De Los Nitratos Y Nitritos Y Su Influencia En La Potabilidad, (3), 1–9.
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    8. ANEXOS: Anexo 2.Yuca de experimentación Anexo1. Preparación de la conexión eléctrica Anexo 4. Comprobación de la presencia de cianuros Anexo 3. Reacción con brusina